探讨白细胞介素-4(IL-4)基因组蛋白乙酰化修饰水平改变及其在川崎病(KD)发病机制中的作用。
选取2016年10月至2018年12月在深圳市儿童医院就诊的KD患儿36例为研究对象,同年龄健康儿童28例作为对照组。KD患儿分别于急性期及静脉用丙种球蛋白(IVIG)治疗有效后4~5 d取血备检。采用染色质免疫共沉淀-荧光定量PCR检测外周血CD4+ T淋巴细胞IL-4基因启动子、增强子Va组蛋白H4乙酰化和p300、CREB结合蛋白(CBP)水平;流式细胞术检测外周血Ⅱ型辅助性T淋巴细胞(Th2)(CD4+ IL-4+)比例及CD4+ T淋巴细胞中磷酸化信号转导及转录活化因子6(pSTAT6)、GATA结合蛋白3(GATA3)、活化T细胞核因子1(NFAT1)、Ⅱ型转化生长因子β受体(TGF-βRⅡ)、磷酸化L型氨基酸转运蛋白1(pLAT1)蛋白表达水平;荧光定量PCR检测CD4+ T淋巴细胞IL-4、IL-5、IL-13、IL-4受体α(IL-4Rα)、Ⅰ型转化生长因子β受体(TGF-βRⅠ)、性别决定区Y框蛋白4(SOX4) mRNA表达水平;酶联免疫吸附试验测定血浆IL-4、转化生长因子β(TGF-β)水平。
1.KD患儿Th2细胞比例、功能相关分子(IL-4、IL-5和IL-13)表达及IL-4基因启动子、增强子Va组蛋白乙酰化水平均明显高于对照组,差异均有统计学意义(均P<0.05),其中冠状动脉损伤组(CAL)前述指标均高于无冠状动脉损伤组(NCAL),差异均有统计学意义(均P<0.05),经IVIG治疗后显著降低,差异均有统计学意义(均P<0.05)。2.与对照组比较KD患儿外周血CD4+ T淋巴细胞p300、CBP与IL-4基因启动子、增强子Va结合水平明显上调,差异均有统计学意义(均P<0.05),且p300与IL-4基因启动子、增强子Va结合水平与后者表达均呈正相关(r=0.72、0.43,均P<0.05),经IVIG治疗后呈不同程度下降,差异均有统计学意义(均P<0.05)。其中CAL组p300、CBP与IL-4基因启动子、增强子Va结合水平明显高于NCAL组,差异均有统计学意义(均P<0.05)。3.与对照组比较,KD患儿血浆IL-4水平及CD4+ T淋巴细胞IL-4Rα/STAT6/GATA-3、pLAT1/NFATc1表达显著增高,差异均有统计学意义(均P<0.05),血浆TGF-β水平及下游信号分子TGF-βRⅡ/TGF-βRⅠ/SOX4表达明显下调,差异均有统计学意义(均P<0.05),其中CAL组血浆IL-4水平及CD4+ T淋巴细胞IL-4Rα/STAT6/GATA-3、pLAT1/NFATc1表达均高于NCAL组,血浆TGF-β水平及下游信号分子TGF-βRⅡ/TGF-βRⅠ/SOX4表达低于NCAL组,差异均有统计学意义(均P<0.05),经IVIG治疗后呈不同程度的回调,差异均有统计学意义(均P<0.05)。
IL-4基因组蛋白H4过度乙酰化可能是导致KD患儿免疫功能异常的重要原因之一。
版权归中华医学会所有。
未经授权,不得转载、摘编本刊文章,不得使用本刊的版式设计。
除非特别声明,本刊刊出的所有文章不代表中华医学会和本刊编委会的观点。
川崎病(KD)是一种急性全身性血管炎症性疾病,可能与感染诱发的免疫异常有关[1,2,3],但诱发免疫异常的调控机制尚不完全清楚。Ⅱ型辅助性T淋巴细胞(Th2)是一类T淋巴细胞亚群,参与调节免疫反应,并与多种自身免疫性疾病的发病机制有关[4,5,6]。白细胞介素(IL)-4是Th2细胞的关键因子,主要参与调节其分化、成熟及免疫功能[4,5]。本研究探讨KD患儿IL-4基因组蛋白乙酰化修饰改变及其相关的信号调机制,旨在进一步阐明KD的免疫发病机制。
