心血管疾病
维生素D诱导体外培养的内皮细胞一氧化氮生成
中华实用儿科临床杂志, 2014,29(13) : 1001-1004. DOI: 10.3760/cma.j.issn.2095-428X.2014.13.013
摘要
目的

观察维生素D(VitD)对内皮细胞一氧化氮(NO)生成的影响,以及诱导NO释放的可能信号途径。

方法

人脐静脉内皮细胞(HUVEC)与不同浓度VitD(0 mmol/L、0.01 mmol/L、0.10 mmol/L、1.00 mmol/L、10.00 mmol/L)一起培养60 min;与1.00 mmol/L VitD分别培养不同的时间(30 min、60 min、90 min、120 min);加入VitD受体(VDR)激动剂(ZK191784)或拮抗剂(ZK159222)培养60 min。NO荧光探针检测试剂盒(DAF-FM DA)检测细胞培养上清液NO水平。HUVEC和VitD一起培养,加入VDR受体激动剂或拮抗剂分别培养60 min,Western blot测定小窝蛋白(Caveolin-1)和内皮型NO合酶(eNOS)蛋白的表达及磷酸化水平。

结果

VitD浓度依赖性增加内皮细胞NO的生成,在浓度为1.0 mmol/L作用60 min产生最大效应。VDR激动剂或拮抗剂预处理内皮细胞可增加或抑制VitD诱导NO生成。VitD和VDR激动剂保持Caveolin-1在正常的低磷酸化水平,增加eNOS的磷酸化水平,而VDR拮抗剂增加Caveolin-1磷酸化,降低eNOS的磷酸化水平。

结论

VitD能通过VDR明显诱导内皮细胞NO生成。VitD与VDR相互作用维持Caveolin-1的低磷酸化水平,导致eNOS激活,NO生成增加。

引用本文: 邹敏书, 罗莉漫, 聂国明, 等.  维生素D诱导体外培养的内皮细胞一氧化氮生成 [J] . 中华实用儿科临床杂志, 2014, 29(13) : 1001-1004. DOI: 10.3760/cma.j.issn.2095-428X.2014.13.013.
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一氧化氮(nitric oxide,NO)是血管代谢中的关键调节因子,血管中NO生物活性降低被认为是导致心血管疾病的主要原因,血管内皮是血管内产生活性NO的唯一来源[1]。内皮功能障碍是心血管疾病的重要启动因素,突出表现为内皮依赖性血管舒张功能障碍,主要由NO产生减少和活性氧簇(ROS)生成增多所致。内皮细胞合成NO是通过内皮型NO合酶(eNOS),NO和eNOS在调节内皮活性上起重要作用。

维生素D(VitD)是一种作用广泛的维生素,不仅参与机体钙磷代谢,还对高血压、心力衰竭、糖尿病等发挥重要调节作用。VitD不足是心肌梗死及心血管疾病的危险因素[2]Meta分析显示,血中25(OH)D降低与高血压、高血糖、糖尿病及外周血管疾病密切相关[3]。内皮细胞胞内存在VitD受体(VDR),可表达1α羟化酶mRNA和蛋白质,可以合成VitD,内皮细胞共存1α羟化酶和VDR可能为VitD通过自分泌/旁分泌机制调节内皮功能提供了基础[4]。但VitD对心血管的保护作用是否与其促进内皮NO合成有关,目前知之甚少。本研究在培养的人脐静脉血内皮细胞(HUVEC)中观察VitD对NO生成及可能机制,并进行探讨。

