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小儿神经基础与临床
细胞内低镁诱发皮质丘脑神经元网络过度兴奋及样放电的产生
中华实用儿科临床杂志, 2014,29(8) : 627-631. DOI: 10.3760/cma.j.issn.2095-428X.2014.08.018
摘要
目的

探讨细胞内低镁对皮质丘脑神经元网络兴奋性的影响。

方法

通过计算机模型生物学模拟结合大鼠皮质丘脑脑片电生理记录实验,观测细胞内低镁对大电导的钾离子通道(BK通道)、N-甲基-D-天冬氨酸受体(NMDA受体)和皮质丘脑网络放电的影响。

结果

1.在BK通道模型上,细胞内低镁并未显著削弱BK通道电流,未引发神经元兴奋性的改变。2.在NMDA受体模型上,细胞内低镁可引发NMDA电流的显著增强,从而导致兴奋性突触后膜电位(EPSPs)的显著增加。3.在大鼠的皮质丘脑脑片上,可以观察到细胞内低镁情况下皮质丘脑神经元网络的兴奋性突触后电位显著增加并产生样放电,在应用特异性的NMDA受体阻断剂后,兴奋性突触后电位减小,样放电消失。

结论

细胞内镁离子浓度的降低将增强NMDA受体相关电流,从而引发皮质丘脑神经元网络的过度兴奋,最终导致样放电的产生。已证实一种高选择性镁离子转运体相关基因NIPA2与儿童失神癫密切相关,因此本研究发现的细胞内低镁导致样放电的机制可能提示儿童失神癫的发病机制。

引用本文: 谢涵, 张月华, 张平平, 等.  细胞内低镁诱发皮质丘脑神经元网络过度兴奋及样放电的产生 [J] . 中华实用儿科临床杂志, 2014, 29(8) : 627-631. DOI: 10.3760/cma.j.issn.2095-428X.2014.08.018.
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是一类常见的以无诱因神经元反复自发放电为特点的神经系统疾病。据WHO报告显示,癫的患病率为5.0‰ ~ 11.2‰,而我国癫患病率为7.2‰,即我国存在有900万左右的癫患者。大多数癫患者需要长期治疗(至少治疗2年以上),部分患者甚至需要终身服药。癫患者易伴有其他躯体性或精神性疾病,并且病死率显著高于健康人,癫疾病给患者及其家属造成严重的经济和心理负担[1]。现在对癫的致病机制的认知还不十分清楚。在原代培养的神经元细胞和急性分离的脑片上,均发现细胞外无镁能诱发癫样放电的产生。这说明镁离子浓度的异常在癫的致病机制中起着重要作用。2012年本课题组发现一种高选择性镁离子转运蛋白相关基因(NIPA2基因)与儿童失神癫密切相关[2],再次支持镁离子很可能在神经元兴奋性调控方面具有重大意义。NIPA2蛋白功能是将胞外的镁离子转运到细胞内[3],因此推测NIPA2蛋白功能障碍将引发细胞内的镁离子浓度改变,从而导致神经元网络兴奋性显著增加,并产生样放电。这很可能是儿童失神癫的致病机制之一。

镁离子在体内参与多种离子通道和受体的调控,如大电导钾离子通道(BK通道)及N-甲基-D-天冬氨酸受体(NMDA受体)。BK通道在神经元爆发动作电位的过程中起着重要的调节作用,而NMDA受体在突触可塑性方面具有重要意义。目前认为,失神癫来源于皮质丘脑网络的异常放电。BK通道和NMDA受体广泛分布于皮质和丘脑的兴奋性神经元中。因此,镁离子的浓度改变很可能通过BK通道和NMDA受体途径增强了神经元网络的兴奋性,最终导致样放电的产生。本研究结合计算机模型生物学模拟及大鼠皮质丘脑脑片的电生理记录初步讨论了细胞内镁离子浓度对皮质丘脑网络的兴奋性的影响,为揭示儿童失神癫的发病机制提供实验基础,也为儿童失神癫的临床药物研发提供重要线索。