按就诊顺序随机选取2016年10月至2018年12月来深圳市儿童医院就诊的KD患儿36例。诊断参照日本川崎病研究协会发布的标准[7]。其中男19例,女17例;年龄1~5.3岁[(2.9±1.3)岁];病程在10 d以内,均于就诊及随访6个月内定期接受心脏彩色多普勒超声检查,并根据冠状动脉损伤情况分为冠状动脉损伤(CAL)组(16例)和无冠状动脉损伤(NCAL)组(20例)。所有外周血样本取自急性期KD患儿及IVIG治疗有效4~5 d(KD组和KDIVIG组)。同期健康儿童28例为对照组(Ctrl组)。其中男15例,女13例;年龄1.2~4.8岁[(2.8±1.3)岁]。各组受试者性别、年龄比较差异均无统计学意义(均P>0.05)。本研究通过医院医学伦理委员会批准(批准文号:201401053),受试者监护人均已知情同意,并签署知情同意书。
(1)无菌采集KD患儿及健康对照儿童3 mL静脉血,乙二胺四乙酸二钠盐(EDTA·Na2)抗凝,采用单克隆抗体包装的磁珠(美国Life公司,111.45D)分离外周血CD4+ T淋巴细胞,加入Lysis裂解液,匀浆、纯化总RNA;(2)参照试剂盒(美国Life公司,K1632)步骤,采用Oligo dT引物,经反转录PCR合成cDNA。(3)根据IL-4、IL-5、IL-13、IL-4受体α(IL-4Rα)、Ⅰ型转化生长因子β受体(TGF-βRⅠ)及性别决定区Y框蛋白4 (SOX4)基因mRNA序列设计引物(表1),以合成的cDNA为模板,按荧光定量PCR试剂盒(大连宝生物,RR420A)说明,进行相对定量分析。
基因 | 引物序列 | 复性温度(℃) | 扩增位置 | 产物大小(bp) |
---|---|---|---|---|
IL-4 | 正向引物:5′-CAGTTCTACAGCCACCATGAG-3′ | 56 | 294~470 | 197 |
反向引物:5′-ATCGTCTTTAGCCTTTCCAAG-3′ | ||||
IL-5 | 正向引物:5′-TGCTTCTGCATTTGAGTTTGC-3′ | 56 | 52~127 | 76 |
反向引物:5′-GCACTTGTGGGAATTTCTGTG-3′ | ||||
IL-13 | 正向引物:5′-GCATGGTATGGAGCATCAACC-3′ | 58 | 208~316 | 109 |
反向引物:5′-CTCAGCATCCTCTGGGTCTTC-3′ | ||||
IL-4Rα | 正向引物:5′-GCGGATAACTATACACTGGAC-3′ | 57 | 484~687 | 204 |
反向引物:5′-AATGTTGACTGCATAGGTGAG-3′ | ||||
TGF-βRⅠ | 正向引物:5′-AATGGGCTTAGTATTCTGGG-3′ | 55 | 1 285~1 437 | 153 |
反向引物:5′-ATATTTGGCCTTAACTTCTG-3′ | ||||
SOX4 | 正向引物:5′-GCAAGATCATGGAGCAGTCG-3′ | 60 | 418~585 | 168 |
反向引物:5′-TGGGCCGGTACTTGTAGTCG-3′ | ||||
β-actin | 正向引物:5′-GAGCTACGAGCTGCCTGACG-3′ | 56~61 | 787~906 | 120 |
反向引物:5′-GTAGTTTCGTGGATGCCACAG-3′ |
注:IL-4:白细胞介素4;IL-5:白细胞介素5;IL-13:白细胞介素13;IL-4Rα:白细胞介素4受体α;TGF-βRⅠ:Ⅰ型转化生长因子β1受体;SOX4:性别决定区Y框蛋白4;β-actin:肌动蛋白β IL-4:interleukin-4;IL-5:interleukin-5;IL-13:interleukin-13;IL-4Rα:interleukin-4 receptor α;TGF-βRⅠ:transforming growth factor-β receptor Ⅰ;SOX4:SRY(sex determining region Y)-box 4
