论著
尼日菌素对人上皮性卵巢癌细胞的抑制作用及其机制研究
肿瘤研究与临床, 2018,30(9) : 597-602,606. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1006-9801.2018.09.005
摘要
目的

探讨尼日菌素对人上皮性卵巢癌(EOC)A2780和SKOV3细胞的抑制作用,以及尼日菌素抑制细胞迁移和侵袭可能的分子机制。

方法

用不同浓度(0.312 5、0.625、1.25、2.5、5、10、20、40、80 μmol/L)尼日菌素分别作用于A2780和SKOV3细胞,二甲基亚砜(DMSO)处理细胞作为对照组,通过CCK-8法检测不同浓度的尼日菌素对EOC细胞增殖的影响。将A2780和SKOV3细胞分别分为3组:尼日菌素5、10、20 μmol/L处理组,同时以DMSO处理作为对照组,通过Transwell实验分析尼日菌素对EOC细胞迁移及侵袭能力的影响。采用蛋白质印迹法检测经不同浓度尼日菌素处理后上皮细胞-间充质细胞转化(EMT)过程中上皮细胞标志物E-cadherin、间叶细胞标志物Vimentin以及相关转录因子Slug、Snail和Twist的表达,并分析Wnt-β-catenin信号通路相关蛋白Gsk-3β、p-Gsk-3β和β-catenin的表达变化情况。

结果

CCK-8实验结果发现,尼日菌素对A2780细胞[半抑制浓度(IC50)(16.19±0.26)μmol/L]和SKOV3细胞[IC50(11.87±0.21)μmol/L]具有细胞毒性作用(P<0.05)。Transwell迁移实验结果显示,随着尼日菌素作用浓度(5、10、20 μmol/L)的增加,穿膜的A2780和SKOV3细胞数较对照组减少[(121±9)、(92±7)、(59±5)个/高倍视野和(120.4±2.6)、(91.8±5.5)、(80.0±4.0)个/高倍视野,均P<0.05];Transwell侵袭实验显示,A2780和SKOV3细胞的侵袭能力同样随着尼日菌素作用浓度的增加而受到抑制,并呈浓度依赖性下降[(61.2±3.7)、(43.2±4.3)、(23.6±2.1)个/高倍视野和(85.2±7.0)、(65.2±4.6)、(45.6±4.4)个/高倍视野,均P<0.05]。E-cadherin的表达随着尼日菌素作用浓度(5、10、20 μmol/L)的增加而升高,而Vimentin、Slug、Snail、Twist、p-Gsk3β、β-catenin的表达呈浓度依赖性减少(P<0.05)。

结论

尼日菌素可能通过激活Wnt-β-catenin信号通路诱导EOC细胞发生EMT,从而促进EOC细胞的迁移和侵袭。

引用本文: 王稳, 田翔宇, 赵燕, 等.  尼日菌素对人上皮性卵巢癌细胞的抑制作用及其机制研究 [J] . 肿瘤研究与临床,2018,30 (9): 597-602,606. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1006-9801.2018.09.005
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上皮性卵巢癌(EOC)缺乏有效的早期筛查手段,发现时多已处于广泛盆腹腔转移的晚期,病死率高[1]。目前对于晚期EOC的治疗较为棘手,铂类耐药是亟须解决的关键问题。尼日菌素是一种钾离子载体,属于一元酸抗生素,其可以通过抑制上皮细胞-间充质细胞转化(EMT)对乳腺癌、结直肠癌等肿瘤细胞发挥抑制作用,同时可以通过抑制EMT诱导间充质-上皮转化(MET),降低肿瘤细胞的侵袭、迁移能力。本研究分析尼日菌素对EOC细胞的抑制作用,以及尼日菌素抑制EOC细胞迁移和侵袭可能的分子机制,探讨尼日菌素在EOC转移治疗中的应用前景。

