综述
益生菌对脑发育的调控作用
中华新生儿科杂志, 2019,34(1) : 70-73. DOI: 10.3760/cma.j.issn.2096-2932.2019.01.017
摘要

随着"肠-脑轴"概念的提出,有关肠道菌群对脑发育及脑功能影响的研究逐年增加,益生菌作为构成肠道菌群的主要菌属,也逐渐成为脑科学研究的热点。已有不少动物实验证明益生菌可以改善焦虑、抑郁、孤独症谱系障碍、强迫症等精神障碍的症状。本文主要总结现有研究,从神经系统的结构发育、神经发生的营养支持、下丘脑-垂体-肾上腺轴的建立及功能调节、神经递质及其受体的表达、免疫功能调节等方面,针对益生菌对脑发育的调控作用进行综述。

引用本文: 耿悦航, 刘黎黎, 侯新琳. 益生菌对脑发育的调控作用 [J] . 中华新生儿科杂志, 2019, 34(1) : 70-73. DOI: 10.3760/cma.j.issn.2096-2932.2019.01.017.
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近年来,肠道菌群已逐渐成为生物学及医学领域研究的热点,有学者认为肠道菌群是人体"被遗忘的器官"[1]。人类消化道中存活着1×1014~1×1015个细菌,超过宿主细胞总数的10倍,其中包括1 000余个菌种、7 000余个菌株,其携带的基因数量约为宿主遗传基因组的150倍[1]。因此人们更加重视肠道菌群在人体中发挥的各种病理生理作用,并积极探索其与健康和疾病之间的关系。

肠与脑之间的关系研究起始于19世纪中期[2],科学家发现强烈的情绪变化可影响消化道功能,且不同情绪状态下胃肠动力学变化的规律不同。人们还观察到一些常见的慢性消化道疾病可导致80%的患者合并抑郁、焦虑等精神障碍[3],提示肠与脑之间的交流具有双向性。为了进一步研究肠与脑之间的联系,1998年Aziz和Thompson[2]提出了"肠-脑轴"的概念。

越来越多研究表明,肠道菌群及其代谢产物可通过神经、内分泌、免疫等机制在肠与脑的交流中发挥重要作用[1]。肠道菌群的建立主要发生在生后3年内,早期以放线菌门和变形菌门为优势菌,后逐渐被厚壁菌门和拟杆菌门取代,使菌群多样性增加,并逐渐趋于稳定,3岁左右接近于成人肠道微环境[4],而此阶段也是脑发育较为迅速的时期,树突和轴突迅速生长,神经胶质细胞大量扩增,脑皮质中不断形成神经突触,已有的神经突触进一步被修剪,髓鞘形成,脑重量不断增加,脑分化进一步完善,构成复杂的神经功能网络[5]。因肠道菌群的建立与中枢神经系统发育的关键期存在时间上的重合,因此外界环境对肠道菌群的改变可能会对脑发育产生影响。益生菌是肠道菌群的主要组成部分[6],对于维持肠道功能及肠道微环境的稳定状态起重要作用。本文就益生菌对脑发育的调控及其机制综述如下。

一、益生菌

世界卫生组织(world health organization,WHO)将益生菌定义为"摄入足够剂量后,能够对机体产生有益影响的、活的微生物"[7],是正常肠道菌群中的主要菌属,在种类和数量上具有显著优势。通常以双歧杆菌属和乳酸杆菌属为主,占肠道菌群总数量的前2位[6]。益生菌参与对抗多种疾病,如非酒精性脂肪肝和哮喘等[4];可减轻一些免疫相关性疾病的症状,如炎症性肠病及乳糜泻等[8]。另外,有研究显示,母亲孕期及婴儿6个月后服用乳酸菌和双歧杆菌可降低婴幼儿患湿疹和鼻结膜炎的风险[9]

