从体内和体外实验2个方面探讨微小RNA-30e(miR-30e)在脓毒症诱导急性肺损伤(ALI)发生时的差异表达及其与炎性因子IL-1β、TNF-α表达的相关性。
30只雄性SD大鼠随机等量分为5组:正常对照组,脓毒症3、6、12、24 h组,腹腔注射脂多糖(LPS)10 mg/kg构建脓毒症大鼠ALI模型。体外培养大鼠肺泡巨噬细胞株NR8383,分为空白对照组和以终质量浓度1 mg/L LPS刺激3、6、12及24 h组,采用反转录聚合酶链反应检测IL-1β、TNF-α及miR-30e表达水平,并观察大鼠肺组织病理改变。
脓毒症组大鼠肺组织中IL-1β、TNF-α水平均较正常对照组明显上调,差异均有统计学意义(P均<0.01);HE染色示脓毒症组大鼠肺组织呈ALI改变;脓毒症组大鼠3、6、12、24 h肺组织miR-30e表达水平分别为0.26±0.02、0.41±0.08、0.29±0.05和0.18±0.05,均明显低于正常对照组(1.23±0.24),差异均有统计学意义(P均<0.01);NR8383细胞中,与空白对照相比,LPS刺激不同时间点炎性因子IL-1β、TNF-α水平均明显上调,差异均有统计学意义(P均<0.01);LPS刺激3、6、12、24 h时间点细胞中miR-30e表达水平分别为0.27±0.04、0.55±0.05、0.65±0.02、0.41±0.10,均明显低于空白对照组(1.17±0.21),差异均有统计学意义(P均<0.01);各实验组大鼠肺组织中miR-30e的表达与IL-1β、TNF-α水平均呈负相关(IL-1β:r=-0.417,P=0.022;TNF-α:r=-0.437,P=0.016);LPS刺激NR8383细胞后不同时间点细胞中miR-30e的表达与IL-1β、TNF-α水平亦均呈负相关(IL-1β:r=-0.713,P=0.003;TNF-α:r=-0.712,P=0.002)。
miR-30e在脓毒症大鼠诱导ALI发生时的表达量显著下调,并与炎性因子IL-1β、TNF-α表达水平呈负相关,有望成为脓毒症ALI早期诊断、治疗、预后评估新的生物学标志。
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脓毒症是由病原微生物感染引起的全身炎性反应综合征[1,2,3]。微小RNAs又简称miRNAs,可在转录后水平调控蛋白的表达。近几年大量研究表明miRNA与脓毒症关系密切[4,5,6],有望成为脓毒症诊断、治疗和预后重要的生物学标志物。微小RNA-30e(miR-30e)是miR-30家族的成员之一,在脓毒症领域的研究报道较少。肺脏是脓毒症发生时最早受累的器官,本研究就脓毒症大鼠受损肺组织及脂多糖(LPS)诱导的大鼠肺泡巨噬细胞不同时间点miR-30e的差异表达展开研究,并通过探讨其与炎性因子表达的相关性来说明miR-30e在脓毒症诱导急性肺损伤(ALI)中所起的作用。
大鼠肺泡巨噬细胞株NR8383(购自中国科学院细胞库);Ham F-12K培养基(Sigma-Aldrich,美国);胎牛血清(Gibco,美国);LPS(E.coli,O111:B4,Sigma-Aldrich,美国),TRIzol RNA提取液(Invitrogen,美国),PrimeScript反转录试剂盒和实时荧光定量反转录-聚合酶链反应(RT-PCR)试剂盒(Takara,日本),PCR引物(Invitrogen,美国),氯仿、异丙醇及无水乙醇等均为国产分析纯。