1 材料与方法
1.1 细胞及主要试剂

人EOC细胞株A2780购自中国科学院上海生命科学研究院细胞库,SKOV3购自美国典型物种保藏中心(American Type Culture Collection,ATCC),尼日菌素购自美国Sigma公司,兔抗人E-cadherin、Vimentin、Slug、Snail、Twist、Gsk-3β、磷酸化Gsk-3β(p-Gsk-3β)、β-catenin单克隆抗体均购自美国Cell Signaling Technology公司,CCK-8试剂购自日本同仁化学研究所,Transwell小室(8 μm-pores)购自美国Corning公司。

1.2 细胞培养

A2780细胞用含10%胎牛血清的RPMI 1640培养液培养,SKOV3细胞用含10%胎牛血清的McCoy's 5A培养液培养,细胞在37 ℃、5% CO2培养箱中培养,取对数生长期的细胞进行实验。

1.3 CCK-8法检测细胞增殖

将接种A2780和SKOV3细胞的96孔板置于37 ℃、5% CO2培养箱中常规培养24 h,提前配制好不同浓度(0.312 5、0.625、1.25、2.5、5、10、20、40、80 μmol/L)尼日菌素及0.1%终浓度二甲基亚砜(DMSO)(对照组)。分别加入各孔,每组均设5个复孔,培养48 h后取出培养板,在每孔中各加入10 μl CCK-8溶液,放入培养箱中继续培养2 h,用酶标仪测定450 nm波长处各孔的吸光度(A)值。按下式计算细胞活力。

细胞活力(%)=(A尼日菌素-A空白对照)/(A阴性对照-A空白对照)×100%

1.4 Transwell小室检测细胞迁移和侵袭

A2780和SKOV3细胞铺在6孔板中培养24 h后,将不同浓度(5、10、20 μmol/L)尼日菌素及DMSO(对照组)加入培养皿中培养48 h,每个浓度重复3次。利用Transwell小室模拟肿瘤细胞的迁移模型,迁移至Transwell小室下层的细胞用甲醇固定20 min后,0.1%结晶紫染色1 h,PBS冲洗20 min。将小室置于载玻片上,放置于显微镜下,随即于5个视野观察细胞,拍照并计数。将Matrigel基质胶铺于小室膜上层,模拟组织基质膜,其他操作同迁移实验,观察细胞的侵袭能力。

1.5 蛋白质印迹法检测相关蛋白的表达

A2780和SKOV3细胞铺在6孔板中培养24 h后,将不同浓度(5、10、20 μmol/L)尼日菌素及DMSO(对照组)加入培养皿中,细胞加药处理相应时间后,收集细胞,加入含有蛋白酶抑制剂cocktail以及磷酸酶抑制剂的RIPA裂解缓冲液,按不同浓度分别提取细胞总蛋白。应用BCA定量法量取20 μg蛋白,置于10% SDS-PAGE凝胶电泳中分离,后转至PVDF膜中,用含0.1% Tween-20的5%脱脂牛奶室温摇床封闭1 h,4 ℃一抗反应过夜。取出PVDF膜后加入二抗,室温摇床反应1 h,室温下避光配制ECL发光液,加于PVDF膜上,暗室X线底片曝光。采用BCA法取20 μg蛋白确定蛋白浓度。

1.6 统计学方法

采用GraphPad Prism 5软件进行统计学分析,所有数据均为3次独立实验结果,计量资料符合正态分布,用均数±标准差(±s)表示,多组间比较用单因素方差分析,两组间比较采用t检验,P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果
2.1 尼日菌素可以抑制A2780和SKOV3细胞增殖

CCK-8法检测结果显示,与对照组相比,尼日菌素可以抑制细胞增殖,细胞活力随作用浓度的增加而降低,各实验组与对照组相比,差异均有统计学意义(P<0.05)(表1)。尼日菌素作用于A2780和SKOV3细胞的半抑制浓度(IC50)分别为(16.19±0.26)μmol/L(95% CI 1.077~1.341)和(11.87±0.21)μmol/L(95%CI 1.003~1.146),提示与A2780细胞相比,SKOV3细胞对尼日菌素更敏感。

