论著
围生期孕产妇感染或定植的B族链球菌耐药情况、血清型、毒力基因及基因型分析
中华妇幼临床医学杂志(电子版), 2016,12(5) : 583-589. DOI: 10.3877/cma.j.issn.1673-5250.2016.05.017
摘要
目的

探讨围生期孕产妇感染或定植的B族链球菌(GBS)的耐药情况、血清型、毒力基因及基因型特点。

方法

选择2008年1月至2015年10月,从深圳市人民医院感染或定植GBS的孕产妇宫颈、阴道、血液及尿液样本中,分离获得的60株GBS菌株为研究对象。通过革兰染色及cAMP试验,进行GBS初步鉴定。采用全自动微生物鉴定、药敏分析(VITEK)系统鉴定GBS菌株。采用K-B纸片扩散法和E-test法测定GBS菌株耐药情况。应用乳胶凝集试验进行GBS血清学分型。聚合酶链反应(PCR)列阵技术检查GBS的红霉素耐药基因ermA、ermC、ermB、mefAEermTR,克林霉素耐药基因linB,四环素耐药基因tetL、tetK、tetT、tetS、tetOtetM,以及GBS主要毒力基因bac、bca、scpB、lmbhylB。采用多位点测序分型技术(MLST)进行GBS的基因分型。

结果

①60株GBS菌株对青霉素及万古霉素敏感度为100.0%,对四环素、红霉素、克林霉素及左氧氟沙星的耐药率分别为88.3%、70.0%、43.3%及35.0%。②本组产科GBS的主要血清型依次为Ⅰb型36.7%(22/60),Ⅰa型28.3%(17/60),Ⅲ型18.3%(11/60)及Ⅸ型10.0%(6/60)。③本组产科GBS的毒力基因主要为hylB、lmbscpB,其中100.0%(60/60)含有hylB基因,78.3%(47/60)含有lmb基因,75.0%(45/60)含有scpB基因。④产科GBS主要基因序列分型(ST)中ST19为30.0%(18/60),ST23为11.7%(7/60),ST12与ST103各为8.3%(5/60),ST485为6.7%(4/60),另外还包括ST1、4、10、17、27、28、86、199、221、325、651、653及未知型。

结论

标本收集医院孕产妇感染或定植的GBS,对红霉素及克林霉素的耐药率较高,治疗GBS感染时不建议使用;但是仍可选择青霉素。对青霉素过敏的孕产妇,可根据病情选择万古霉素或左氧氟沙星治疗GBS感染。产科孕产妇中,感染或定植GBS的主要血清型为Ⅰb及Ⅰa,主要含有hylB、lmbscpB毒力基因,以基因型ST19及ST23为主。

引用本文: 苏锦珍, 吴伟元, 丁璐, 等.  围生期孕产妇感染或定植的B族链球菌耐药情况、血清型、毒力基因及基因型分析 [J/OL] . 中华妇幼临床医学杂志(电子版), 2016, 12(5) : 583-589. DOI: 10.3877/cma.j.issn.1673-5250.2016.05.017.
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B族链球菌(group B streptococcus,GBS),又称为无乳链球菌,为有荚膜双球菌,是定植于患者胃肠道及泌尿生殖道的常见机会致病菌,是导致新生儿败血症、脑膜炎及肺炎,以及孕妇发生胎膜早破及早产的主要致病菌之一。新生儿感染GBS主要来自于母亲感染或胃肠道及泌尿生殖道定植的GBS。因此,对孕产妇感染GBS进行耐药情况、血清型、毒力基因及基因型的研究,具有重要临床意义。已检测出的GBS血清型包括Ⅰa、Ⅰb、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ、Ⅴ、Ⅵ、Ⅶ、Ⅷ及Ⅸ型,不能检测出的血清型记为不可分型(non-typeable, NT)[1]。GBS毒力基因主要包括bac、bca、scpB、lmbhylB[2]。多位点序列分型(multilocus sequence typing,MLST)技术,可通过管家基因测定,综合分析GBS序列分型,是近年对细菌及其他病原体基因型进行鉴定的重要方法之一。本研究通过分析深圳市人民医院孕产妇感染或定植的GBS耐药情况、血清型、毒力基因及基因型特点,旨在为临床治疗及预防孕产妇GBS感染提供指导。现将研究结果报道如下。