30只雄性SD大鼠(200~250 g,8周),购自广东省医学实验动物中心,动物许可证号:SCXK(粤)2013-0002。按照安全随机方法等量分为正常对照组和脓毒症3、6、12、24 h 4个时相组,脓毒症组大鼠腹腔注射LPS 10 mg/kg(用9 g/L盐水溶解),正常对照组腹腔注射等量9 g/L盐水。实验完成后,放血处死大鼠,取肺组织,一部分用40 g/L多聚甲醛溶液固定,用于病理切片;另一部分标本于-196 ℃液氮速冻,放于-80 ℃冰箱中保存备用。
大鼠肺泡巨噬细胞NR8383培养在含15 g/L胎牛血清、1.5 g/L碳酸氢钠、2 mmol/L L-谷氨酰胺的Ham's F-12K培养基中,37 ℃,50 mL/L CO2,2~3 d换液1次,3~4 d传代1次。按1×103个/L接种于6孔板,每孔2 mL,实验分为5组:空白对照组及LPS(1 mg/L)处理3、6、12、24 h组,1 000 r/min(离心半径为15 cm)离心5 min收集细胞沉淀。
肺组织总RNA和细胞总RNA的提取按照TRIzol试剂要求进行,用超微量紫外分光光度计测定总RNA 260 nm和280 nm处吸光度(A)值,鉴定纯度和测定浓度。反转录反应按照PrimeScript反转录试剂盒进行,PCR引物序列由上海捷瑞生物公司合成,引物序列见表1。反应条件:95 ℃ 30 s,40个扩增循环(95 ℃ 5 s,60 ℃ 34 s)。采用ABI 7500荧光定量PCR仪检测和2-ΔΔCt相对定量法进行数据分析。
基因名称 | 序列号 | 引物序列(5'→3') |
---|---|---|
miR-30e | MIMAT0000805 | TGTAAACATCCTTGACTGGAAG |
TNF-α | NM_012675.3 | 上游:CCAACAAGGAGGAGAAGTTCC |
下游:CTCTGCTTGGTGGTTTGCTAC | ||
IL-1β | NM_031512.2 | 上游:GGAACCCGTGTCTTCCTAAAG |
下游:CTGACTTGGCAGAGGACAAAG | ||
GAPDH | NM_017008.4 | 上游:TGATTCTACCCACGGCAAGTT |
下游:TGATGGGTTTCCCATTGATGA |
注:TNF-α:肿瘤坏死因子-α;IL-1β:白细胞介素-1β;GAPDH:3-磷酸甘油醛脱氢酶 TNF-α:tumor necrosis factor-α;IL-1β:interleukin-1β;GAPDH:glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase
取肺组织,经常规固定、脱水、包埋、切片、HE染色后,光镜下观察并拍照。
应用SPSS 19.0软件进行数据分析,数据以±s表示,不同时间点多个均数比较采用单因素方差分析,2组均数比较采用t检验,行相关性检验,双变量都服从正态分布时采用Pearson相关分析,不服从则采用Spearman相关分析。P<0.05为差异有统计学意义。
正常对照组大鼠一般情况良好。LPS处理组大鼠出现精神反应差、呼吸急促、体温上升、肌张力下降、腹泻等内毒素血症表现,部分大鼠口鼻有红色泡沫样液体溢出。
肺组织石蜡切片HE染色显示,正常对照组大鼠肺组织结构完整,形态正常,肺泡腔清晰,腔内无渗液,肺泡壁光滑,肺泡和肺间质无炎性细胞浸润(图1A);脓毒症组大鼠肺组织可见结构破坏,肺泡膨胀不全、肺泡融合或塌陷,肺泡腔内有渗出液;肺泡间隔明显增厚,可见大量炎性细胞浸润;肺组织毛细血管扩张、淤血,管腔内充满红细胞,甚至有血栓形成,随着脓毒症炎症损伤时间的延长,肺组织损伤程度不断加重(图1B,图1C,图1D,图1E)。
注:A、B、C、D、E分别为正常对照组和脓毒症3、6、12、24 h组大鼠肺组织病理改变 A,B,C,D,E respectively for histopathologic observation of lung tissue in normal control group and 3,6,12,24 hours sepsis group
