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血液/肿瘤疾病
13-顺式维甲酸体外诱导3种神经母细胞瘤细胞株分化研究
中华实用儿科临床杂志, 2015,30(15) : 1152-1156. DOI: 10.3760/cma.j.issn.2095-428X.2015.15.009
摘要
目的

探讨13-顺式维甲酸(13-cis RA)体外对3种人神经母细胞瘤(NB)细胞株生长的影响及其作用机制。

方法

常规培养SH-SY5Y、SK-N-SH和SK-N-BE2细胞株,荧光原位杂交技术(FISH)检测3种细胞MYCN基因扩增情况。不同浓度13-cis RA作用后,采用相差显微镜观察细胞形态变化,酶联免疫吸附法测定细胞培养液神经元特异性烯醇化酶(NSE),细胞增殖毒性检测法检测细胞增殖,流式细胞仪检测细胞凋亡率。

结果

13-cis RA作用后,3种细胞均伸出多个轴突树突状突起,呈极性化改变,出现细胞分化。FISH检测结果显示,SK-N-BE2细胞为MYCN扩增阳性,13-cis RA作用后MYCN仍扩增阳性,另2种细胞株未见扩增。3种细胞经不同浓度13-cis RA作用后NSE水平随药物作用时间延长而升高,其中SK-N-BE2细胞NSE水平显著升高,差异均有统计学意义(F=27.00,P<0.000 1)。13-cis RA作用48 h内均促进细胞增殖,随后转为抑制细胞生长。SH-SY5Y细胞经10 μmol/L 13-cis RA作用96 h及120 h显著增加细胞凋亡(F=16.21,P=0.011;F=16.04,P=0.016);SK-N-SH细胞经1 μmol/L及10 μmol/L 13-cis RA作用48 h,细胞凋亡均显著增加(F=15.05,P=0.012;F=31.18,P=0.005);SK-N-BE2细胞经不同浓度13-cis RA(1 μmol/L、5 μmol/L、10 μmol/L)作用120 h细胞凋亡均显著增加(F=9.05,P=0.030;F=11.38,P=0.028;F=7.88,P=0.041)。

结论

13-cis RA体外能显著诱导NB细胞分化,作用48 h内促进细胞增殖,随后表现为抑制细胞生长,促进细胞凋亡。13-cis RA对MYCN扩增阳性的细胞在DNA检测水平无改善,提示可能需要联合用药。

引用本文: 邵静波, 吴伟, 李玲玲, 等.  13-顺式维甲酸体外诱导3种神经母细胞瘤细胞株分化研究 [J] . 中华实用儿科临床杂志, 2015, 30(15) : 1152-1156. DOI: 10.3760/cma.j.issn.2095-428X.2015.15.009.
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诱导分化可使肿瘤细胞部分或全部恢复分化潜能,为当今肿瘤研究的热点问题。神经母细胞瘤(NB)存在自然退化现象,但具体机制尚未阐明。维甲酸(RA)是目前最常用的诱导分化剂,本研究通过观察13-顺式RA(13-cis RA)体外诱导3种NB细胞株分化的不同特点及其对细胞生长的影响,为13-cis RA更好应用临床提供理论依据。

1 材料与方法
1.1 实验材料
1.1.1 人NB细胞株

SK-N-SH细胞系购自中国科学院上海细胞研究所,SK-N-BE2、SH-SY5Y分别为上海交通大学附属新华医院及复旦大学附属儿科医院惠赠。

1.1.2 主要试剂

13-cis RA购自美国Sigma公司,胎牛血清购自美国MP公司,Dulbecco MEM(DMEM)培养基购自美国Gibco公司,细胞增殖毒性检测(CCK-8)试剂购自日本同仁化学研究所,细胞凋亡及周期试剂盒均购自美国B-D公司。

1.2 实验方法
1.2.1 细胞培养

细胞用含100 mL/L胎牛血清的DMEM培养液,置于37 ℃、50 mL/L二氧化碳(CO2)、100%湿度的培养箱中孵育培养,每2、3 d换液1次,当细胞覆盖瓶底面积80%以上传代。