1 资料和方法
1.1 研究对象

收集2008年1月至2015年10月,从深圳市人民医院感染或定植GBS的孕产妇的宫颈、阴道、血液及尿液样本中,分离获得的60株GBS非重复分离菌株为研究对象。60株GBS菌株来源于宫颈及阴道的为95.0%,血液为1.7%,尿液为3.3%。孕产妇平均年龄为(28.4±5.0)岁。

1.2 方法
1.2.1 菌株获取、培养及鉴定

记录孕产妇年龄、获取标本的日期、标本来源、住院号及GBS菌株编号,由深圳市人民医院检验科微生物室分离并提供GBS菌株。GBS菌株分离培养及鉴定方法为:将菌株接种于血琼脂平板上进行分离培养,培养基置于35 ℃、含5% CO2培养箱内培养18~24 h。通过革兰染色进行GBS菌株形态学鉴定,cAMP实验进行GBS的初步鉴定,并采用全自动微生物鉴定、药敏分析系统(型号:VITEK 2 Compact,法国BioMerieux)鉴定GBS菌株,并于-80 ℃冰箱保存分离获取的菌株[3]。对GBS菌株进行编号,记录为C1~C68,其中C1~C4,C46~C48因实验室未保留原始GBS菌株而缺失。

1.2.2 药敏试验方法

采用K-B纸片扩散法和E-test法2种药敏试验方法,检测本组60株GBS菌株的耐药情况[4]。E-test结果具体参考美国临床试验室标准协会(clinical and laboratory standards institute,CLSI) 2011标准(http://clsi.org/),判断GBS菌株对药物的敏感、耐药及中介耐药情况,以及最小抑菌浓度(minimal inhibitory concentration,MIC)。D-试验为对红霉素耐药、克林霉素敏感的GBS菌株,在红霉素的诱导下,可产生克林霉素耐药,与大环内酯类抗菌药物的erm基因相关,据此判断GBS菌株是否确实对克林霉素敏感,若D-试验结果呈阳性,提示该GBS菌株对克林霉素耐药[4]。在特定环境下孵育24 h,可抑制某种微生物出现明显增长的最低药物浓度,即MIC。MIC用于定量测定体外抗菌活性。对可抑制50%或90%菌株的MIC,则分别称为MIC50及MIC90。

1.2.3 GBS血清型测定及基因提取

采用Brochure STREP-B-LATEX乳胶凝集试验血清型试剂盒(批号:54933,丹麦血清研究所),严格按照说明书操作,进行GBS血清型测定。严格按照聚合酶链反应(polymerase chain reaction,PCR)试剂盒(批号:9164,大连TaKaRa公司)说明书操作,进行GBS菌株DNA提取。

1.2.4 目标基因确定及多位点序列分型技术鉴定基因型

将提取的GBS DNA进行PCR列阵技术扩增,测定目标片段大小,获得GBS菌株相关抗菌药物耐药基因,包括红霉素耐药基因ermA、ermC、ermB、mefAEermTR,克林霉素耐药基因LinB,四环素耐药基因tetL、tetK、tetT、tetS、tetOtetM;以及GBS主要毒力基因bac、bca、scpB、lmbhylB[4]。将扩增产物送至生工生物工程(上海)股份有限公司进行测序,反馈的测序结果与目标基因进行BLAST序列比对,若同源性>98%,则认为该GBS菌株存在目标基因[5]。MLST技术:通过PCR扩增技术对7个用于多位点基因分析的管家基因(adhp、glcK、glnA、sdhP、Phes、tkt、atr)进行扩增,电泳检测目标条带,将PCR产物送与生工生物工程(上海)股份有限公司进行测序,反馈的测序结果采用chromas软件进行修正后,与MLST官网数据库中GBS菌株的序列进行BLAST序列比对,从而获得各管家基因位点的等位基因数值,形成相应的等位基因谱,得到GBS菌株的序列型[6]