(1)用含10 g/L甲醛的PBS溶液重悬部分CD4+ T淋巴细胞,37 ℃孵育10 min;(2)加入终质量浓度1 mg/L胃蛋白酶抑制剂(pepstatin A)、1 mg/L抑肽酶(aprotinin)和1 mmol/L苯甲基磺酰氟(PMSF)的冷PBS溶液洗涤2次后,重新加入200 μL十二烷基磺酸钠(SDS)溶液,0 ℃裂解10 min;(3)按染色质免疫共沉淀(ChIP)试剂盒(美国Upstate公司,17-295)步骤,经超声法片断化基因组DNA为400~600 bp,加入抗-乙酰化组蛋白H4(H4Ac)、抗-p300、抗-CREB结合蛋白(CBP)单克隆抗体,分离、纯化抗体结合DNA;(4)以IL-4基因DNA及H4Ac修饰位点对应序列设计引物,参照荧光定量PCR试剂盒(大连宝生物,RR420A)说明,进行相对定量分析。
(1)所有受试者空腹6 h后,无菌采取2 mL外周血,经肝素抗凝后,300×g离心10 min,分离血浆,-80 ℃冰箱冻存备用;(2)应用酶联免疫吸附试验(ELISA)试剂盒(美国Life公司,BMS225-2、BMS2065*)测定IL-4、转化生长因子β(TGF-β)水平。
(1)取1 mL抗凝静脉血,经密度-梯度离心法分离外周血单个核细胞,加入终质量浓度300 μg/L佛波酯(PMA)、1 mg/L离子霉素(Ionomycin)、2 μmol/L莫能霉素(Monensin)和1 mL 100 g/L胎牛血清(FBS)的RPMI1640培养基,重悬细胞,于37 ℃、50 mL/L二氧化碳(CO2)条件下刺激培养6 h,经抗体染色检测CD4+ IL-4+ (Th2)细胞比例;(2)采用直标或间标法,经抗体染色后,检测CD4+ T淋巴细胞IL-4、磷酸化信号转导及转录活化因子6(pSTAT6)、GATA结合蛋白3(GATA3)、活化T细胞核因子1(NFAT1)、Ⅱ型转化生长因子β受体(TGF-βRⅡ)、磷酸化L型氨基酸转运蛋白1(pLAT1)表达水平,结果以平均荧光强度表示。
采用SPSS 21.0软件分析,检测结果以±s表示,两两比较采用t检验,P<0.05为差异有统计学意义。
与对照组相比,KD患儿Th2细胞比例,系别相关因子IL-4、IL-5和IL-13表达显著增高,差异均有统计学意义(均P<0.05),其中CAL组上述指标均高于NCAL组(均P<0.05),经IVIG治疗后显著降低(P<0.05)(表2,图1)。采用ChIP检测组蛋白乙酰化修饰水平,显示KD患儿CD4+ T淋巴细胞IL-4基因启动子、增强子Va位点H4Ac水平明显上调(P<0.05),且CAL组IL-4基因启动子、增强子Va位点H4Ac水平均高于NCAL组(P<0.05),经IVIG治疗后均显著降低(P<0.05)(图2)。
组别 | 例数 | Th2 (%) | CD4+ T淋巴细胞 | |||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|
IL-4 | pSTAT6 | GATA3 | pLAT1 | pNFAT1 | TGF-βRⅡ | |||
Ctrl | 28 | 2.52±0.58 | 92.58±31.06 | 73.54±18.43 | 106.12±35.92 | 52.46±12.85 | 86.22±29.40 | 48.24±16.25 |
KD组 | 36 | 5.19±1.76a | 281.61±119.22a | 175.31±49.52a | 257.25±92.48a | 72.43±18.35a | 185.52±49.46a | 28.72±9.84a |
NCAL组 | 20 | 4.32±1.25 | 192.75±62.13 | 145.92±36.23 | 205.85±72.43 | 63.39±16.20 | 158.72±36.41 | 36.16±13.40 |
CAL组 | 16 | 6.28±2.47b | 392.69±170.62b | 212.05±57.65b | 321.50±142.40b | 83.73±19.71b | 219.02±67.40b | 19.42±8.46b |