1.2.2 实验分组

取对数生长期的细胞,接种培养24 h后分为5组,包括仅加培养液的对照组及1 μmol/L、5 μmol/L、10 μmol/L和20 μmol/L 13-cis RA处理组。

1.2.3 荧光原位杂交技术(FISH)

采用FISH检测3种细胞MYCN基因扩增情况以及SK-N-BE2细胞经13-cis RA 1 μmol/L作用168 h(7 d)后MYCN基因扩增情况。

1.2.4 相差显微镜观察细胞形态

将细胞接种于12孔板,分别于13-cis RA处理后24~168 h(1~7 d)每24 h用相差显微镜下观察细胞形态改变。

1.2.5 细胞培养上清液神经元特异性烯醇化酶(NSE)水平的测定

将细胞接种于6孔板,分别于13-cis RA处理24、48、72 h后提取上清液,酶联免疫吸附法(ELISA)测定NSE水平,期间不换培养液。

1.2.6 CCK-8检测细胞增殖与活力

将细胞接种于96孔板,每组设3个复孔。设置实验孔As(含有细胞的培养基、13-cis RA、CCK-8)、对照孔Ac(含有细胞的培养基、CCK-8,无13-cis RA)、空白孔Ab(培养基、CCK-8,无细胞及13-cis RA),分别处理24~72 h后酶标仪下测各孔吸光度值(A值)。按以下公式计算细胞存活:细胞存活率=A(As-Ab)/A(Ac-Ab)×100%[1]

1.2.7 流式细胞仪检测细胞凋亡

将细胞接种于12孔板,分别处理24~120 h,每24 h收集细胞,在流式细胞仪用Annexin V/碘化丙啶(PI)染色法检测细胞凋亡。

1.3 统计学处理

应用SPSS 17.0软件进行统计学分析,计量资料以±s表示,多组均数间比较采用单因素方差分析(Oneway ANOVA),2组均数间比较采用t检验,P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果
2.1 3种NB细胞MYCN基因扩增情况

采用FISH检测MYCN基因扩增:SH-SY5Y及SK-N-SH细胞MYCN基因未见扩增,SK-N-BE2细胞为MYCN扩增阳性。SK-N-BE2细胞采用13-cis RA 1 μmol/L作用168 h后FISH检测MYCN扩增仍为阳性,阳性细胞数量未见减少。扩增情况见图1

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图1
SH-SY5Y、SK-N-SH 和SK-N-BE2细胞采用荧光原位杂交技术检测MYCN基因扩增情况
Figure 1
The status of MYCN gene amplification was detected by fluorescence in situ hybridization in SH-SY5Y,SK-N-SH and SK-N-BE2 cells
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注:A:SH-SY5Y细胞MYCN扩增阴性;B:SK-N-SH细胞MYCN扩增阴性;C:SK-N-BE2细胞MYCN扩增阳性;D:SK-N-BE2细胞13-顺式维甲酸作用后MYCN扩增阳性 A,B:MYCN amplification-null in SH-SY5Y and SK-N-SH cells;C:MYCN amplification in SK-N-BE2 cell;D:MYCN still amplification in SK-N-BE2 cell after 13-cis retinoic acid treatment

图1
SH-SY5Y、SK-N-SH 和SK-N-BE2细胞采用荧光原位杂交技术检测MYCN基因扩增情况
Figure 1
The status of MYCN gene amplification was detected by fluorescence in situ hybridization in SH-SY5Y,SK-N-SH and SK-N-BE2 cells
2.2 相差显微镜观察细胞生长形态

13-cis RA作用后细胞形态均发生变化,见图2。SH-SY5Y细胞呈梭形,胞体较小,边缘清晰,生长速度在3种细胞中最快。经13-cis RA作用后从胞体生长出多个神经突起,类似神经元轴突。SK-N-BE2细胞形态多样,往往聚集,形成团块样。经13-cis RA作用后细胞逐渐散开生长,呈极性状,伸出多个轴突突起,在3种细胞中变化最大。SK-N-SH细胞呈梭形、圆形、多角形等不规则形态,经药物处理后细胞呈极性状,伸出多个轴突状突起,胞体逐渐变小变圆。3种细胞随着药物浓度增大及作用时间延长,生长减缓。