1.3 统计学分析方法

采用SPSS 13.0统计学软件包进行处理数据,对耐药率等计数资料采用率(%)进行统计学描述。

2 结果
2.1 围生期孕产妇感染或定植的GBS耐药情况

本组60株GBS菌株对青霉素及万古霉素的敏感度为100.0%;对四环素的耐药率为88.3%,对红霉素为70.0%,对克林霉素为43.3%,对左氧氟沙星为35.0%。对其中14株对克林霉素敏感而对红霉素耐药的GBS菌株进行D-试验的结果显示,3株D-试验结果呈阳性。围生期孕产妇感染或定植GBS的耐药情况比较,见表1

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表1

围生期孕产妇感染或定植GBS耐药情况

表1

围生期孕产妇感染或定植GBS耐药情况

抗菌药物株数耐药情况[株数(%)]耐药率95%CIMIC50MIC90
耐药中介敏感
青霉素600(0)0(0)60(100.0)0~7.50.0640.064
左氧氟沙星6021(35.0)0(0)39(65.0)23.4~48.50.75064.000
克林霉素6026(43.3)8(13.4)26(43.3)35.4~61.40.50064.000
红霉素6042(70.0)2(3.3)16(26.7)56.6~80.83.000>256.000
万古霉素600(0)0(0)60(100.0)0~7.50.3800.500
四环素6053(88.3)0(0)7(11.7)76.8~94.824.00048.000

注:GBS为B族链球菌,MIC为最小抑菌浓度

2.2 围生期孕产妇感染或定植GBS血清型及不同血清型GBS的红霉素及四环素耐药基因分布

本研究60株GBS菌株中,GBS血清型的Ⅰb型检出率为36.7%(22/60),Ⅰa型为28.3%(17/60),Ⅲ型为18.3%(11/60),Ⅸ型为10.0%(6/60),Ⅱ、Ⅴ、Ⅵ型及NT各为1.7%(1/60)。GBS的红霉素耐药基因以ermBmefAE为主,其中Ⅰb型以ermB为主,Ⅰa型以mefAE为主,Ⅲ型以ermBmefAE为主。GBS的克林霉素耐药基因以linB为主。GBS的四环素耐药基因以tetM、tetO为主。围生期孕产妇感染或定植GBS不同血清型的红霉素及四环素耐药基因分布,见表2

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表2

围生期孕产妇感染或定植GBS不同血清型的红霉素及四环素耐药基因分布[株数(%)]

表2

围生期孕产妇感染或定植GBS不同血清型的红霉素及四环素耐药基因分布[株数(%)]

血清型株数红霉素耐药基因四环素耐药基因
ermAermBermCmefAEermTRtetOtetMtetStetLtetKtetT
Ⅰa170(0)0(0)0(0)7(41.2)0(0)0(0)15(88.2)0(0)0(0)0(0)0(0)
Ⅰb220(0)15(68.2)0(0)6(27.3)1(4.5)7(31.8)13(59.1)2(9.1)1(4.5)0(0)0(0)
10(0)1(100.0)0(0)0(0)0(0)0(0)1(100.0)0(0)0(0)0(0)0(0)
110(0)5(45.5)0(0)7(63.6)0(0)3(27.3)9(81.8)1(9.1)1(9.1)0(0)0(0)
10(0)1(100.0)0(0)1(100.0)0(0)0(0)1(100.0)0(0)0(0)0(0)0(0)
10(0)0(0)0(0)0(0)0(0)0(0)1(100.0)0(0)0(0)0(0)0(0)
60(0)3(50.0)0(0)1(16.7)0(0)2(33.3)3(50.0)0(0)0(0)0(0)0(0)
NT10(0)0(0)0(0)0(0)0(0)1(100.0)0(0)0(0)0(0)0(0)0(0)
合计600(0)25(41.7)0(0)22(36.7)1(1.7)13(21.7)43(71.7)3(5.0)2(3.3)0(0)0(0)