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表1

CCK-8法检测不同浓度尼日菌素对人上皮性卵巢癌A2780、SKOV3细胞活力的影响(%,±s

表1

CCK-8法检测不同浓度尼日菌素对人上皮性卵巢癌A2780、SKOV3细胞活力的影响(%,±s

组别A2780细胞PaSKOV3细胞Pa
对照组100.0±0.0 100.0±0.0 
尼日菌素(μmol/L)    
 0.312 595.3±3.10.03896.8±2.00.032
 0.62587.4±3.40.00288.8±2.60.001
 1.2580.4±3.30.00083.2±2.20.000
 2.574.7±2.3<0.00077.1±2.5<0.000
 565.1±2.5<0.00072.7±2.2<0.000
 1056.3±3.2<0.00063.0±2.2<0.000
 2043.9±2.7<0.00048.7±2.5<0.000
 4027.0±2.8<0.00036.4±2.9<0.000
 8017.3±3.1<0.00020.3±2.9<0.000

注:各组样本数均为3;对照组为加入二甲基亚砜处理的细胞;a与对照组比较所得

2.2 尼日菌素降低A2780、SKOV3细胞迁移和侵袭能力

不同浓度(5、10、20 μmol/L)尼日菌素分别作用于A2780和SKOV3细胞48 h后,相对于对照组,两种细胞的迁移能力均降低,且呈浓度依赖性(P<0.05),组间差异具有统计学意义(均P<0.05)(图1表2)。Transwell侵袭实验显示,两种细胞的侵袭能力同样随着尼日菌素作用浓度的增加而受到抑制,并呈浓度依赖性下降,组间差异具有统计学意义(均P<0.05)(图2表3)。

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表2

不同浓度尼日菌素作用人上皮性卵巢癌A2780、SKOV3细胞48 h后Transwell迁移实验穿膜细胞数比较(个/高倍视野,±s

表2

不同浓度尼日菌素作用人上皮性卵巢癌A2780、SKOV3细胞48 h后Transwell迁移实验穿膜细胞数比较(个/高倍视野,±s

组别A2780细胞PaSKOV3细胞Pa
对照组163±8 135.2±6.4 
尼日菌素(μmol/L)    
 5121±90.004120.4±2.60.021
 1092±7<0.00091.8±5.50.001
 2059±5<0.00080.0±4.00.000
F147.9 102.0 
P<0.000 0.000 

注:各组样本数均为3;对照组为加入二甲基亚砜处理的细胞;a与对照组比较所得

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表3

不同浓度尼日菌素作用人上皮性卵巢癌A2780、SKOV3细胞48 h后Transwell侵袭实验穿膜细胞数比较(个/高倍视野,±s

表3

不同浓度尼日菌素作用人上皮性卵巢癌A2780、SKOV3细胞48 h后Transwell侵袭实验穿膜细胞数比较(个/高倍视野,±s

组别A2780细胞PaSKOV3细胞Pa
对照组73.4±4.3 104.8±2.2 
尼日菌素(μmol/L)    
 561.2±3.70.02785.2±7.00.010
 1043.2±4.3<0.00065.2±4.6<0.000
 2023.6±2.1<0.00045.6±4.4<0.000
F71.1 109.9 
P<0.000 <0.000 