KDIVIG组 | 36 | 3.38±1.32c | 159.76±68.30c | 128.26±54.82c | 168.32±71.49c | 59.63±15.82c | 108.30±41.79c | 43.28±18.49c |
t值 | 8.53a,2.89b,4.94c | 8.99a,4.46b,5.32c | 11.36a,4.20b,3.82c | 8.97a,2.96b,4.56c | 4.90a,3.40b,3.17c | 9.99a,3.22b,7.16c | 5.61a,4.35b,4.17c |
注:Th2:Ⅱ型辅助性T淋巴细胞;Ctrl:健康对照;KD:川崎病;NCAL:无冠状动脉损伤;CAL:冠状动脉损伤;KDIVIG:静脉输注丙种球蛋白治疗后4~5 d的川崎病;IL-4:白细胞介素4;pSTAT6:磷酸化信号转导及转录活化因子6;GATA3:GATA结合蛋白3;pLAT1:磷酸化L型氨基酸转运蛋白1;pNFAT1:磷酸化活化T细胞核因子1;TGF-βRⅡ:Ⅱ型转化生长因子β受体;与Ctrl组比较,aP<0.05;与NCAL组比较,bP<0.05;与KD组比较,cP<0.05 Th2:hel-per T cells type Ⅱ;Ctrl:healthy controls;KD:Kawasaki disease;NCAL:non-coronary artery lesions;CAL:coronary artery lesions;KDIVIG:Kawasaki disease after intravenous immunoglobulin treatment for 4-5 d;IL-4:interleukin 4;pSTAT6:phosphorylated signal transducer and activator of transcription 6;GATA3:GATA bin-ding protein 3;pLAT1:phosphorylated L-type amino acid transporter 1;NFAT1:nuclear factor 1 of activated T cells;TGF-βRⅡ:transforming growth factor-β1 receptor Ⅱ;compared with control group,aP<0.05;compared with NCAL group,bP<0.05;compared with KD group,cP<0.05
注:Ctrl:健康对照;KD:川崎病;NCAL:无冠状动脉损伤;CAL:冠状动脉损伤;KDIVIG:静脉输注丙种球蛋白治疗后4~5 d的川崎病;β-actin:肌球蛋白β;IL-4:白细胞介素4;IL-5:白细胞介素5;IL-13:白细胞介素13;IL-4Rα:白细胞介素4受体α;TGF-βRⅠ:Ⅰ型转化生长因子β受体;SOX4:性别决定区Y框蛋白4;与Ctrl组比较,aP<0.05;与NCAL组比较,bP<0.05;与KD组比较,cP<0.05 Ctrl:healthy controls;KD:Kawasaki disease;NCAL:non-coronary artery lesions;CAL:coronary artery lesions;KDIVIG:Kawasaki disease after intravenous immunoglobulin treatment for 4-5 d;IL-4:interleukin 4;IL-5:interleukin 5;IL-13:interleukin 13;IL-4Rα:interleukin-4 receptor α;TGF-βRⅠ:transforming growth factor-β receptor Ⅰ;SOX4:SRY(sex determining region Y)-box 4;compared with control group,aP<0.05;compared with NCAL group,bP<0.05;compared with KD group,cP<0.05