1 材料与方法
1.1 材料

育龄为2~3周的Long-Evans大鼠来源于美国明尼苏达大学动物实验部。人工脑脊液(ACSF)的配方:氯化钠(NaCl) 130 mmol/L;氯化钾(KCl) 3 mmol/L;磷酸二氢钠(NaH2PO4) 1.25 mmol/L;氯化镁(MgCl2) 2 mmol/L;氯化钙(CaCl2) 2 mmol/L;碳酸氢钠(NaHCO3) 26 mmol/L;dextrose 10 mmol/L。无镁液的组成:含有正常的ACSF的所有成分,除了MgCl2。配置ACSF和无镁液的化学品均购自美国Sigma公司。

1.2 方法
1.2.1 计算机模型生物学模拟
1.2.1.1 细胞内镁离子浓度依赖的BK通道模型制备

BK通道是一种大电导钾离子通道,BK通道的激活受到膜电位、细胞内镁离子和钙离子的调节[4]。为了模拟细胞内低镁对BK通道的影响,本研究修改了Migliore及其同事建立的神经元模型[5],在原模型中加入了一个细胞内镁离子浓度依赖的BK通道模块[6]。模块中各参数定义详见Zhang等[6]的研究。

1.2.1.2 细胞内镁离子依赖的NMDA受体模型

为了模拟细胞内镁离子浓度对NMDA受体阻断作用的影响,作者修改了Destexhe等[7]建立的NMDA受体模型,在原模型中加入了模拟细胞内镁离子浓度对NMDA受体阻断作用调节的成分。所有的参数在Destexhe模型中都有明确的定义[7]

1.2.2 皮质丘脑脑片的胞外记录

大鼠丘脑皮质脑片的制备流程:育龄为2~3周的Long-Evans大鼠被麻醉后,用剪刀和镊子分离出完整的脑组织并放入灌注有氧的冷ACSF中。接着将脑组织背面朝上置于事先排好的10°斜坡上,在脑组织的前额部,以55°斜切,然后将脑组织斜切面固定在切片机平台上(Vibratome 3000 EP™ Sectioning System)。以450~500 μm的厚度切片,最后将切好的皮质丘脑脑片置于35 ℃ ACSF中,至少孵育1 h。移除细胞内镁离子的操作:应用无镁液灌流皮质丘脑脑片1 h以上,然后换成正常镁离子浓度的ACSF灌流,此时神经元细胞处于细胞内低镁的状态。

用于脑片胞外记录的刺激电极为双极电极,两电极尖端之间的距离约为100 μm。刺激脉冲为1.0 mA,刺激持续时间为100 μs。在正常镁离子浓度和细胞内低镁情况下记录皮质丘脑网络的神经元场电位改变。

1.3 统计学处理

应用GraphPad Prism 5.0统计软件进行数据分析,组间两两比较采用双边t检验。P<0.05为差异统计学意义。

2 结果
2.1 计算机模型生物学模拟:细胞内低镁对BK通道和NMDA受体的影响

通过计算机模型生物学模拟发现,在细胞内低镁的情况下,BK通道的电导曲线仅略微向右偏移,即细胞内低镁并未对BK通道的激活造成显著的影响(图1A)。为了检测模型中神经元的输入阻抗变化,应用100 pA的电流刺激神经元来观察电压的改变,然后应用公式(电阻=电压/电流)来计算输入阻抗。本研究发现在静息状态下,细胞内低镁并未导致输入阻抗的改变。给予神经元一个60 pA、100 ms的刺激并记录了1 s内神经元爆发的动作电位数量,结果发现,在细胞内镁离子浓度正常与细胞内低镁这2种状态下,神经元的放电没有显著差异。说明细胞内低镁并未引起BK通道和神经元兴奋的明显变化。

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图1
计算机生物学模拟:细胞内低镁对BK通道和NMDAR相关电流的影响
Figure 1