注:GBS为B族链球菌,NT为不可分型

2.3 围生期孕产妇感染或定植GBS血清型、耐药情况、耐药基因、毒力基因及基因型特点

围生期孕产妇感染或定植GBS血清型、耐药情况、耐药基因、毒力基因和序列分型(sequence typing,ST)特点,见表3。围生期孕产妇感染或定植GBS的毒力基因主要为hylB、lmbscpB,其中100.0%(60/60)含有hylB基因,78.3%(47/60)含有lmb基因,75.0%(45/60)含有scpB基因。产科GBS的基因ST主要为ST19、23、12、103、485,其中ST19为30.0%(18/60),ST23为11.7%(7/60),ST12与ST103各为8.3%(5/60),ST485为6.7%(4/60);其他基因ST还包括ST1、4、10、17、27、28、86、199、221、325、651、653及未知型。围生期孕产妇感染或定植GBS不同血清型的毒力基因及基因ST分布,见表4

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表3

围生期孕产妇感染或定植GBS血清型、耐药情况、耐药基因、毒力基因及基因型特点

表3

围生期孕产妇感染或定植GBS血清型、耐药情况、耐药基因、毒力基因及基因型特点

菌株号血清型E-test结果(cm)耐药基因  
红霉素克林霉素四环素红霉素克林霉素四环素毒力基因ST
C12Ⅰb0.500(R)>32.000(R)24.000(R)ermBtetObca+scpB+hylB+lmbST12
C32Ⅰb32.000(R)32.000(R)24.000(R)ermBlinBtetMscpB+hylB+lmbST19
C3632.000(R)0.500(R)16.000(R)ermBtetOscpB+hylB+lmbST19
C30>256.000(R)>32.000(R)32.000(R)ermB+mefAElinBtetMbca+hylBST19
C430.125(S)0.500(R)16.000(R)tetMscpB+hylB+lmbST19
C640.064(S)0.250(S)24.000(R)tetOscpB+hylB+lmbST19
C16Ⅰa0.047(S)0.250(S)16.000(R)tetMscpB+hylB+lmbST23
C57Ⅰb1.500(R)8.000(R)24.000(R)mefAEtetMhylBST23
C150.064(S)0.250(S)16.000(R)tetMscpB+hylB+lmbST23
C29Ⅰa8.000(R)0.500(R)32.000(R)mefAEtetMscpB+hylB+lmbST103
C56Ⅰb1.500(R)32.000(R)64.000(R)ermB+mefAEtetM+tetShylB+lmbST103
C20Ⅰa0.064(S)0.250(S)24.000(R)tetMscpB+hylB+lmbST485
C60Ⅰb1.000(R)0.250(S)32.000(R)hylBST485

注:GBS为B族链球菌,ST为序列分型,S为敏感,R为耐药

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表4

围生期孕产妇感染或定植GBS不同血清型的毒力基因及基因ST分布[株数(%)]

表4

围生期孕产妇感染或定植GBS不同血清型的毒力基因及基因ST分布[株数(%)]

血清型株数毒力基因ST
bacbcahylBscpBlmbST12ST19ST23ST103ST485其他
Ⅰa170(0)0(0)17(100.0)10(58.8)12(70.6)0(0)0(0)5(29.4)3(17.6)3(17.6)6(35.3)
Ⅰb222(9.1)4(18.2)22(100.0)17(77.3)18(81.8)5(22.7)5(22.7)1(4.5)2(9.1)1(4.5)8(36.4)
10(0)0(0)1(100.0)1(100.0)1(100.0)0(0)0(0)0(0)0(0)0(0)1(100.0)
111(9.1)0(0)11(100.0)9(81.8)8(72.7)0(0)8(72.7)0(0)0(0)0(0)3(27.3)
10(0)1(100.0)1(100.0)0(0)0(0)0(0)1(100.0)0(0)0(0)0(0)0(0)
10(0)0(0)1(100.0)1(100.0)1(100.0)0(0)1(100.0)0(0)0(0)0(0)0(0)
60(0)1(16.7)6(100.0)6(100.0)6(100.0)0(0)2(33.3)1(16.7)0(0)0(0)3(50.0)
NT10(0)0(0)1(100.0)1(100.0)1(100.0)0(0)1(100.0)0(0)0(0)0(0)0(0)
合计603(5.0)6(10.0)60(100.0)45(75.0)47(78.3)5(8.3)18(30.0)7(11.7)5(8.3)4(6.7)21(35.0)