注:Ctrl:健康对照;KD:川崎病;NCAL:无冠状动脉损伤;CAL:冠状动脉损伤;KDIVIG:静脉输注丙种球蛋白治疗后4~5 d的川崎病;Pro:启动子;Va:增强子Va;CBP:CREB结合蛋白;与Ctrl组比较,aP<0.05;与NCAL组比较,bP<0.05;与KD组比较,cP<0.05 Ctrl:healthy controls;KD:Kawasaki disease;NCAL:non-coronary artery lesions;CAL:coronary artery lesions;KDIVIG:Kawasaki disease after intravenous immunoglobulin treatment for 4-5 d;Pro:promoter;Va:enhancer Va;CBP:CREB-binding protein;compared with control group,aP<0.05;compared with NCAL group,bP<0.05;compared with KD group,cP<0.05
KD患儿CD4+ T淋巴细胞组蛋白乙酰化酶p300、CBP与IL-4基因启动子、增强子Va结合水平明显上调(均P<0.05),其中p300与IL-4基因启动子、增强子Va结合水平与均后者表达呈正相关(r=0.72、0.43,均P<0.05),经IVIG治疗后显著降低(均P<0.05)(图2)。进一步比较CAL和NCAL组IL-4基因p300/CBP的结合水平,发现CAL组p300、CBP与IL-4基因启动子、增强子Va结合水平明显高于NCAL组(均P<0.05) (图2)。
与对照组相比,急性期KD患儿血浆IL-4水平及TCR信号关键分子pLAT1蛋白水平显著上调(P<0.05),而血浆TGF-β水平明显降低(P<0.05),且CAL组IL-4水平及pLAT1表达均高于NCAL组,TGF-β水平低于NCAL组(P<0.05),经IVIG治疗后明显回调(P<0.05)(表2、表3)。进一步比较各组IL-4、TGF-β及TCR下游信号传导分子的表达,发现KD患儿CD4+ T淋巴细胞IL-4R/STAT6/GATA-3、NFAT1表达显著增高,TGF-βRⅡ/TGF-βRⅡ/SOX4表达明显下调,且CAL组前4项均高于NCAL组、后3项低于NCAL组(P<0.05),经IVIG治疗后均有不同程度回调(P<0.05)(表2、表3,图1)。
组别 | 例数 | IL-4(ng/L) | TGF-β(ng/L) |
---|---|---|---|
Ctrl组 | 28 | 6.22±1.09 | 918.36±195.43 |
KD组 | 36 | 7.68±1.55a | 423.85±138.62a |
NCAL组 | 20 | 6.81±1.27 | 475.10±142.09 |
CAL组 | 16 | 8.77±1.76b | 359.79±108.15b |
KDIVIG组 | 36 | 6.44±1.32c | 685.02±203.19c |
t值 | 4.23a,3.88b,3.65c | 11.84a,2.68b,6.37c |
注:IL-4:白细胞介素-4;ELISA:酶联免疫吸附试验;Ctrl:健康对照;KD:川崎病;NCAL:无冠状动脉损伤;CAL:冠状动脉损伤;KDIVIG:静脉输注丙种球蛋白治疗4~5 d的KD;TGF-β:转化生长因子β;与Ctrl组比较,aP<0.05;与NCAL组比较,bP<0.05;与KD组比较,cP<0.05 IL-4:interleukin 4;ELISA:enzyme-linked immunosorbent assay;Ctrl:healthy controls;KD:Kawasaki disease;NCAL:non-coronary artery lesions;CAL:coronary artery lesions;KDIVIG:KD after intravenous immunoglobulin treatment for 4-5 d;TGF-β:transforming growth factor β;compared with control group,aP<0.05;compared with NCAL group,bP<0.05;compared with KD group,cP<0.05