The effects of low intracellular Mg2 on BK channel model and NMDAR model

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注:BK:大电导钾离子通道;NMDAR:N-甲基-D-天冬氨酸受体;A:BK通道电导曲线,细胞内镁离子浓度为1.0 mmol/L (蓝色),0.5 mmol/L(绿色),0.1 mmol/L(红色)。细胞内低镁可引起电导曲线向右偏移;B:细胞内镁离子对NMDAR突触电流的影响。PreV:突触前电位,图中所示为给予了3次同样的电流刺激;PostV:接收相应突触前信号的突触后电位。细胞内镁离子浓度为1.0 mmol/L (蓝色),0.1 mmol/L (红色) BK:big-conductance potassium channels;NMDAR:N-methyl-D-aspartate receptor;A:BK channel conductance as a function of voltage in normal 1.0 mmol/L intracellular (blue),half 0.5 mmol/L (green),low 0.1 mmol/L (red).Lower intracellular Mg2+ shifted the half activation of the curve to the right.B:The effect of intracellular Mg2+ concentration on NMDAR synaptic currents.PreV:the voltage of the presynaptic neuron,induced to fire in three bursts of action potentials;PostV:the postsynaptic potential in response to input from presynaptic cell.Red trace is the response in normal intracellular Mg2+ (1.0 mmol/L) and the blue trace is the response in low intracellular Mg2+(0.1 mmol/L)

图1
计算机生物学模拟:细胞内低镁对BK通道和NMDAR相关电流的影响
Figure 1

The effects of low intracellular Mg2 on BK channel model and NMDAR model

另一方面,推测细胞内低镁可引发NMDA受体相关电流的变化。为验证这一假说,本研究应用了一个具有细胞内和细胞外镁离子浓度双调控机制的NMDA受体模型。作者在突触前神经元细胞上给予一个40 pA的刺激,在细胞内低镁(0.1 mmol/L)的情况下,NMDA受体相关电流显著增加,突触后电位幅度增长了22%(图1B)。

2.2 皮质丘脑脑片记录

为观测细胞内低镁对突触后兴奋性电位幅度的影响,将皮质区域等分为4个区(图2A)。在正常的ACSF灌注脑片的情况下,来自丘脑的刺激仅仅能引起相应的较局限范围内的皮质区域产生微小的兴奋性突触后电位(fEPSPs)或是没有明显反应,相邻的皮质区域观察不到任何的场电位改变(图2B)。降低细胞内镁离子浓度时,可以在丘脑来源的刺激对应的皮质区域观察到更大幅度的fEPSPs,并且在相邻的区域也可以记录到一个较小幅度的fEPSPs(图2C)。在皮质的各个层面记录到的fEPSPs的幅度大小也是不尽相同的。具体地说,对于同一位置同一强度的来自丘脑的刺激,一般在皮质的Ⅱ、Ⅲ和Ⅳ层区域可以记录到较大幅度的fEPSPs,而在Ⅰ、Ⅴ层往往记录不到fEPSPs或仅能记录到较小的fEPSPs。在细胞内低镁的情况下,可以观察到,在皮质的Ⅱ、Ⅲ和Ⅳ层区域的fEPSPs的幅度明显增加,而在Ⅰ和Ⅴ层面的fEPSPs的增幅不显著(图2D)。

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图2
皮质丘脑网络的fEPSPs变化
Figure 2

fEPSPs in thalamocortical network

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注:fEPSPs:兴奋性突触后电位;A:在皮质丘脑脑片中的电极位置。皮质被分为4等分,在皮质安放记录电极,在丘脑区域安放刺激电极;B:刺激丘脑区域后记录到的皮质4个区域的fEPSPs。a为给予刺激的时间点。仅皮质1区记录到了fEPSPs;C:在细胞内低镁的情况下fEPSPs幅度增加;D:在皮质不同层面记录到的fEPSPs。给予相同的来自丘脑的刺激,可在层面Ⅱ/Ⅲ和Ⅲ/Ⅳ记录到较明显的fEPSPs,并且在细胞内低镁的情况下fEPSPs增强较明显 fEPSPs:field excitatory postsy-naptio potential;A:electrode position in thalamocortical slices.We divided the cortex into quarters.Recording electrode located in cortex,and stimulating electrode was set in thalamus;B:fEPSPs measured in 4 cortical regions in response to stimulation of the thalamus.afEPSP was only seen here in cortex region 1;C:fEPSPs were enhanced by low intracellular Mg2+ concentration;D:fEPSP responses in different layers of the same cortical region.Stimulation of the thalamus produced strong fEPSPs in layer Ⅱ/Ⅲ and Ⅲ/Ⅳ that were enhanced with low intracellular Mg2+.fEPSPs were enhanced significantly in low intracellular Mg2+

