论著
改良凝胶电泳方法在基因多态性检测中的应用
中华实用儿科临床杂志, 2014,29(15) : 1174-1176. DOI: 10.3760/cma.j.issn.2095-428X.2014.15.014
摘要
目的

探讨改良聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)-溴化乙啶(EB)显色法在基因型多态性检测中的应用特点。

方法

采用病例-对照研究方法,选取颅内出血新生儿167例作为病例组,同期因住院观察的非颅内出血的新生儿163例作为对照组,分别使用PAGE-银染、琼脂糖凝胶电泳(AGE)-EB以及PAGE-EB 3种方法进行聚合酶链式反应-限制性片段长度多态性(PCR-RFLP)分析技术检测所有研究对象μ-阿片受体A118G (OPRM1 A118G)基因型,比较3种方法的应用特点。

结果

PAGE-银染法及改良PAGE-EB电泳法均能清晰检测OPRM1 A118G基因型:突变纯合子GG(169 bp),突变杂合子AG(193 bp,169 bp),野生纯合子AA(193 bp),DNA片段分辨率比较差异无统计学意义(P=0.884),AGE-EB则只能检测出原始条带(193 bp),而不能准确分辨OPRM1 A118G的具体基因型。PAGE-银染法共13个步骤,需4~5 h,12种化学试剂,相机采集图片,技术要求高,操作难度大,耗时;改良PAGE-EB法共6个试验步骤,历时2 h,使用8种试剂,自动凝胶成像仪采集图片。

结论

在基因型多态性检测中,改良PAGE-EB法简便、快捷、分辨率高,值得推广。

引用本文: 夏沛格, 张茜, 时赞扬, 等.  改良凝胶电泳方法在基因多态性检测中的应用 [J] . 中华实用儿科临床杂志,2014,29 (15): 1174-1176. DOI: 10.3760/cma.j.issn.2095-428X.2014.15.014
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目前常用的基因分析方法有DNA杂交分析,聚合酶链式反应-酶联免疫吸附法(PCR-ELISA),免疫分析技术,荧光定量(FQ)-PCR、DNA熔解曲线分析技术等,但因其需要特殊的仪器设备,价格昂贵,操作过程复杂等限制了其在试验中的应用[1]。PCR-限制性片段长度多态性(RFLP)技术是检测基因多态性的常用方法,得到酶切片段后可以通过电泳染色获取基因型,在实验中得到广泛应用[2]。常用的电泳方法有聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)-银染,该方法分辨率高[3],但繁琐、耗时;琼脂糖凝胶电泳(AGE)-溴化乙啶(EB)显色法敏感、简单、快捷,但分辨率差[4]。本研究在这2种方法的基础上设计出改良凝胶电泳方法:PAGE-EB,期望在科学研究中寻找到一种既分辨率高、敏感、又简单、快捷的检测方法。并将此改良方法在μ-阿片受体A118G(OPRM1 A118G)基因多态性与新生儿颅内出血的相关性研究中进行验证。现报告如下。

1 资料与方法
1.1 研究对象

选取2011年7月至2013年3月郑州大学第一附属医院新生儿重症监护室(NICU)收治的167例颅内出血新生儿为病例组,同期因早产要求住院观察的163例非颅内出血新生儿为对照组。颅内出血的诊断标准依据《实用新生儿学》第4版[5]。所做研究均征得患儿家属同意并签署知情同意书,研究方案经郑州大学第一附属医院医学伦理委员会批准。