注:GBS为B族链球菌,ST为序列分型,NT为不可分型

3 讨论

美国疾病控制中心对围生期GBS的防治指南推荐,对青霉素过敏者,若对红霉素耐药而对克林霉素敏感,并且为诱导克林霉素耐药阴性者,可选用克林霉素进行抗GBS治疗;对青霉素有强变态反应风险者,若对克林霉素耐药,则可选用万古霉素进行抗GBS治疗[7]。Gygax等[8]研究发现,GBS对大环内酯类抗菌药物的耐药性逐渐增加,对青霉素的耐药性无明显改变。这使对青霉素过敏的孕产妇感染GBS后,可选择的抗菌药物范围缩小。Crespo-Ortiz等[9]对拉丁美洲医院2个不同阶段GBS感染的研究发现,GBS对红霉素及克林霉素的耐药性增加,同时发现对青霉素及氨苄西林不敏感菌株。本研究结果显示,孕产妇感染或定植GBS对青霉素的敏感率为100%,这与大部分研究结果相似,提示感染GBS的孕妇可首选青霉素进行抗GBS治疗。对于青霉素过敏的孕产妇而言,感染GBS后须选择其他既有抗GBS作用,又不对胎儿造成伤害的药物。对中国北京妇产科医院40例GBS感染新生儿的研究显示,GBS菌株对青霉素、头孢噻肟及左氧氟沙星的敏感率为100.0%;而对克林霉素、红霉素、克拉霉素、阿奇霉素及四环素的耐药率则分别为90.0%、95.0%、97.5%、100.0%及100.0%[10]。北京同仁医院的研究结果显示,孕妇感染GBS菌株对红霉素与克林霉素的耐药率分别为66.2%与55.7%[11]。本研究结果显示,纳入研究的60株GBS菌株,对四环素、红霉素、克林霉素的耐药率分别为88.3%、70.0%及43.3%,其中14株对红霉素耐药,对克林霉素敏感的菌株中,3株为D-试验结果呈阳性,即在红霉素诱导下,对克林霉素敏感菌株中有对克林霉素耐药者。此外,本组GBS菌株对左氧氟沙星的耐药率相对较低。Bolukaoto等[4]研究发现,GBS菌株对四环素的耐药率为86.7%。Goudarzi等[12]对100株孕妇感染GBS菌株进行研究的结果发现,对红霉素及克林霉素耐药率均为100%,但仅4%对青霉素耐药,建议临床继续使用青霉素进行抗GBS治疗,对青霉素过敏患者,可选用万古霉素进行抗GBS治疗。Beigverdi等[13]对41株孕妇感染GBS菌株的研究发现,GBS菌株对红霉素和克林霉素的耐药率分别为24.4%及14.6%,而对四环素的耐药率高达97.6%。Woldu等[14]对纳入研究的2两家医院提供的300株孕妇感染GBS菌株进行研究发现,仅有1株GBS菌株对红霉素敏感,对青霉素敏感度为55%。Abarzúa等[15]对167株孕妇感染的GBS菌株进行研究的结果显示,其中16株对红霉素耐药,23株对克林霉素耐药,推荐对青霉素过敏患者使用头孢唑啉或万古霉素进行抗GBS治疗。Shabayek和Abdalla[16]对100株孕妇感染的GBS菌株进行研究发现,GBS菌株对红霉素及克林霉素的耐药率分别为17%和14%,对四环素的耐药率则高达98%。Fröhlicher等[17]对孕妇感染的GBS菌株进行研究发现,所有菌株对青霉素敏感,而对红霉素及克林霉素的耐药率分别为14.5%和14%;在所有菌株中,对红霉素耐药而对克林霉素敏感者为5.8%,因此建议对青霉素过敏的孕妇选用克林霉素抗进行抗GBS治疗。这与本研究GBS菌株对大环内酯类抗菌药物耐药情况有较大差异,究其原因可能与产前产妇预防性使用抗菌药物有关。Liakopoulos等[18]比较孕妇与新生儿的GBS感染特点发现,孕妇感染的GBS菌株对红霉素的耐药率为20.47%,新生儿感染的GBS菌株对红霉素的耐药率为76.10%。Turner等[19]研究发现,孕妇感染的GBS菌株对青霉素、头孢唑啉及万古霉素的敏感度均为100.0%,对红霉素及克林霉素的敏感度均为91.5%。本研究GBS对大环内酯类抗菌药物的耐药率与北京GBS对这类抗菌药物的耐药率相近,而不同国家及地区的大环内酯类抗菌药物的耐药率,则存在差异,究其原因可能与地区及人种差异有关。产前及产时对GBS进行抗菌药物预防性使用,增加了大环内酯类抗菌药物的耐药率。GBS对四环素的耐药率较高且不良反应较多,不建议临床将其作为抗GBS治疗的首选药物。对青霉素过敏的患者,可选择万古霉素或者左氧氟沙星治疗。