1 材料与方法
1.1 HUVEC的培养及分组

HUVEC从出生新生儿脐带血10~15 mL中分离,细胞分离培养见文献报道[5],简述如下:HUVEC接种于1 g/L明胶包被的培养瓶中,加入含内皮生长介质2(EGM-2)培养液,并与人表皮生长因子(hEGF)、氢化可的松、庆大霉素、两性霉素B、20 mL/L胎牛血清(FBS),血管内皮生长因子(VEGF),碱性成纤维细胞生长因子(bFGF),重组人胰岛素样生长因子1、抗坏血酸、肝素、2 mmol/L谷氨酰胺、10 g/L青霉素、链霉素,置于37 ℃ 50 g/L的CO2培养箱内,细胞生长约80%融合后,以0.5 g/L胰蛋白酶+0.2 g/L EDTA消化传代。细胞形态学及对细胞内Ⅷ因子进行免疫细胞化学染色来鉴定是否为HUVEC,第2、3代用于实验。细胞培养如下:HUVEC分别与0 mmol/L、0.01 mmol/L、0.10 mmol/L、1.00 mmol/L、10.00 mmol/L VitD培养60 min;与1.00 mmol/L VitD培养不同时间(30 min、60 min、90 min、120 min),测定细胞培养上清液NO水平。细胞分组如下:HUVEC+0 mmol/L VitD培养(对照组)、HUVEC+1.00 mmol/L VitD培养(用乙醇溶解)(VitD组)、HUVEC+1.00 mmol/L VitD+VDR受体激动剂ZK191784(1.00 mmol/L)(VitD+ZK19组)、HUVEC+1.00 mmol/L VitD+拮抗剂ZK159222(1.00 mmol/L)(VitD+ZK15组)分别培养60 min,测定上清液NO水平,终止培养,收集细胞,蛋白印迹测定小窝蛋白(Caveolin-1)和eNOS蛋白表达及磷酸化水平(P-caveolin-1,P-eNOS)。新生儿脐带血的采集经医院伦理委员会审批同意,家属签知情同意书。VitD、DMEM培养基、ZK191784、ZK159222购自美国Sigma公司。

1.2 NO水平测定

1×105细胞接种于明胶包被24孔培养板,细胞附壁后在EGM-2介质孵育,后在DMEM培养基中培养4~6 h,加入2 mmol/L的谷氨酰胺和10 g/L青霉素,并不含FBS及苯酚。在细胞培养上清液中加用等体积格里斯(Griess)试剂,随后按NO荧光探针检测试剂盒(DAF-FM DA)说明进行操作。NO荧光探针检测试剂盒购自南京恩晶生物科技有限公司。

1.3 Western blot分析

PBS清洗细胞,过夜,用NO检测试剂活化细胞,原钒酸钠和PBS冰水液洗涤,RIPA裂解液裂解细胞,4 ℃ 12 000×g离心30 min,提取细胞总蛋白。BCA试剂盒测定测定总蛋白浓度,在95 ℃加热5 min预变性,30 μg的样品上样,十二烷基磺酸钠-聚丙烯酰胺凝胶(SDS-PAGE)电泳分离,转移至聚偏二氟乙烯(PVDF)膜,50 g/L脱脂奶粉封闭2 h,分别加入一抗(兔Caveolin-1或P-Caveolin-1、P-eNOS或eNOS单克隆抗体),4 ℃过夜,加辣根过氧化物酶标记的二抗37 ℃孵育1 h。利用UVP化学荧光成像系统(ChemiDoc-It™600 Imaging System)进行化学发光显影,以β-actin作为内参。P-Caveolin-1和Caveolin-1,P-eNOS和eNOS抗体购自美国Cell Signaling公司。

1.4 统计学处理

采用SPSS 17.0统计软件完成数据的统计分析。计量资料采用±s表示,多组比较采用One-Way ANOVA方差分析,两两比较方差齐者采用LSD法,方差不齐者采用Dunnett's T3检验。P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果
2.1 VitD促进NO生成的剂量时间效应关系

浓度0 mmol/L、0.01 mmol/L、0.10 mmol/L、1.00 mmol/L、10.00 mmol/L VitD与HUVEC一起培养60 min诱导上清液NO生成水平不同,差异有统计学意义(F=51.84,P=0.00)。随着VitD浓度增加,细胞培养上清液NO浓度亦增加,见图1。1.00 mmol/L VitD与HUVEC培养30 min、60 min、90 min、120 min,VitD诱导NO生成水平不同,差异有统计学意义(F=41.13,P=0.000),最大生成效应在60 min,60 min后NO生成呈下降趋势,见图2