注:各组样本数均为3;对照组为加入二甲基亚砜处理的细胞;a与对照组比较所得

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图1
Transwell小室法检测尼日菌素降低人上皮性卵巢癌A2780和SKOV3细胞迁移能力 结晶紫 ×400 1A:A2780细胞对照组(二甲基亚砜);1B:尼日菌素5 μmol/L处理A2780细胞;1C:尼日菌素10 μmol/L处理A2780细胞;1D:尼日菌素20 μmol/L处理A2780细胞;1E:SKOV3细胞对照组(二甲基亚砜);1F:尼日菌素5 μmol/L处理SKOV3细胞;1G:尼日菌素10 μmol/L处理SKOV3细胞;1H:尼日菌素20 μmol/L处理SKOV3细胞
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图1
Transwell小室法检测尼日菌素降低人上皮性卵巢癌A2780和SKOV3细胞迁移能力 结晶紫 ×400 1A:A2780细胞对照组(二甲基亚砜);1B:尼日菌素5 μmol/L处理A2780细胞;1C:尼日菌素10 μmol/L处理A2780细胞;1D:尼日菌素20 μmol/L处理A2780细胞;1E:SKOV3细胞对照组(二甲基亚砜);1F:尼日菌素5 μmol/L处理SKOV3细胞;1G:尼日菌素10 μmol/L处理SKOV3细胞;1H:尼日菌素20 μmol/L处理SKOV3细胞
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图2
Transwell小室法检测尼日菌素降低人上皮性卵巢癌A2780和SKOV3细胞侵袭能力 结晶紫 ×400 2A:A2780细胞对照组(二甲基亚砜);2B:尼日菌素5 μmol/L处理A2780细胞;2C:尼日菌素10 μmol/L处理A2780细胞;2D:尼日菌素20 μmol/L处理A2780细胞;2E:SKOV3细胞对照组(二甲基亚砜);2F:尼日菌素5 μmol/L处理SKOV3细胞;2G:尼日菌素10 μmol/L处理SKOV3细胞;2H:尼日菌素20 μmol/L处理SKOV3细胞
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图2
Transwell小室法检测尼日菌素降低人上皮性卵巢癌A2780和SKOV3细胞侵袭能力 结晶紫 ×400 2A:A2780细胞对照组(二甲基亚砜);2B:尼日菌素5 μmol/L处理A2780细胞;2C:尼日菌素10 μmol/L处理A2780细胞;2D:尼日菌素20 μmol/L处理A2780细胞;2E:SKOV3细胞对照组(二甲基亚砜);2F:尼日菌素5 μmol/L处理SKOV3细胞;2G:尼日菌素10 μmol/L处理SKOV3细胞;2H:尼日菌素20 μmol/L处理SKOV3细胞
2.3 尼日菌素抑制A2780细胞的EMT进程

不同浓度(5、10和20 μmol/L)尼日菌素分别作用于细胞48 h后检测显示,E-cadherin的表达随着作用浓度的增加而升高,Vimentin、Slug、Snail和Twist的表达呈浓度依赖性减少,组间差异均具有统计学意义(均P<0.05)(图3表4);随尼日菌素浓度增加,SKOV3细胞中E-cadherin的表达上调,Vimentin、Slug、Snail和Twist的表达呈浓度依赖性减少,组间差异均具有统计学意义(均P<0.05)(图4表5)。

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表4

蛋白质印迹法检测不同浓度尼日菌素作用48 h后人上皮性卵巢癌A2780细胞上皮细胞-间充质细胞转化相关蛋白浓度(μg/ml,±s

表4

蛋白质印迹法检测不同浓度尼日菌素作用48 h后人上皮性卵巢癌A2780细胞上皮细胞-间充质细胞转化相关蛋白浓度(μg/ml,±s

组别样本数SlugPaSnailPaTwistPaE⁃cadherinPaVimentinPa
对照组31.00±0.00 1.00±0.00 1.00±0.00 1.00±0.00 1.00±0.00 
尼日菌素(μmol/L)           
 530.84±0.020.0100.53±0.150.0480.76±0.020.0031.25±0.030.0070.88±0.030.038
 1030.42±0.040.0020.50±0.050.0040.52±0.030.0021.71±0.050.0030.64±0.020.002
 2030.14±0.090.0050.23±0.020.0000.41±0.070.0072.02±0.030.0010.41±0.00<0.000
F 128.3 32.3 86.7 334.8 325.2 
P <0.000 <0.000 <0.000 <0.000 <0.000 

注:对照组为加入二甲基亚砜处理的细胞;a与对照组比较所得

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表5

蛋白质印迹法检测不同浓度尼日菌素作用48 h后人上皮性卵巢癌SKOV3细胞上皮细胞-间充质细胞转化相关蛋白浓度(μg/ml,±s

表5

蛋白质印迹法检测不同浓度尼日菌素作用48 h后人上皮性卵巢癌SKOV3细胞上皮细胞-间充质细胞转化相关蛋白浓度(μg/ml,±s

组别样本数SlugPaSnailPaTwistPaE⁃cadherinPaVimentinPa
对照组31.00±0.00 1.00±0.00 1.00±0.00 1.00±0.00 1.00±0.00 
尼日菌素(μmol/L)           
 530.78±0.030.0070.66±0.040.0070.84±0.040.0331.24±0.050.0240.78±0.030.009
 1030.53±0.020.0010.47±0.050.0050.49±0.00<0.0001.73±0.030.0010.60±0.020.001
 2030.13±0.050.0010.19±0.110.0100.34±0.020.0012.19±0.060.0010.41±0.020.001
F 344.1 52.0 340.7 290.7 305.4 
P <0.000 <0.000 <0.000 <0.000 <0.000 