既往研究结果显示,大环内酯类抗菌药物的耐药基因包括ermA、ermB、ermC、ermTR、mefAE、mefAlinB[8]。Morozumi等[20]研究结果显示,22%GBS菌株包含mefAE、ermAermB基因,可以部分解释GBS对大环内酯类抗菌药物耐药的原因。北京妇产科医院检测GBS对红霉素的耐药基因发现,27株仅有ermB基因,2株仅有mefA基因,8株同时具有ermBmefA基因[21]。本研究40株对红霉素耐药的GBS菌株中,25株有ermB基因,22株有mefAE基因,1株有ermTR基因,7株同时具有ermBmefAE基因,提示本组GBS菌株的红霉素耐药基因主要与ermBmefAE基因有关。Chang等[22]通过PCR法检测红霉素及克林霉素的耐药基因的研究发现,14株对红霉素耐药的GBS菌株中,10株含ermA基因,无ermBlinB基因;对克林霉素耐药的菌株中,有检测出linB基因者;而同时对红霉素及克林霉素耐药的GBS菌株中,有6株有ermB基因,1株有mefAE基因。本组GBS菌株未检测出ermAermC基因,这与国外研究报道有差异,可能与存在人种差异有关。GBS菌株的克林霉素耐药基因主要与linB基因有关,本组GBS对克林霉素耐药的26株菌株中,10株有linB基因。GBS的四环素耐药基因主要有tetO、tetM、tetS、tetL、tetKtetT等,本组对四环素耐药的GBS菌株主要有tetOtetM基因,该结果与其他国家GBS菌株的四环素耐药情况相似。

目前已发现的GBS血清型包括Ⅰa、Ⅰb、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ、Ⅴ、Ⅵ、Ⅶ、Ⅷ及Ⅸ型,未能检测出的血清型记为NT。不同地区报道的GBS感染率不同,感染的GBS血清型,也因区域及人种差异而有差异,但总体是以Ⅲ、Ⅰa、Ⅰb、Ⅱ及Ⅴ型等血清型致病为主。国外以血清型Ⅲ型最常见。Wang等[23]研究323株GBS菌株的常见血清型以Ⅰb、Ⅲ、Ⅴ及Ⅵ型为主。本组60株围生期孕产妇感染或定植GBS菌株检出的血清型为Ⅲ、Ⅰb、Ⅰa、Ⅴ、Ⅵ、Ⅱ型及NT,其中Ⅰb型为36.7%,Ⅰa型为28.3%,Ⅲ型为18.3%。Lu等[11]研究201株GBS菌株,41.8%血清型为Ⅲ型,21.4%为Ⅰa型,11.9%为Ⅰb型。巴西Dutra等[24]对434株成年人感染的GBS进行检测,主要血清型依次为Ⅰa型(27.6%)、Ⅱ型(19.1%)、Ⅰb型(18.7%)、Ⅴ型(13.6%)及Ⅲ型(6.7%) 。Fröhlicher等[17]研究的GBS菌株,Ⅲ型为最常见血清型。Soares等[25]认为,血清型Ⅲ及Ⅴ型为孕妇感染GBS的最常见血清型,其基因型与表型与GBS感染相关。Otaguiri等[26]发现,在大部分GBS菌株中,常见血清型依次为Ⅰa型(42.2%)、Ⅴ型(30.1%)、Ⅲ型(14.5%)及Ⅱ型(10.8%)。Turner等[19]研究发现,GBS最常见血清型为Ⅱ型。国外报道的关于新生儿感染GBS的血清型主要为Ⅲ型,如西班牙212株新生儿感染GBS菌株中,78%为血清型Ⅲ及Ⅰa型,所有菌株均有Alps或类似的蛋白质;而血清型Ⅰb与bca基因,血清型Ⅱ与bca基因相关[27]。本组不同血清型GBS的毒力基因,均主要为hylB,其次为lmbscpB,该结果与以上提及国家的研究结果存在差异,究其原因,可能与研究人群的差异有关。本组60株GBS菌株的基因ST中,ST19为30.0%,ST23为11.7%,ST12与ST103均为8.3%,ST485为6.7%。可见,本组GBS菌株的基因型以ST19及ST23为主,这与国内外相关研究结果有较大差异[6]。Jones等[6]研究发现,ST1、17、19及23为常见的ST分型。Liakopoulos等[18]研究发现,孕妇感染的GBS菌株最常见ST分型为ST1,新生儿感染的GBS菌株最常见ST分型为ST17。本组GBS血清型与基因型,均与我国北京及国外相关研究的文献报道差异较大,提示GBS可能存在地区及人种方面的差异。通过进一步研究每个地区的GBS血清型与基因型特性,可为临床预防及治疗GBS感染提供实用性指导。