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图1
不同浓度维生素D诱导内皮细胞一氧化氮的生成变化
Figure 1
Effects of vitamin D at different concentrations on nitric oxide production in endothelial cells
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注:与0 mmol/L组比较,aP<0.01;与0.01 mmol/L及0.10 mmol/L组比较,bP<0.01,n=5 Compared with 0 mmol/L group,aP<0.01;compared with 0.01 mmol/L and 0.10 mmol/L group,bP<0.01,n=5

图1
不同浓度维生素D诱导内皮细胞一氧化氮的生成变化
Figure 1
Effects of vitamin D at different concentrations on nitric oxide production in endothelial cells
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图2
维生素D与内皮细胞培养不同时间诱导一氧化氮的生成变化
Figure 2
Vitamin D cultured with endothelial cells at different time on nitric oxide production
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注:与0 mmol/L组比较,aP<0.01;与30 min组比较,bP<0.01;与60 min组比较,cP<0.05,n=5 compared with 0 mmol/L group,*P<0.01;compared with 30 min group,bP<0.01,compared with 60 min group,cP<0.05,n=5

图2
维生素D与内皮细胞培养不同时间诱导一氧化氮的生成变化
Figure 2
Vitamin D cultured with endothelial cells at different time on nitric oxide production
2.2 VDR对NO生成的影响

VitD单用诱导NO释放为(48.40±6.34) μmol/L,较对照组[(20.30±2.07) μmol/L]升高,差异有统计学意义(P=0.000)。VitD+ZK19使NO生成量骤然上升,达(58.34±5.05) μmol/L,较VitD组增加20.53%,差异有统计学意义(P=0.003)。VitD+ZK15组[(40.7±3.52) μmol/L]较VitD组诱导NO生成效应减少(P=0.016),较VitD+ZK19组明显减少(P=0.000)。

2.3 VitD激活细胞内信号导致eNOS活化

与对照组相比,VitD组、VitD+ZK19组及VitD+ZK15组Caveolin-1的表达未见明显改变;VitD组、VitD+ZK19组P-Caveolin-1与Caveolin-1的比值亦无明显改变(P=0.638、0.813),而ZK15明显增加P-Caveolin-1/Caveolin-1(P=0.000)。与对照组相比,VitD、VitD+ZK19、VitD+ZK15三组eNOS的表达亦未见明显改变,给予VitD或VitD+ZK19组明显增加P-eNOS/eNOS(P<0.01),而VitD+ZK15组P-eNOS/eNOS无明显增加(P=0.337)。与VitD组相比,VitD+ZK19组P-eNOS/eNOS明显增加,差异有统计学意义(P=0.029),见图3图4表1

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表1

对照组、VitD组、VitD+ZK19组和VitD+ZK15组P-Caveolin-1/Caveolin-1及P-eNOS/eNOS水平的比较(±s)

Table 1

Comparison of P-Caveolin-1/Caveolin-1 and P-eNOS/eNOS in the control group,VitD group,VitD+ZK19 group and VitD+ZK15 group(±s)

表1

对照组、VitD组、VitD+ZK19组和VitD+ZK15组P-Caveolin-1/Caveolin-1及P-eNOS/eNOS水平的比较(±s)

Table 1

Comparison of P-Caveolin-1/Caveolin-1 and P-eNOS/eNOS in the control group,VitD group,VitD+ZK19 group and VitD+ZK15 group(±s)

组别例数P-Caveolin-1/Caveolin-1P-eNOS/eNOS
对照组50.22±0.050.23±0.07
VitD组50.24±0.060.53±0.10a
VitD+ZK19组50.23±0.060.68±0.13ad
VitD+ZK15组50.44±0.09abc0.29±0.09c
F 12.7622.62
P 00

注:eNOS:内皮型NO合酶;与对照组比较,aP<0.01;与VitD组比较,bP<0.01,dP<0.05;与VitD+ZK191784组比较,cP<0.01 eNOS:endothelial nitric oxide synthase;compared with control group,aP<0.01;compared with VitD group,bP<0.01,dP<0.05;compared with VitD+ZK191784 group,cP<0.01