注:对照组为加入二甲基亚砜处理的细胞;a与对照组比较所得

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图3
蛋白质印迹法检测不同浓度尼日菌素对人上皮性卵巢癌A2780细胞的上皮细胞-间充质细胞转化相关蛋白表达的影响
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注:DMSO为二甲基亚砜

图3
蛋白质印迹法检测不同浓度尼日菌素对人上皮性卵巢癌A2780细胞的上皮细胞-间充质细胞转化相关蛋白表达的影响
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图4
蛋白质印迹法检测不同浓度尼日菌素对人上皮性卵巢癌SKOV3细胞的上皮细胞-间充质细胞转化相关蛋白表达的影响
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注:DMSO为二甲基亚砜

图4
蛋白质印迹法检测不同浓度尼日菌素对人上皮性卵巢癌SKOV3细胞的上皮细胞-间充质细胞转化相关蛋白表达的影响
2.4 尼日菌素调节A2780、SKOV3细胞Wnt-β-catenin信号通路相关蛋白

不同浓度(5、10、20 μmol/L)尼日菌素分别作用于A2780和SKOV3细胞12 h,p-Gsk-3β蛋白的表达降低,且呈浓度依赖性(P<0.05),而总Gsk-3β蛋白的表达无变化(P>0.05);不同浓度(5、10、20 μmol/L)尼日菌素分别作用于A2780和SKOV3细胞24 h后,β-catenin蛋白的表达降低,并呈浓度依赖性,组间差异均具有统计学意义(均P<0.05)(图5表6)。

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表6

蛋白质印迹法检测不同浓度尼日菌素作用后人上皮性卵巢癌A2780、SKOV3细胞Wnt-β-catenin信号通路相关蛋白浓度(μg/ml,±s

表6

蛋白质印迹法检测不同浓度尼日菌素作用后人上皮性卵巢癌A2780、SKOV3细胞Wnt-β-catenin信号通路相关蛋白浓度(μg/ml,±s

组别样本数A2780细胞SKOV3细胞
Gsk3βp⁃Gsk3ββ⁃cateninGsk3βp⁃Gsk3ββ⁃catenin
对照组31.00±0.001.00±0.001.00±0.001.00±0.001.00±0.001.00±0.00
尼日菌素(μmol/L)       
 530.98±0.010.86±0.010.63±0.011.03±0.010.77±0.020.67±0.03
 1030.97±0.020.76±0.020.36±0.021.04±0.040.44±0.010.33±0.02
 2030.96±0.030.41±0.030.24±0.011.04±0.020.19±0.010.15±0.02
F 1.6350.61 885.01.72 297.0873.9
P 0.255<0.000<0.0000.248<0.000<0.000

注:对照组为加入二甲基亚砜处理的细胞

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图5
蛋白质印迹法检测尼日菌素抑制人上皮性卵巢癌A2780、SKOV3细胞Wnt-β-catenin信号通路相关蛋白 5A:A2780细胞;5B:SKOV3细胞
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注:DMSO为二甲基亚砜;p-Gsk3β为磷酸化Gsk3β

图5
蛋白质印迹法检测尼日菌素抑制人上皮性卵巢癌A2780、SKOV3细胞Wnt-β-catenin信号通路相关蛋白 5A:A2780细胞;5B:SKOV3细胞
3 讨论

卵巢癌是病死率最高的妇科恶性肿瘤,尽管近年来卵巢癌的治疗手段已取得了很大的进步,但患者5年生存率并没有得到明显提高。手术联合铂类为基础的化疗是目前卵巢癌的主要治疗手段,然而在经过初始治疗后,仍有75%的患者终将复发,铂类耐药是目前治疗复发性卵巢癌亟须解决的关键问题[2]。因此,深入探讨卵巢癌侵袭转移的相关分子机制,明确与侵袭转移相关的因素,并寻找可以抑制肿瘤细胞侵袭转移的新型药物具有重要的临床意义。