1.2 研究方法

采用PCR-RFLP技术进行OPRM1 A118G多态性位点的检测。

1.2.1 基因组DNA的提取

所有患儿外周股静脉取血2 mL,置于抗凝管中,4 ℃冰箱保存,应用DNA试剂盒(北京康为试剂有限公司)提取外周血白细胞DNA。

1.2.2 PCR的扩增

引物设计根据文献和基因文库[6],上游5'-GGTCAACTTGTCCCACTTAG-3',下游5'-AATCACATACATGACCAGGAAGTTT-3'(上海生工生物工程公司)。PCR反应体系:10 nmol/L上下游引物各1 μL,DNA模板2 μL,2×PCR TaqMix 10 μL最后加超纯水至20 μL。PCR反应条件:94 ℃预变性3 min;94 ℃变性30 s,62 ℃退火60 s,72 ℃延伸60 s,共38个循环;然后72 ℃延伸10 min,4 ℃冰箱保存。

1.2.3 酶切反应

在长度为193 bp的PCR反应产物中,包含限制性内切酶BstUI的特异性作用位点,可以被酶切消化为2个长度分别为169 bp和24 bp的片段。基因型为AA型的不被切开,电泳仅表现为193 bp的单一条带:GG型的可以被切开为169 bp和24 bp的片段(24 bp条带因为太小,容易扩散,凝胶电泳上末能清楚显示,仅能观察到长度为169 bp的条带),AG型的则含有193 bp和169 bp 2个条带。酶切反应体系:内切酶Bsh1236Ⅰ(MBI)2 μL,Buffer R 2 μL,PCR产物10 μL,加无菌去离子水18 μL,37 ℃水浴12 h,酶切完毕后-20 ℃冰箱保存酶切产物。

1.2.4 PCR-RFLP结果检测
1.2.4.1 20 g/L AGE-EB[7]

2 g琼脂糖、1×TAE缓冲液100 mL、EB(1 g/L) 14 μL依次加入锥形瓶中搅拌混匀,微波炉加热约1.5 min至沸腾,冷却到50 ℃左右,倒入制胶模中,凝胶完全凝固20 min后,放入电泳槽,加1×TAE缓冲液,10 μL酶切产物上样,100 ladder Marker做参照,115 V/100 mA电泳25 min后置于自动凝胶成像系统观察结果。整个过程需1~2 h。

1.2.4.2 100 g/L PAGE-银染[8]

(1)装板:先将玻璃板和1 mm垫条彻底洗净、晾干,把长玻璃和短玻璃及垫条对齐,用透明胶带密封两侧及底边。(2)配胶:聚丙烯酰胺(Acr):甲叉双丙烯酰胺(Bic)=29:1(2.55 mL),5×TBE缓冲液1.5 mL,100 g/L过硫酰胺(AP)75 μL,四甲基乙二胺(TEMED) 3 μL,加去离子水(ddH2O)至5 mL混匀,加入垂直玻璃槽中至凝胶凝固,约30 min。(3)加样、电泳:凝胶置于电泳槽中,加入1×TBE电泳缓冲液,酶切产物2 μL加样,100 ladder Marker做参照,105 V/100 mA电泳50 min。(4)银染:倒胶、漂洗、固定(100 mL/L乙醇、10 g/L冰醋酸,4 ℃冰箱放置)、漂洗(去离子水,2~3遍);染色(2 g/L AgNO3,370 g/L甲醛500 μL/L)、漂洗、显色(15 g/L NaOH,10 g/L硫代硫酸钠,370 g/L甲醛2 500 μL/L)至样品条带呈褐色、凝胶背景呈透明淡黄色、漂洗、透明膜固定凝胶,拍照,固定液放置。全程共计4~5 h。

1.2.4.3 改良PAGE-EB

前3个步骤同100 g/L PAGE,电泳完毕后,倒胶,漂洗,将凝胶置于EB液(1×10-6 g/L)中浸泡约20 min,自动凝胶成像系统观察结果、拍照。整个过程历时约2 h。

1.3 统计学处理

采用病例-对照研究策略,分别使用PAGE-银染法和改良PAGE-EB法,进行OPRM1 A118G基因多态性检测。应用SPSS 19.0软件进行统计学分析,分别计算各组基因型和等位基因的频率,结果使用χ2检验,检验水准α=0.05。