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图3
维生素D受体激动剂及拮抗剂对Caveolin-1磷酸化的影响
Figure 3
Effects of vitamin D agonist and antagonist on the phosphorylation of Caveolin-1
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图3
维生素D受体激动剂及拮抗剂对Caveolin-1磷酸化的影响
Figure 3
Effects of vitamin D agonist and antagonist on the phosphorylation of Caveolin-1
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图4
维生素D受体激动剂及拮抗剂对内皮型一氧化氮合酶磷酸化的影响
Figure 4
Effects of vitamin D agonist and antagonist on the phosphorylation of endothelial nitric oxide synthase
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图4
维生素D受体激动剂及拮抗剂对内皮型一氧化氮合酶磷酸化的影响
Figure 4
Effects of vitamin D agonist and antagonist on the phosphorylation of endothelial nitric oxide synthase
3 讨论

血管内皮细胞损伤在动脉粥样硬化过程中起重要作用,NO生成减少是内皮功能损伤的主要标志,与内皮功能失调、胰岛素对抗、心血管重构密切相关[6]。NO是一种内皮源性舒张因子,具有松弛血管平滑肌细胞、抗动脉粥样硬化、抑制血小板黏附和血栓形成等,吸入NO可选择性地降低肺血管阻力、改善肺的氧合功能,是治疗新生儿持续性肺动脉高压有效方法之一。eNOS是内皮细胞促进NO生成的关键酶,参与某些血管疾病如动脉粥样硬化和高血压的发病机制[7]

VitD是儿童基本的营养素,其缺乏导致全身整体代谢异常,与多种儿童疾病如骨骼、心血管、先天性心脏病、肾脏[8]、小儿肥胖[9]、糖尿病等关系密切。在心血管系统中,VitD能负向调节肾素血管紧张素活性,VitD不足易患高血压、左心室肥厚、心力衰竭等[10]。在高血压患者,给予VitD治疗可以降低血压,改变心力衰竭患者的细胞因子[11]。本研究显示,VitD能刺激内皮细胞NO生成,这种效应与剂量有关,且诱导NO释放的最大效应在60 min,似乎是通过非受体介导的非基因效应起作用。本结果提示,VDR激动剂增加VitD诱导NO释放效应,VDR拮抗剂则抑制VitD诱导NO的释放,提示VitD主要通过与VDR结合促进NO的生成,而并非通过非受体途径起作用。

小窝(Caveolae)是一类特定的脂筏结构,而Caveo-lin-1是Caveolae的重要结构和功能蛋白,参与Caveolae的形成、细胞增殖、分化、凋亡以及多种信号通路的调控[12]。近年来有研究证实,Caveolin-1在正常情况下保持低磷酸化水平,在血管内皮细胞中表达。Caveolin-1是eNOS的负调控蛋白,细胞内钙离子浓度增加为激活eNOS的重要条件[13]。本结果提示,VitD和VDR激动剂保持Caveolin-1在正常的低磷酸化水平,增加eNOS的磷酸化水平,而VDR拮抗剂增加Caveolin-1的磷酸化,降低eNOS的磷酸化水平,提示VitD可能通过维持Caveolin-1低磷酸化水平,并增加eNOS的磷酸化水平从而促进NO的生成。VitD促进内皮细胞NO生成可能与促进Ca2+内流、维持Caveolin-1低磷酸化水平从而激活eNOS等有关。

目前,绝大多数有关VtiD防治心血管病的报道是正面的,且有较多的VitD类似物出现,治疗可能较VitD在降低心血管危险、糖尿病肾病等方面更为有效,且不良反应可能更少[14,15]。本结果显示,VitD/VDR复合物可能维持Caveolin-1在低磷酸化水平导致eNOS的磷酸化,可增加内皮NO的生成,对血管功能产生有益的作用。补充VitD或VDR类似物可能是治疗或预防心血管疾病有效药物之一。

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