EMT指上皮细胞转化为间充质细胞表型的生物学过程,主要指上皮细胞标志物如E-cadherin的增加,间叶细胞标志物如Vimentin的减少,以及Slug、Snail和Twist等EMT相关转录因子位置的改变[3]

尼日菌素是由Hamed等于1950年成功分离的一种聚醚离子载体一元酸抗生素,它可以催化碱金属钾离子与氢离子的交换,破坏线粒体的膜电势,促进三磷酸腺苷酶的活性,从而发挥抗生素的杀菌作用,广泛应用于抗鸡球虫病的治疗。Gupta等[4]在进行小鼠实验时首次报道,尼日菌素抑制乳腺癌干细胞的能力较紫杉醇增强至少100倍,但其潜在的抗肿瘤机制并不清楚。Lu等[5]报道称,与盐霉素类似,nmol级浓度的尼日菌素可以选择性抑制HEK293细胞中的Wnt信号通路。Zhou等[6]报道尼日菌素可以通过抑制EMT进而抑制结直肠癌转移,但是其具体的作用机制仍有待进一步研究。

在本研究中,我们将不同浓度的尼日菌素分别作用于两种人EOC细胞株,结果发现尼日菌素可抑制A2780和SKOV3细胞的增殖、迁移和侵袭能力;上调EMT过程中E-cadherin的表达,同时下调间叶细胞标志物Vimentin的表达。我们进一步选取了EMT相关的转录因子进行研究,结果发现尼日菌素下调EMT相关转录因子Slug、Snail和Twist的表达,提示尼日菌素可能是通过影响EMT抑制EOC细胞的侵袭和转移。

Wnt-β-catenin信号通路可精确调控机体的生长及发育,当其过度活化或失调时,会导致机体发育异常或形成肿瘤,它的异常活化与直肠癌、乳腺癌、肺癌、前列腺癌、子宫内膜癌、原发性肝癌、甲状腺癌和黑色素瘤等多种肿瘤的发生发展密切相关。Novak等[7]研究表明,β-catenin从细胞质释放进入细胞核后上调LEF-1的表达,诱导结肠上皮细胞发生EMT。Eger等[8]发现乳腺上皮细胞发生EMT的过程中伴随着Wnt-β-catenin信号通路的激活。近年来,已有多项研究证实,Wnt-β-catenin信号通路在EOC细胞发生EMT的过程中发挥着关键性的作用。卵巢腺癌组织中GSK-3β和β-catenin的表达升高,表明Wnt通路在卵巢的发生发展中发挥一定的作用[9]。Wnt抑制剂SFRP4可抑制浆液性卵巢癌细胞发生EMT,并降低细胞的迁移能力[10]。因此以Wnt信号通路的关键成分为靶点,成为早期诊断和治疗卵巢癌的研究热点。本研究结果提示尼日菌素能够下调卵巢癌细胞中Wnt信号通路相关分子p-Gsk-3β、β-catenin表达,表明尼日菌素抑制EOC细胞发生EMT可能的作用机制是通过抑制Wnt-β-catenin信号通路来实现的。

总之,我们发现尼日菌素可以抑制卵巢癌细胞转移过程中的EMT过程,这可能是尼日菌素抑制卵巢癌侵袭和转移的机制之一,尼日菌素可能是通过抑制Wnt-β-catenin信号通路进而抑制卵巢癌细胞的侵袭和迁移的,提示该通路可能是尼日菌素抗肿瘤转移作用的重要机制。这些结果都表明,尼日菌素在未来卵巢癌转移的治疗中有很好的应用前景,但还需要进一步进行组织学、动物学实验来更好地阐明尼日菌素抗肿瘤作用的相关分子机制。

利益冲突

利益冲突 无

参考文献
[1]
SiegelR, NaishadhamD, JemalA. Cancer statistics,2012[J]. CA Cancer J Clin2012621):10-29. DOI:10.3322/caac.20138.
[2]
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