2 结果
2.1 不同凝胶电泳方法检测OPRM1 A118G基因型结果

OPRM1 A118G共有3种基因型:突变纯合子GG(169 bp),突变杂合子AG(193 bp、169 bp),野生纯合子AA(193 bp)。PAGE-银染及改良PAGE-EB法均能清晰分辨OPRM1 A118G 3种基因型:AA、AG、GG,见图1图2;AGE-EB则只能检测出原始条带(193 bp),而不能准确分辨OPRM1 A118G的具体基因型,见图3

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图1
聚丙烯酰胺凝胶电泳-银染
图2
改良聚丙烯酰胺凝胶电泳-溴化乙啶显色法
图3
琼脂糖凝胶电泳-溴化乙啶显色法
Figure 1
Polyacrylamide gel electrophoresis-silver staining
Figure 2
Improved polyacrylamide gel electrophoresis-ethidium bromide
Figure 3
Agarose gel electrophoresis-ethidium bromide
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图1
聚丙烯酰胺凝胶电泳-银染
图2
改良聚丙烯酰胺凝胶电泳-溴化乙啶显色法
图3
琼脂糖凝胶电泳-溴化乙啶显色法
Figure 1
Polyacrylamide gel electrophoresis-silver staining
Figure 2
Improved polyacrylamide gel electrophoresis-ethidium bromide
Figure 3
Agarose gel electrophoresis-ethidium bromide
2.2 PAGE-银染及改良PAGE-EB检测OPRM1

分别使用PAGE-银染及改良PAGE-EB电泳检测病例组患儿基因型,结果显示差异无统计学意义(χ2=0.217,P=0.897),2种凝胶电泳方法检测对照组患儿基因型,结果显示差异无统计学意义(χ2=0.107,P=0.948),所有研究对象2种凝胶电泳检测基因型结果,差异无统计学意义(χ2=0.247,P=0.884),见表1表2表3。综上可得,PAGE-银染和改良PAGE-EB均能清晰检测OPRM1 A118G基因型,且结果差异无统计学意义。

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表1

PAGE-银染及改良PAGE-EB检测病例组OPRM1 A118G基因型结果[例(%)]

Table 1

Comparisons of genotypes frequencies of the OPRM1 A118G with methods of PAGE-silver staining and improved PAGE-EB staining in case group[n(%)]

表1

PAGE-银染及改良PAGE-EB检测病例组OPRM1 A118G基因型结果[例(%)]

Table 1

Comparisons of genotypes frequencies of the OPRM1 A118G with methods of PAGE-silver staining and improved PAGE-EB staining in case group[n(%)]

方法基因型等位基因
AAAGGGAG
PAGE-银染74(44.3)79(47.3)14(8.4)227(67.9)107(32.1)
PAGE-EB73(43.7)82(49.1)12(7.2)228(68.3)106(31.7)

注:PAGE:聚丙烯酰胺凝胶电泳;EB:溴化乙啶 PAEG:polyacry-lamide gel electrophoresis;EB:ethidium bromide

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表2

PAGE-银染及改良PAGE-EB检测对照组OPRM1 A118G基因型结果[例(%)]

Table 2

Comparisons of genotypes frequencies of the OPRM1 A118G with methods of PAGE-silver staining and improved PAGE-EB staining in control group[n(%)]

表2

PAGE-银染及改良PAGE-EB检测对照组OPRM1 A118G基因型结果[例(%)]

Table 2

Comparisons of genotypes frequencies of the OPRM1 A118G with methods of PAGE-silver staining and improved PAGE-EB staining in control group[n(%)]

方法基因型等位基因
AAAGGGAG
PAGE-银染87(53.4)69(42.3)7(4.3)243(74.5)83(25.5)
PAGE-EB89(54.6)68(41.7)6(3.7)246(75.5)80(24.5)

注:PAGE:聚丙烯酰胺凝胶电泳;EB:溴化乙啶 PAEG:polyacry-lamide gel electrophoresis;EB:ethidium bromide