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图2
SH-SY5Y、SK-N-BE2 和SK-N-SH细胞经13-cis RA作用后相差显微镜观察细胞形态变化(×200)
Figure 2
Morphological changes after 13-cis RA treatment in SH-SY5Y,SK-N-BE2 and SK-N-SH cells (×200)
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注:13-cis RA:13-顺式维甲酸;A:SH-SY5Y细胞13-cis RA 5 μmol/L作用后细胞形态(A1、A2、A3、A4分别为对照组及13-cis RA处理24 h、72 h、144 h);B:SK-N-BE2细胞经13-cis RA作用144 h后细胞形态(B1、B2、B3、B4分别为对照组及RA 1 μmol/L、RA 5 μmol/L、RA 10 μmol/L);C:SK-N-SH细胞经13-cis RA 10 μmol/L作用后细胞形态(C1、C2、C3、C4分别为对照组及13-cis RA处理24 h、72 h、144 h) 13-cis RA:13-cis retinoic acid;A:SH-SY5Y cell after 5 μmol/L 13-cis RA treatment (A1,A2,A3,A4 refer to control group,13-cis RA treatment 24 h,72 h,144 h); B:SK-N-BE2 cell after 13-cis RA treatment for 144 h (B1,B2,B3,B4 refer to control group,RA 1 μmol/L,RA 5 μmol/L,RA 10 μmol/L);C:SK-N-SH cell after 10 μmol/L 13-cis RA treatment (C1,C2,C3,C4 refer to control group,13-cis RA treatment 24 h,72 h,144 h)

图2
SH-SY5Y、SK-N-BE2 和SK-N-SH细胞经13-cis RA作用后相差显微镜观察细胞形态变化(×200)
Figure 2
Morphological changes after 13-cis RA treatment in SH-SY5Y,SK-N-BE2 and SK-N-SH cells (×200)
2.3 细胞培养上清液中NSE水平测定

SK-N-BE2经不同浓度13-cis RA作用72 h后NSE显著升高,与对照组比较差异有统计学意义(F=27.00,P<0.000 1)。SH-SY5Y及SK-N-SH细胞随着13-cis RA浓度增加,作用时间延长,NSE水平有所增加,但差异无统计学意义(F=5.24,P=0.23;F=14.89,P=0.78),见图3

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图3
SK-N-BE2、SH-SY5Y 和SK-N-SH细胞采用13-cis RA作用后酶联免疫吸附法测定NSE水平
Figure 3
NSE concentrations were determined by enzyme linked immunosorbent assay after 13-cis RA treatment in SK-N-BE2,SH-SY5Y and SK-N-SH cells
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注:NSE:神经元特异性烯醇化酶;13-cis RA:13-顺式维甲酸;与对照组比较,aP<0.05 NSE:neuron-specific enolase;13-cis RA:13-cis retinoic acid;compared with control group,aP<0.05

图3
SK-N-BE2、SH-SY5Y 和SK-N-SH细胞采用13-cis RA作用后酶联免疫吸附法测定NSE水平
Figure 3
NSE concentrations were determined by enzyme linked immunosorbent assay after 13-cis RA treatment in SK-N-BE2,SH-SY5Y and SK-N-SH cells
2.4 CCK-8检测细胞增殖变化

SH-SY5Y细胞经13-cis RA作用72 h后,相对于对照组,细胞存活率均超过100%,细胞增殖在药物作用48 h达到最高值,不同药物浓度促进细胞增殖差异有统计学意义(F=7.864,P=0.001),见表1。SK-N-SH细胞经13-cis RA作用72 h低药物浓度组(1、5 μmol/L)出现轻度抑制细胞生长,与高药物浓度组(10、20 μmol/L)比较差异有统计学意义(F=44.103,P=0.000 1),见表2。SK-N-BE2细胞经13-cis RA作用72 h后明显抑制细胞增殖,不同药物浓度之间比较差异有统计学意义(F=59.646, P=0.000 1),见表3

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表1

13-cis RA作用后SH-SY5Y细胞存活率(%,±s)

Table 1

The cell viability of SH-SY5Y after 13-cis RA treatment(%,±s)

表1

13-cis RA作用后SH-SY5Y细胞存活率(%,±s)