综上所述,GBS对青霉素敏感,对红霉素、克林霉素及四环素耐药率较高,建议对青霉素不过敏患者首选青霉素抗GBS治疗,对青霉素过敏患者,应先进行药敏试验后结合患者临床特征进行抗菌药物选择。围生期孕产妇感染或定植GBS的红霉素耐药基因,主要与ermB、mefAE有关,其中血清型Ⅰb与ermB基因相关,血清型Ⅰa与mefAE基因相关,血清型Ⅲ与ermBmefAE基因相关。本组围生期孕产妇感染或定植GBS血清型以Ⅰb及Ⅰa为主,基因型以ST19及ST23为主,GBS的毒力基因主要为hylB,lmbscpB

参考文献
[1]
KongF, GowanS, MartinDet al. Serotype identification of group B streptococci by PCR and sequencing[J]. J Clin Microbiol200240(1):216-226.
[2]
CorrêaAB, OliveiraIC, Pinto TdeCet al. Pulsed-field gel electrophoresis, virulence determinants and antimicrobial susceptibility profiles of type Ⅰa group B streptococci isolated from humans in Brazil[J]. Mem Inst Oswaldo Cruz2009104(4):599-603.
[3]
ImperiM, PataracchiaM, AlfaroneGet al. A multiplex PCR assay for the direct identification of the capsular type(Ⅰa to Ⅸ) of Streptococcus agalactiae[J].J Microbiol Methods201080(2):212-214.
[4]
BolukaotoJY, MonyamaCM, ChukwuMOet al.Antibiotic resistance of Streptococcus agalactiae isolated from pregnant women in Garankuwa, South Africa[J].BMC Res Notes20158364.
[5]
DesjardinsM, DelgatyKL, RamotarK, et al. Prevalence and mechanisms of erythromycin resistance in group A and group B streptococcus: implications for reporting susceptibility results[J].J Clin Microbiol200442(12):5620-5623.
[6]
JonesN, BohnsackJF, TakahashiSet al. Multilocus sequence typing system for group B streptococcus[J].J Clin Microbiol200341(6):2530-2536.
[7]
VeraniJR, McGeeL, SchragSJ. Prevention of perinatal group B streptococcal disease-revised guidelines from CDC, 2010[J].MMWR Recomm Rep201059(RR-10):1-36.
[8]
GygaxSE, SchuylerJA, KimmelLE, et al. Erythromycin and clindamycin resistance in group B streptococcal clinical GBS strains[J].Antimicrob Agents Chemother200650(5):1875-1877.
[9]
Crespo-Ortiz MdelP, Castañeda-RamirezCR, Recalde-BolañosMet al.Emerging trends in invasive and noninvasive GBS strains of Streptococcus agalactiae in a Latin American hospital:a 17-year study[J].BMC Infect Dis201414428.
[10]
StaffordIAStewartRDSheffieldJSet al. Efficacy of maternal and neonatal chemoprophylaxis for early-onset group B streptococcal disease[J].Obstet Gynecol2012120(1):123-129.
[11]
LuBLiDCuiYet al. Epidemiology of Group B streptococcus isolated from pregnant women in Beijing, China[J].Clin Microbiol Infect201420(6):O370-O373.
[12]
GoudarziG, GhafarzadehM, ShakibPet al.Culture and real-time pcr based maternal screening and antibiotic susceptibility for group B streptococcus: an iranian experience[J].Glob J Health Sci20157(6):233-239.
[13]
BeigverdiR, JabalameliF, MirsalehianAet al.Virulence factors, antimicrobial susceptibility and molecular characterization of Streptococcus agalactiae isolated from pregnant women[J].Acta Microbiol Immunol Hung201461(4):425-434.
[14]
WolduZL, TeklehaimanotTG, WajiSTet al. The prevalence of Group B Streptococus recto-vaginal colonization and antimicrobial susceptibility pattern in pregnant mothers at two hospitals of Addis Ababa, Ethiopia[J].Reprod Health20141180.