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表3

PAGE-银染及改良PAGE-EB检测所有研究对象OPRMI A118G基因型结果[例(%)]

Table 3

Comparisons of genotypes frequencies of the OPRM1A118G with methods of PAGE-silver staining and improved PAGE-EB staining in all samples[n(%)]

表3

PAGE-银染及改良PAGE-EB检测所有研究对象OPRMI A118G基因型结果[例(%)]

Table 3

Comparisons of genotypes frequencies of the OPRM1A118G with methods of PAGE-silver staining and improved PAGE-EB staining in all samples[n(%)]

方法基因型等位基因
AAAGGGAG
PAGE-银染161(48.8)148(44.8)21(6.4)470(71.2)190(28.8)
PAGE-EB162(49.0)150(45.5)18(5.5)474(71.8)186(28.2)

注:PAGE:聚丙烯酰胺凝胶电泳;EB:溴化乙啶 PAEG:polyacry-lamide gel electrophoresis;EB:ethidium bromide

3 讨论

目前电泳技术已成为临床检验、实验诊断和分子生物学等领域必不可少的研究手段[9]。PAGE和AGE都是最常用的分离、鉴定及纯化DNA片段的标准方法[8]。AGE-EB电泳是以琼脂糖凝胶为电泳介质,试验方法简单、快捷,高浓度凝胶分离小片段DNA分子,低浓度的凝胶分离大片段DNA分子,常用的琼脂糖凝胶浓度为5 ~20 g/L,适合100~50 000 bp的片段分离[7,10]。本研究预实验中采用20 g/L的凝胶,不能将小于50 bp的DNA片段分开,不能用于本研究基因型的检测。PAGE-银染是以聚丙烯酰胺凝胶为电泳介质,分辨率高,能将5~300 bp小片段核酸分离,用于测序的聚丙烯酰胺凝胶可分离相差1 bp的DNA片段[10]。通过改变聚丙烯酰胺凝胶质量浓度,可以控制其孔径,低质量浓度凝胶具有较大的孔径,高质量浓度的凝胶具有较小的孔径,丙烯酰胺的质量浓度可以在30~300 g/L,预实验选择300 g/L的凝胶,能分辨本研究基因型,但整个实验步骤繁琐,共计13个步骤,使用12种化学试剂,且干扰因素大、技术难度高、耗时、费力,任一步骤不规范,都可能影响图像质量及结果判定,图片直接用相机采集,易反光且带有水印,结果不易编辑。改良PAGE-EB结合聚丙烯酰胺的高分辨性及EB的敏感性,简化了试验,DNA片段分辨率与PAGE-银染法相比,差异无统计学意义(P=0.884),能够检测出OPRM1 A118G全部基因型,整个实验简便、快捷、耗材少,自动凝胶成像仪采集图片,图片清晰易编辑。

OPRM1 A118G基因多态性与新生儿颅内出血的关联性研究属基因遗传学范畴。基因遗传性分析是一项浩大的工程,需要做大量的调查研究,搜集大样本数据。本研究选取167例颅内出血新生儿为病例组,同期非颅内出血新生儿163例为对照组,OPRM1 A118G基因型:GG (169 bp),AG(193 bp、169 bp),AA(193 bp),突变片段与野生片段相差24 bp。针对这种目标片段相差小于50 bp,而又需要大样本数据的研究,改良PAGE-EB法值得考虑。

综上所述,针对一定的DNA片段(尤其是DNA片段小于50 bp),改良PAGE-EB法更加简便、快捷、经济,值得在科学研究及临床检验中大量推广。由于未对3种方法的敏感度进行定量分析,使得结果不能更加客观、准确,有待进一步完善。其次,实验中使用荧光染料EB,EB具有强诱变性和致癌性[11]。目前已有替代EB的核酸染料,分辨率与PAGE-银染无明显差异且无毒[12],但因价格较高而限制了在试验中的应用,相信其价值最终会被认可,用于实验研究中。

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