Table 1

The cell viability of SH-SY5Y after 13-cis RA treatment(%,±s)

13-cis RA(μmol/L)24 h48 h72 h
1123.00±14.67199.14±88.75104.33±55.43
5119.20±17.55153.56±15.89111.51±54.14
10112.10±28.76127.29±6.39113.52±14.76
20105.10±1.15121.49±35.81106.20±25.20
F1.2797.8640.084
P0.3020.0010.968

注:13-cis RA:13-顺式维甲酸 13-cis RA:13-cis retinoic acid

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表2

13-cis RA作用后SK-N-SH细胞存活率(%,±s)

Table 2

The cell viability of SK-N-SH after 13-cis RA treatment(%,±s)

表2

13-cis RA作用后SK-N-SH细胞存活率(%,±s)

Table 2

The cell viability of SK-N-SH after 13-cis RA treatment(%,±s)

13-cis RA(μmol/L)24 h48 h72 h
1133.33±27.4299.01±20.7195.93±6.26
5121.19±13.23104.70±38.4993.94±8.56
10141.50±29.06125.10±14.99113.54±5.99
20125.17±18.29122.30±47.30119.60±2.60
F1.7121.90444.103
P0.189 00.154 00.000 1

注:13-cis RA:13-顺式维甲酸 13-cis RA:13-cis retinoic acid

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表3

13-cis RA作用后SK-N-BE2细胞存活率(%,±s)

Table 3

The cell viability of SK-N-BE2 after 13-cis RA treatment(%,±s)

表3

13-cis RA作用后SK-N-BE2细胞存活率(%,±s)

Table 3

The cell viability of SK-N-BE2 after 13-cis RA treatment(%,±s)

13-cis RA(μmol/L)24 h48 h72 h
1137.12±66.07135.56±39.9070.50±3.83
5105.50±35.19122.33±11.0172.10±2.89
10149.10±41.88141.21±13.6693.57±4.83
20126.80±81.26130.50±10.3384.67±3.87
F0.8182.12659.646
P0.496 00.121 00.000 1

注:13-cis RA:13-顺式维甲酸 13-cis RA:13-cis retinoic acid

2.5 流式细胞仪检测细胞凋亡

SH-SY5Y细胞经13-cis RA作用96 h及120 h,10 μmol/L浓度较对照组细胞凋亡明显增加,差异有统计学意义(F=16.21,P=0.011;F=16.04,P=0.016)。SK-N-SH细胞经13-cis RA作用48 h,1 μmol/L及10 μmol/L浓度较对照组细胞凋亡明显增加,差异均有统计学意义(F=15.05,P=0.012;F=31.18,P=0.005)。SK-N-BE2细胞经13-cis RA作用120 h,不同浓度(1、5、10 μmol/L)引起细胞凋亡与对照组比较差异均有统计学意义(F=9.05,P=0.030;F=11.38,P=0.028;F=7.88,P=0.041)。具体凋亡情况见图4

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图4
SH-SY5Y、SK-N-SH 和SK-N-BE2细胞采用13-cis RA作用后流式细胞仪检测细胞凋亡
Figure 4
Cell apoptosis was assayed with flow cytometry after 13-cis RA treatment in SH-SY5Y,SK-N-SH and SK-N-BE2 cells
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注:13-cis RA:13-顺式维甲酸;与对照组比较,aP<0.05 13-cis RA:13-cis retinoic acid;compared with control group,aP<0.05

图4
SH-SY5Y、SK-N-SH 和SK-N-BE2细胞采用13-cis RA作用后流式细胞仪检测细胞凋亡
Figure 4
Cell apoptosis was assayed with flow cytometry after 13-cis RA treatment in SH-SY5Y,SK-N-SH and SK-N-BE2 cells
3 讨论

NB是儿童期最常见的起源于交感神经系统的颅外恶性实体肿瘤,采用综合性治疗,使低危、中危及无MYCN扩增患者预后大幅提高[2,3,4],但晚期NB的预后仍很差。研究报道Ⅳ期NB预计5年生存率为30%~50%[5,6,7]