脓毒症3、6、12、24 h组IL-1β、TNF-α的表达较正常对照组显著上升,差异均有统计学意义(P均<0.01),且在脓毒症3 h时达到最高峰,随后开始下降(表2)。
组别 | 例数 | IL-1β | TNF-α | miR-30e |
---|---|---|---|---|
正常对照组 | 6 | 0.90±0.85 | 0.83±0.24 | 1.23±0.24 |
脓毒症3 h组 | 6 | 103.84±5.87a | 85.80±9.84a | 0.26±0.02a |
脓毒症6 h组 | 6 | 18.98±5.14a | 19.00±1.25a | 0.41±0.08a |
脓毒症12 h组 | 6 | 2.93±0.23a | 2.97±0.39a | 0.29±0.05a |
脓毒症24 h组 | 6 | 4.46±0.20a | 4.78±1.33a | 0.18±0.05a |
F值 | 950.977 | 387.084 | 39.707 | |
P值 | 0.000 | 0.000 | 0.000 |
注:IL-1β:白细胞介素-1β;TNF-α:肿瘤坏死因子-α;与正常对照组比较,aP<0.01 IL-1β:interleukin-1β;TNF-α:tumor necrosis factor-α;compared with normal control group,aP<0.01
脓毒症组大鼠肺组织miR-30e表达较正常对照组明显下降,差异均有统计学意义(P均<0.01),其中脓毒症24 h组下降最明显(表2)。
LPS刺激3、6、12、24 h后细胞中IL-1β、TNF-α的表达水平较空白对照组显著上升,差异均有统计学意义(P均<0.01),在LPS 3 h组时达到最高峰,随后开始下降(表3)。
组别 | 样本数(孔) | IL-1β | TNF-α | miR-30e |
---|---|---|---|---|
空白对照组 | 3 | 0.94±0.90 | 0.88±0.14 | 1.17±0.21 |
LPS 3 h组 | 3 | 32.05±5.95a | 162.79±18.27a | 0.27±0.04a |
LPS 6 h组 | 3 | 22.85±5.20a | 89.50±15.71a | 0.55±0.05a |
LPS 12 h组 | 3 | 8.61±0.66a | 13.17±0.99a | 0.65±0.02a |
LPS 24 h组 | 3 | 7.90±0.24a | 9.76±2.14a | 0.41±0.10a |
F值 | 38.091 | 124.931 | 30.967 | |
P值 | 0.000 | 0.000 | 0.000 |
注:LPS:脂多糖;IL-1β:白细胞介素-1β;TNF-α:肿瘤坏死因子-α;与空白对照组比较,aP<0.01 LPS:lipopolysaccharide;IL-1β:interleukin-1β;TNF-α:tumor necrosis factor-α;compared with blank control group,aP<0.01
LPS刺激3、6、12、24 h后细胞中miR-30e表达水平较空白对照组明显下降,差异均有统计学意义(P均<0.01),其中LPS 3 h组下降最明显(表3)。
各实验组大鼠肺组织中miR-30e与IL-1β及TNF-α水平均呈负相关(IL-1β:r=-0.417,P=0.022;TNF-α:r=-0.437,P=0.016);LPS刺激NR8383细胞后不同时间点细胞中miR-30e的表达与IL-1β及TNF-α水平亦均呈负相关(IL-1β:r=-0.713,P=0.003;TNF-α:r=-0.712,P=0.002)。