KD是一种急性自身免疫性疾病,可能与感染引起自身免疫功能过度活化有关[1,2,3],但导致其免疫耐受功能异常的机制仍不完全清楚。Th2细胞是一类T淋巴细胞亚群,通过分泌IL-4、IL-5和IL-13等细胞因子促进B淋巴细胞抗体类型转换而介导体液免疫,其数量或功能失衡可导致机体免疫功能紊乱[4,5,6]。国外报道[8]及本研究观察到KD患儿Th2细胞比例及IL-4、IL-5和IL-13表达显著上调,其中CAL组前述5项均高于NCAL组,经IVIG治疗后显著降低,提示Th2细胞数量及功能异常可能与KD发病机制有关。
IL-4是Th2细胞的关键因子,参与调节其分化、成熟及免疫功能[4,5],其表达受组蛋白乙酰化、细胞因子信号等多种因素调节[9,10]。转录因子可与IL-4基因启动子、增强子Va结合,通过募集组蛋白乙酰化酶p300/CBP而介导上述2个位点的组蛋白发生乙酰化,促使染色质构象发生变化而形成松散的空间结构,进而增强IL-4基因转录[11,12]。本研究显示KD患儿CD4+ T淋巴细胞IL-4基因启动子、增强子Va位点H4Ac及其与p300、CBP的结合水平明显上调,且p300与IL-4基因启动子、增强子Va结合水平与后者表达呈正相关,CAL组前述4项均高于NCAL组,经IVIG治疗后均显著降低,提示急性期KD患儿Th2细胞异常可能与p300/CBP介导的IL-4基因组蛋白过度乙酰化有关。
调节IL-4基因组蛋白乙酰化修饰的信号机制仍不清楚。IL-4可与细胞表面IL-4R受体结合而诱导下游转录因子STAT6发生磷酸化,pSTAT6上调GATA-3表达,二者均可募集p300/CBP结合至IL-4基因,其中STAT6与启动子、增强子Va结合,GATA-3仅与增强子Va结合,并促进相应位点的组蛋白发生乙酰化[10,13]。TCR信号活化可诱导NFAT1与IL-4基因启动子、增强子Va结合并募集p300/CBP,从而增强其组蛋白乙酰化水平[14]。血浆中的TGF-β可与TGF-βRⅡ、TGF-βRⅠ形成聚合物而上调SOX4表达,后者竞争性抑制GATA-3介导的IL-4基因组蛋白乙酰化[15]。另有研究发现,静脉注射的IVIG通过上调TGF-β的表达而促进体内免疫平衡的恢复,从而减轻KD血管损伤[16]。本研究显示,KD患儿血浆IL-4水平、TCR信号关键分子pLAT1蛋白水平显著增加,TGF-β水平明显降低,且CAL组IL-4水平及pLAT1表达均高于NCAL组、TGF-β水平低于NCAL组,经IVIG治疗后明显回调。进一步分析IL-4、TCR及TGF-β下游信号分子,发现KD患CD4+ T淋巴细胞IL-4Rα/STAT6/GATA-3、NFAT1表达显著增高,TGF-βRⅡ/TGF-βRⅠ/SOX4表达明显低于正常对照组,且CAL组前述4项指标均高于NCAL组、后3项指标低于对照组,经IVIG治疗后均有不同程度回调,提示IL-4、TCR信号过度活化及TGF-β信号相对不足可能是导致KD患儿IL-4基因组蛋白过度乙酰化的关键因素,而IVIG或可通过上调TGF-β信号并抑制p300/CBP与IL-4基因结合,进而抑制IL-4表达及促进Th2细胞恢复。
综上,本组研究推测KD患儿IL-4、TCR信号过度活化及TGF-β信号相对不足,促使p300/CBP与IL-4基因结合水平增加,造成后者组蛋白过度乙酰化及转录活性上调,最终导致Th2细胞及IL-4、IL-5和IL-13表达异常。而IVIG或可通过上调TGF-β信号并抑制p300/CBP与IL-4结合,进而抑制IL-4表达及促进Th2细胞恢复。但是否同时存在其他信号参与调节IL-4基因组蛋白乙酰化仍有待进一步研究。
利益冲突 所有作者均声明不存在利益冲突