NB具有自行消退逆转的独特生物学特性,因此为诱导分化疗法提供了理论依据。RA及其受体具有控制细胞分化、增殖和凋亡的能力[8],能够使NB细胞向正常神经细胞方向分化[9]。然而RA的作用机制并不清楚,研究报道RA在NB细胞系中能下调MYCN基因的表达[10],提示RA诱导NB细胞分化可能与降低MYCN的表达有关。Matthay和Reynolds[11]研究表明小剂量13-cis RA对治疗NB的微小残留病灶无效果,大量、间歇应用较小量、长期应用更有效。如何更好地应用RA、RA针对哪些类型NB有效是值得探讨的问题。

根据细胞形态及生长特性,NB细胞可分为3类,各自具有显著特征[12]: N型原始神经母细胞型,细胞胞体小而圆,胞质较少,有神经元样突起;S型细胞胞体大而扁平,胞质丰富,表现为表皮样或胶质细胞样形态;I型,即中间型,胞体小而扁平。I型细胞特异性地表达CD133等干细胞标志蛋白,恶性程度最高,被认为是NB干细胞(NBSC)[13],SK-N-BE2细胞中含I型细胞比例最高,常被作为NBSC细胞系进行相关研究。SK-N-SH及SH-SY5Y细胞均属于S型细胞。有研究发现抗肿瘤药物8-氯腺苷作用于SH-SY5Y细胞48 h后细胞发生明显凋亡,而SK-N-SH细胞却未见凋亡[14]。同种药物作用于同种类型NB细胞,但作用机制并不相同。因此,研究RA对不同NB细胞株的作用及机制,将为不同类型的NB患者应用RA疗效预测提供理论依据。

SK-N-BE2细胞株来源于多次化疗及放疗的扩散性NB患儿骨髓穿刺物,SK-N-SH细胞是从1例有3年NB病史的前列腺癌患者脑部转移灶中建立的,SH-SY5Y细胞来源于1970年建立的NB患者转移瘤灶细胞SK-N-SH经3次克隆后的亚系。本研究发现这3种细胞株经13-cis RA作用7 d,细胞出现多个轴突树突状突起、细胞呈极性、细胞器增多等现象,提示向正常神经细胞方向分化。ELISA检测显示随着13-cis RA作用时间延长NSE水平升高,证实13-cis RA对不同的NB细胞体外能产生明显的诱导分化作用,与文献[9]报道一致。

FISH检测发现具有NBSC特征的SK-N-BE2细胞MYCN扩增阳性。MYCN扩增在NB中已被确认为预后不良指标[15]MYCN的表达下调与恶性表型的转良相一致,但目前尚无直接针对MYCN的拮抗剂,主要通过各种途径抑制MYC的转录及干扰其蛋白的稳定而降低MYCN的表达[16]。SK-N-BE2细胞经13-cisRA作用后细胞从成团样聚集生长到细胞极性化改变,形态发生变化最明显,NSE水平明显增高,提示其对RA诱导分化效果比SH-SY5Y和SK-N-SH明显。但FISH检测MYCN仍然呈阳性扩增,提示13-cis RA虽然能在数量上抑制肿瘤细胞,形态上诱导肿瘤细胞分化,但对NB细胞恶性生物学特征之一MYCN扩增,在DNA水平上无明显改善。MYCN持续扩增阳性代表预后不良,也提示13-cis RA临床应用具有一定局限。

本研究中CCK-8检测提示13-cis RA作用48 h内,对细胞抑制作用并不明显。研究报道NB细胞单独采用RA作用24 h后相对于未用药对照组未能减少细胞凋亡,而和蛋白酶体抑制剂MG132联合作用3 d后,细胞凋亡比例可达到40%,因此联合用药能够抵消RA对细胞存活的作用,证实RA短时间内作用有促进细胞增殖的作用[17]。不同浓度13-cis RA导致NB细胞凋亡的程度与肿瘤细胞种类、药物浓度及作用时间有关。

总之,3种NB细胞株对13-cis RA敏感程度不一,可能与MYCN扩增情况及细胞本身分化程度相关。13-cis RA能够抑制NB细胞增殖,诱导其分化,但对于MYCN扩增阳性的患者可能需要13-cis RA协同其他药物联合治疗才能改变其恶性生物学特征。

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