图2
皮质丘脑网络的fEPSPs变化
Figure 2

fEPSPs in thalamocortical network

2.3 NMDA受体阻滞剂CPP[3-(2-Carboxypiperazin-4-yl) propyl-1-phosphonic acid]对由细胞内低镁所致的fEPSPs和样放电的影响

在细胞内低镁的情况下,不但在皮质丘脑脑片上观察到了fEPSPs幅度的增长,也观察到了样放电。为了证实这些异常表现是否与NMDA受体相关电流的增强有关,本研究应用了CPP,一种特异性NMDA受体阻滞剂。结果发现,CPP可以使皮质区域的由细胞内低镁所致的fEPSPs幅度显著降低,样放电消失(图3)。这些都支持了作者之前关于细胞内低镁是通过增强NMDA受体相关电流而产生样放电的推测。将记录到的神经元自发放电的数据均分为100个时段以此来计算每个时段里的平均能量值:。在公式中,n是在每个时段中的样本量,v(i)是样本i的电压值。平均能量密度为100个时段的能量均值。在细胞内低镁的情况下,能量密度显著升高,而应用CPP后,能量密度基本回落到正常镁离子浓度所对应的水平(图3C)。

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图3
CPP可抑制由细胞内低镁诱导的fEPSPs和样放电
Figure 3

fEPSPs and spikes induced by low intracellular Mg2 were attenuated by CPP

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注:fEPSPs:兴奋性突触后电位;CPP:3-(2-Carboxypiperazin-4-yl) propyl-1-phosphonic acid;A:细胞内低镁情况下,在丘脑区域给予刺激后在皮质区域记录到的fEPSPs。此类fEPSPs可以被CPP明显阻断;B:正常镁离子浓度下的皮质区域的自发放电(上面),细胞内低镁情况下的皮质区域的自发放电(中间),应用CPP后的皮质区域的自发放电(下面);C:将B图中的数据均分为100个时间段并计算其平均能量密度。正常镁离子浓度和应用CPP时的平均能量密度(3.20×10-9 V2和4.56×10-9 V2)显著低于细胞内低镁时的平均能量密度(9.57×10-9 V2aP<0.001,bP<0.01 ) fEPSPs:field excitatory postsynaptio potential;A:fEPSPs in the cortex generated by the stimulation of the thalamus were attenuated by bath application of CPP;B:Spontaneous activity was seen in normal intracellular Mg2+ conditions (upper trace),spontaneous epileptiform spikes were seen in low intracellular Mg2+ conditions (middle trace) and these spikes decreased in frequency with application of CPP (bottom trace);C:The data was divided into 100 time bins for a recording under Normal,Low intracellular Mg2+ and bath applied CPP and power calculated in each bin.Mean power under normal Mg2+ and CPP (3.20×10-9 V2 and 4.56×10-9 V2) were significantly lower than low intracellular Mg2+ (9.57×10-9 V2aP<0.001,bP<0.01)

图3
CPP可抑制由细胞内低镁诱导的fEPSPs和样放电
Figure 3

fEPSPs and spikes induced by low intracellular Mg2 were attenuated by CPP

3 讨论

细胞内的镁离子对BK通道和NMDA受体有重要的调控作用。推测细胞内镁离子浓度的降低可能通过2条途径增强神经元细胞和神经网络的兴奋性:(1)BK通道的激活依赖细胞内的镁离子、钙离子以及膜电位。BK通道参与神经元细胞的超极化过程,在终止动作电位上发挥着重要作用。细胞内镁离子的减少很可能减弱了BK通道的激活,从而削弱了BK通道对神经元动作电位的阻断作用,最终导致了神经元兴奋性的增强。(2)通过削弱镁离子对NMDA受体的阻断作用而增强神经网络兴奋性。

研究表明增加细胞内的镁离子浓度(增加为正常值的10~100倍)可以显著增加BK通道的激活[8],但是没有研究报道细胞内低镁的情况下是否可以显著影响BK通道的激活。为了揭示细胞内低镁对BK通道的影响,本研究建立细胞内镁离子浓度依赖的BK通道模型。在这个模型中,在细胞内低镁的条件下没有观察到明显的BK通道激活和动作电位特性的改变。作者认为细胞内高镁可能更易引起BK通道激活的改变,细胞内低镁对BK通道激活的影响可能较微弱。另一方面,细胞内低镁可以增强NMDA受体相关电流从而增强兴奋性突触耦联。在NMDA受体模型中,发现细胞内低镁可以增强NMDA受体相关电流。本研究中的皮质丘脑脑片记录也支持电脑生物学模型的结果。在细胞内低镁的状况下,可以观察到fEPSPs的幅度增加和样放电的产生。这种在低镁情况下显著增加的fEPSPs和样放电可以被NMDA受体阻滞剂CPP所抑制。这些结果都支持细胞内镁离子浓度的降低将削弱镁离子对NMDA受体的阻断作用这一假说,从而增加NMDA受体相关电流,最终增强了神经网络的兴奋性耦联,导致样放电的产生。