[15]
AbarzúaF, ArgomedoC, MeissnerAet al. Prevalence of anal-vaginal colonization of Streptococcus agalactiae in third trimester of pregnancy and susceptibility to macrolides and lincosamides, in pregnant women controlled at Clínica Alemana Temuco, Southern Chile[J]. Rev Chilena Infectol201431(3):305-308.
[16]
ShabayekS, AbdallaS. Macrolide- and tetracycline-resistance determinants of colonizing group B streptococcus in women in Egypt[J].J Med Microbiol201463(Pt 10):1324-1327.
[17]
FröhlicherS, Reichen-FahrniG, MüllerMet al. Serotype distribution and antimicrobial susceptibility of group B streptococci in pregnant women: results from a Swiss tertiary centre[J].Swiss Med Wkly2014144w13935.
[18]
LiakopoulosA, MavroidiA, VourliSet al. Molecular characterization of Streptococcus agalactiae from vaginal colonization and neonatal infections: a 4-year multicenter study in Greece[J].Diagn Microbiol Infect Dis201478(4):487-490.
[19]
TurnerCTurnerPPoLet al.Group B streptococcal carriage,serotype distribution and antibiotic susceptibilities in pregnant women at the time of delivery in a refugee population on the Thai-Myanmar border[J].BMC Infect Dis20121234.
[20]
MorozumiM, WajimaT, KuwataYet al. Associations between capsular serotype, multilocus sequence type, and macrolide resistance in Streptococcus agalactiae isolates from Japanese infants with invasive infections[J].Epidemiol Infect2014142(4):812-819.
[21]
WangP, MaZ, TongJet al.Serotype distribution, antimicrobial resistance, and molecular characterization of invasive group B Streptococcus isolates recovered from Chinese neonates[J].Int J Infect Dis201537115-118.
[22]
ChangB, WadaA, HosoyaMet al. Characteristics of group B Streptococcus isolated from infants with invasive infections: a population-based study in Japan[J]. Jpn J Infect Dis201467(5):356-360.
[23]
WangYHChenCLHouJNet al. Serotype distribution and resistance genes associated with macrolide and fluoroquinolone resistance in Streptococcus agalactiae isolates from a hospital in southern Taiwan[J].Biomed J201538(3):215-220.
[24]
DutraVG, AlvesVM, OlendzkiANet al. Streptococcus agalactiae in Brazil: serotype distribution, virulence determinants and antimicrobial susceptibility[J].BMC Infect Dis201414323.
[25]
SoaresGC, AlvianoDS, da Silva SantosGet al. Prevalence of Group B Streptococcus serotypes Ⅲ and Ⅴ in pregnant women of Rio de Janeiro, Brazil[J].Braz J Microbiol201444(3):869-872.
[26]
OtaguiriES, MorguetteAE, TavaresERet al.Commensal Streptococcus agalactiae isolated from patients seen at University Hospital of Londrina, Paraná,Brazil: capsular types, genotyping, antimicrobial susceptibility and virulence determinants[J].BMC Microbiol201313297.
[27]
MartinsER, AndreuA, CorreiaPet al.Group B streptococci causing neonatal infections in barcelona are a stable clonal population:18-year surveillance[J].J Clin Microbiol201149(8):2911-2918.
 
 
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