随着近些年有关肠道菌群对脑发育、脑功能影响的研究增多,益生菌作为构成肠道菌群的主要菌属,也逐渐成为脑科学家们研究的热点。较多动物实验证实益生菌可改善焦虑、抑郁、孤独症谱系障碍(autism spectrum disorder,ASD)、强迫症等精神障碍症状,还可提升记忆功能[10]。这些研究为新生儿生后早期应用益生菌促进脑发育、改善脑功能提供了一定的理论基础。

二、益生菌对脑发育的调控及其机制

多数关于益生菌调控脑发育机制的研究尚处于动物实验阶段,人类研究非常有限。目前发现并提出的调控作用及可能机制如下。

1.参与神经系统结构发育调控:

(1)调节海马神经元数目:根据功能分工不同,海马沿长轴分为腹侧和背侧,前者主要调控焦虑和应激反应,后者参与空间学习和记忆过程。近年研究表明,海马不同部位的神经发育过程可受到不同因素的调节[11]。Ogbonnaya等[12]研究发现无菌小鼠背侧海马神经元的增殖水平比正常菌群定植的对照组小鼠升高,提示肠道菌群对神经元细胞的形成及神经发生育过程存在一定的调控作用。当无菌小鼠断奶后使其肠道菌群与对照组相同时,其神经元数目并未减少,提示小鼠生后至断奶前(生后3周内)是肠道菌群影响脑发育的关键时期,如错过该时期可能对神经发育过程产生不可逆的影响。(2)调节杏仁核神经元形态:杏仁核结构和功能改变与一系列神经心理疾病相关,包括ASD和焦虑症等[13]。Luczynski等[13]研究发现无菌小鼠杏仁核整体体积较对照组增大,基底外侧杏仁核中神经元突触的形态改变,树突变肥大,细树突棘、短粗树突棘和伞状树突棘的数量及密度增加,提示肠道正常菌群对杏仁核形态的发育必不可少。(3)调节白质发育:白质发育如前额皮质(prefrontal cortex,PFC)髓鞘形成也受肠道菌群的调节。PFC在恐惧和焦虑等情绪过程中发挥着重要作用,参与调节下丘脑-垂体-肾上腺(hypothalamus- pituitary-adrenal,HPA)轴功能,并与杏仁核共同构成情绪调控的神经回路[14]。脑发育关键时期PFC髓鞘形成的可塑性极强,易受外界因素影响。Hoban等[14]研究发现无菌小鼠PFC中出现过度髓鞘化现象,髓鞘厚度增加,与髓鞘形成相关的基因表达也出现了上调。这种现象只局限于PFC中而未见于其他区域,提示肠道菌群对不同脑区域发育的影响可能不尽相同。(4)调节血脑屏障发育:Braniste等[15]研究显示无菌小鼠血脑屏障的发育从胚胎早期即开始,生后早期发育成熟,为神经发育和分化提供了适宜而稳定的微环境。与正常菌群母鼠的后代相比,无菌母鼠的后代胎儿期血脑屏障通透性增加,并且生后乃至成年期仍无改善,可能与闭锁蛋白及密封蛋白5等紧密连接蛋白表达水平降低有关。

2.参与神经发生过程中的营养支持调节:

(1)调节神经营养因子表达:神经营养因子在神经发生、脑区域关联、维持神经元可塑性及突触完整性中起重要作用,对神经元生长和生存尤为重要,其中脑源性神经营养因子(brain-derived neurotrophic factor,BDNF)是哺乳动物中枢神经系统中最主要的神经营养因子[16]。Sudo等[17]研究发现BDNF在无菌小鼠脑组织中的表达水平较对照组降低。而另一项研究显示,植物乳杆菌、瑞士乳杆菌、长双歧杆菌和丁酸梭菌等益生菌可增加小鼠下丘脑及其他脑组织中BDNF的表达水平[10]。(2)调节脑脂肪酸含量:脑花生四烯酸和二十二碳六烯酸等多不饱和脂肪酸在脑发育过程中也发挥着重要作用,可促进神经发生、调节神经传递、减轻氧化应激反应,并影响情绪、学习和记忆功能[1]。Wall等[18]研究发现短双歧杆菌可增加小鼠脑花生四烯酸和二十二碳六烯酸的含量,但这种作用仅限于短双歧杆菌NCIMB 702258株,未见于短双歧杆菌菌株DPC 6330株,提示该作用依赖于特定的菌株。

