论著
不同的样本保存方式对流式细胞术检测淋巴细胞亚群结果的影响
中华检验医学杂志, 2019,42(12) : 1059-1062. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1009-9158.2019.12.015
摘要
目的

探讨样本保存时间和温度对流式细胞术检测淋巴细胞亚群结果的影响。

方法

采用流式细胞术检测青海省人民医院2018年10月26日至2019年3月30日住院和门诊患者共53例全血样本的淋巴细胞亚群。于样本采集后4 h内完成检测(对照组)、4 h内完成细胞染色,将已染色样本室温保存(处理组A)24 h、36 h后再上机检测、样本室温保存(处理组B)24 h、48 h、72 h后、样本4 ℃保存(处理组C)24 h、48 h、72 h后,分别进行淋巴细胞亚群的检测与分析。实验数据采用SPSS 19.0统计软件进分析。

结果

处理组A中,保存24 h检测的淋巴细胞亚群结果与对照组相比均无显著差异(P>0.05),保存36 h之后检测CD3+及CD3+CD8+T淋巴细胞百分数显著增高[(74.28±11.31)%比(73.78±11.33)%,(32.15±14.82)%比(31.00±14.79)%;P值均<0.05],CD19+细胞百分数明显降低[(15.60±12.23)%比(16.11±12.38)%;P<0.05];处理组B中,保存24 h检测的淋巴细胞亚群结果与对照组相比差异无统计学意义(P>0.05),保存48 h后检测CD19+细胞百分数明显下降[(15.60±12.09)%比(16.11±12.38)%;P<0.05],其他结果无明显改变(P>0.05),保存72 h后检测CD3+及CD3+CD8+T细胞百分数明显升高[(75.78±11.18)%比(73.78±11.33)%,(32.57±14.90)%比(31.00±14.79)%;P值均<0.05],CD19+细胞百分数显著减少[(14.89±11.92)%比(16.11±12.38)%;P<0.05];处理组C中,保存24 h检测的淋巴细胞亚群结果与对照组相比差异无统计学意义(P>0.05),保存48 h后检测CD3+CD8+T细胞百分数显著升高[(32.03±14.95)%比(31.00±14.79)%;P<0.05],CD19+细胞百分数明显减少[(15.32±11.97)%比(16.11±12.38)%;P<0.05],保存72 h后检测CD3+及CD3+CD8+T细胞百分数升高明显[(75.63±11.08)%比(73.78±11.33)%,(32.62±14.98)%比(31.00±14.79)%;P值均<0.05],CD56+及CD19+细胞百分数显著降低[(8.21±6.52)%比(9.02±6.80)%,(14.83±11.79)%比(16.11±12.38)%;P值均<0.05]。

结论

流式细胞术检测淋巴细胞亚群时,若不能及时完成检测,可将血液样本在室温环境下保存,并于48 h内完成检测;已经过预处理的样本,可在染色后室温保存24 h再进行检测,以上处理方式对检验结果均无显著影响。

引用本文: 李子安, 张晓娜, 阿祥仁. 不同的样本保存方式对流式细胞术检测淋巴细胞亚群结果的影响 [J] . 中华检验医学杂志,2019,42 (12): 1059-1062. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1009-9158.2019.12.015
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流式细胞术(flow cytometry, FCM)是利用流式细胞仪对处在液流当中的细胞或其他生物微粒的理化以及生物学特性(包括细胞大小、细胞表面抗原表达、DNA含量等)进行定量、客观、快速且多参数的相关检测[1,2,3]。目前,应用FCM对血液中T、B淋巴细胞以及自然杀伤细胞(natural killer cell,NK Cell)亚群的检测在临床医学检验中已十分普遍,其对于机体免疫功能的评价、免疫性疾病的诊断、监测及预后都具有十分重要的意义[4,5,6]

 
 
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