脓毒症是各种微生物及免疫原性物质引起的机体免疫应答性反应。在发生严重脓毒症时,可序贯出现多个器官的功能损伤,形成多器官障碍,其中肺脏首当其冲,最终发展成为ALI甚至急性呼吸窘迫综合征(ARDS)。目前脓毒症-ALI和ARDS病死率已达25%~40%[8],成为重症监护室患者死亡的首要原因之一,因此,探索脓毒症-ALI的生物学标志,对疾病的早期诊断、治疗效果判断、预后评估具有重要的现实意义。
miRNA是一类可以在转录后调控基因表达的长21~25个核苷酸的小分子RNA。已有大量研究表明miRNA参与到脓毒症免疫炎症的发生发展,并有望成为辅助诊断脓毒症和判断预后的潜在生物标记物[4,5,6,9]。而目前国内外对miRNA在ALI/ARDS发生发展中所起作用的研究不多,陈丽等[10]发现miR-146a与miR-29a在新生大鼠ALI发生时可出现差异表达。王斌等[11]用生物芯片的方法分析ALI/ARDS小鼠肺组织,发现有48个miRNAs明显差异表达,而这些差异表达miRNAs的靶基因可能参与调控炎症相关的信号通路。miR-30e(又叫miR-30e-5p),参与脂肪细胞分化[12]、细胞衰老[13]、乳腺癌细胞的凋亡和再生[14]、肿瘤细胞自噬[15]、缺血性心肌损伤[16]、上皮细胞间质转化[17]等一系列生命活动,与免疫炎症和脓毒症的相关研究虽报道较少,但该家族与炎症的关系却不可忽视,Wu等[18]发现用LPS刺激人足细胞可显著下调miR-30家族。另外miR-30家族靶蛋白Notch1[18]可增强LPS诱导激活的NF-κB信号通路活性,进一步增强巨噬细胞的炎性反应。而miR-30e靶向的另一个蛋白UCP2[19],能通过下调ROS水平,减轻炎性反应[20]。本研究复制脓毒症诱导大鼠ALI模型,光镜下观察脓毒症各组大鼠肺组织呈ALI改变,且随着时间的延长损伤程度逐渐加重。IL-1β、TNF-α是快速反应炎性因子,在炎症发生4~6 h即可达到高峰,是启动"瀑布样"炎性反应最上游的细胞因子,在一定程度上可反映病情的程度和预后。本研究中,各脓毒症组IL-1β、TNF-α水平较正常对照组均明显上升,在3 h达到高峰后开始下降。miR-30e表达量较正常对照组显著降低,在24 h达到最低,分析得出二者呈明显负相关。提示miR-30e与脓毒症诱导ALI的发生发展具有紧密相关性,而这种相关性很可能与调控炎性反应的进展有关。
肺泡巨噬细胞是一种在肺损伤时被激活并参与到防御和免疫的细胞,在脓毒症肺损伤发生时发挥重要作用。该细胞在受到LPS刺激时可通过细胞表面Toll样受体4活化核转录因子-κB启动细胞炎性反应,从而诱导多种促炎因子如IL-1β、TNF-α等的大量释放。本研究采用LPS成功诱导了大鼠肺泡巨噬细胞的炎性反应,实验观察到刺激组IL-1β、TNF-α显著升高,在3 h即达到高峰,随后呈下降趋势,与Ren等[21]的研究结果相符。刺激组miR-30e的表达较空白对照组明显下降,且与IL-1β、TNF-α的表达呈负相关,与动物实验结果一致,充分说明miR-30e在脓毒症诱导ALI的发生发展中发挥着重要作用,而这种作用很可能是通过调控炎性反应实现的。
综上,在脓毒症诱导ALI发生时,miR-30e的表达量显著下调,并与炎性因子水平呈负相关,进一步推测miR-30e可能负向调控炎性反应,抑制脓毒症发生时炎症的进展,有望成为脓毒症ALI和ARDS诊断和治疗新的作用靶点。本研究的不足之处在于未深入做具体机制的研究。由于miR-30e在炎症领域的研究尚处于初始阶段,下一步计划探讨miR-30e负向调控炎性反应的靶基因及靶基因参与炎性反应的机制,为防治脓毒症所致的ALI和ARDS提供更有力的实验依据。