目前认为,癫与离子通道和受体相关电流的异常密切相关。50%以上的癫患者存在遗传基础[9]。与癫相关的易感基因也多为离子通道和受体相关基因[10,11]。研究结果提示,癫的发生过程中很可能存在关键的节点或共同的通路,即离子通道和受体相关功能的改变,同时其发生也会受到遗传因素与环境因素共同作用的影响[12]。镁离子作为在人体中很多生化通路和离子通道激活过程中的关键分子,很可能是癫发生过程中的重要一环。只要是任何上游通路的改变引发了镁离子浓度的异常,将很可能影响到诸多镁离子相关离子通道和受体(如NMDA受体),导致突触电流的改变以及神经网络的兴奋性耦联过度增强。本研究已明确细胞内低镁可导致NMDA受体相关电流增强,从而引发神经元网络兴奋性增加。此外,目前研究癫的细胞模型有许多[13],但是在计算机模拟方面国内的研究还比较薄弱。本研究构建了与细胞内镁离子相关的计算机模型,其可以作为很好的预测工具,模拟不同的细胞内镁离子浓度对离子通道功能和神经元兴奋性的影响。对于一些特定的癫类型及其他镁离子相关的神经系统疾病,可以应用这些计算机模型来分析其潜在的分子机制。

儿童失神癫是小儿常见的特发性全面性癫之一,约占所有小儿癫的10%[14]。儿童失神癫的主要临床表现为短暂的意识丧失,双眼凝视及突然的动作终止。儿童失神癫的脑电图表现为特征性的3 Hz左右的棘慢综合波。2012年,本组从儿童失神癫患者中发现了染色体15q11.2和15q13.3区域的微缺失,提示这2个区域的拷贝数变异与儿童失神癫密切相关[15]。除此之外,还在儿童失神癫患者中发现了3个未报道的NIPA2基因突变(c.532A>T,p.I178F;c.731A>G,p.N244S;c.1002_1003insGAT,p.N334_335EinsD),首次明确了NIPA2与儿童失神癫密切相关[2]。NIPA2蛋白是一个9次跨膜蛋白,由360个氨基酸组成。NIPA2属于膜整合蛋白NIPA家族,发挥着转运细胞内外镁离子的功能[3]。此家族共包含4个家族成员,分别为NIPA1、NIPA2、NIPA3和NIPA4。NIPA1、NIPA3和NIPA4为非选择性的镁离子转运体,不仅转运镁离子而且可以转运其他的二价阳离子。然而,NIPA2是一种高选择性的镁离子转运体,几乎不转运其他的二价阳离子[3]。NIPA2蛋白主要分布在细胞膜和早期内体,NIPA2可将细胞外的镁离子运输到细胞内。至今未有关于NIPA2基因突变功能的相关报道。关于其同族基因NIPA1的突变功能研究发现,NIPA1突变体可以阻碍NIPA1蛋白的上膜,从而导致NIPA1蛋白潴留在细胞质内,使其不能有效转运镁离子[16]。基于这些研究,推测NIPA2基因突变也很可能削弱了NIPA2蛋白对镁离子的转运,导致细胞内镁离子浓度的降低。本研究已发现细胞内镁离子浓度的降低,可以增加NMDA受体相关电流,最终增强了神经元网络的兴奋性耦联,导致样放电的产生。这提示细胞内低镁很可能是儿童失神癫的发生过程中的重要一环,其与NIPA2基因突变引发儿童失神癫的致病机制可能密切相关。

相信深入地研究镁离子转运与癫发生的关系,明确镁离子转运体相关基因NIPA2的突变功能,将进一步加深对儿童失神癫的病理机制的认识。此外,本研究也为抗癫药物的研发提供了重要线索,促进镁离子转运的药物很可能可以作为新一类的潜在抗癫药物。

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