3.参与HPA轴的建立及功能调节:

正常的HPA轴对压力调节能力、情绪稳定性、学习和记忆能力等形成与提高至关重要。胎儿期或生后早期的慢性应激可能会影响HPA轴的建立和功能调节,从而导致糖皮质激素的过度分泌。过多的糖皮质激素影响神经元、髓鞘、神经胶质细胞的成熟,抑制突触形成,对脑发育造成不良影响[19]

Sudo等[17]研究无菌小鼠暴露于一定的约束应激(活动范围限制于50 ml锥形筒中)时较正常菌群小鼠产生了更强烈的应激反应,促肾上腺素水平及糖皮质激素水平均显著升高,提示无菌小鼠HPA轴的调节能力受到影响。将对照组小鼠的粪便移植到无菌小鼠肠道后,其应激反应强度有所减轻,说明以益生菌为主的肠道菌群参与了HPA轴的调控作用,并且移植时间越早,应激反应越接近对照组水平。

现有研究发现应用益生菌可降低小鼠血清糖皮质激素和(或)促肾上腺皮质激素的水平,如Liu等[20]将实验组小鼠于生后第2~14天与母亲每天隔离3 h,建立小鼠的早期应激模型,并于小鼠生后29 d起连续4周灌胃给予植物乳杆菌。结果显示,与对照组小鼠相比,实验组小鼠血清中基础糖皮质激素水平显著升高,但此效应可一定程度被植物乳杆菌逆转,使其糖皮质激素水平降低至接近非应激小鼠的水平。目前研究发现能够降低小鼠血清糖皮质激素水平的益生菌还包括瑞士乳杆菌、发酵乳杆菌、鼠李糖乳杆菌和干酪乳杆菌代田株[10]。除了对糖皮质激素的影响,瑞士乳杆菌还可降低小鼠血清促肾上腺皮质激素的水平[10]。不仅如此,研究还发现发酵乳杆菌可增加小鼠下丘脑内盐皮质激素受体的数目,改善小鼠情绪并提升空间记忆能力[10]

4.参与调节神经递质及其受体表达:

5-羟色胺(5-hydroxy-tryptamine,5-HT)系统参与神经发生、细胞迁移、轴突导向、树突形成及突触形成等脑发育过程,其在生后脑发育关键时期表达与调节紊乱可能增加成年后焦虑、抑郁等相关疾病的患病风险[21]。Clarke等[22]研究发现无菌小鼠海马中5-HT及其代谢产物,以及前体物质色氨酸水平均较正常菌群定植的对照组小鼠升高,提示肠道菌群可能通过调节5-HT代谢影响脑发育。小鼠断奶后正常菌群的恢复虽然可使外周色氨酸降至对照组水平,脑组织内5-HT水平却无法恢复,提示已产生不可逆的神经化学效应。但上述无菌环境对神经化学环境的改变仅见于雄性小鼠,更加证明肠道菌群对于脑发育的影响机制十分复杂并受多种因素的影响。

γ-氨基丁酸(gamma-Aminobutyric acid,GABA)是中枢神经系统主要的抑制性神经递质,参与调节多种生理、心理过程,其受体表达失衡可能导致焦虑和抑郁[23]。Bravo等[24]研究发现鼠李糖乳杆菌可调节小鼠GABAA和GABAB受体的表达,并于不同脑区域呈现不同的变化趋势和水平,饮食中加入鼠李糖乳杆菌的小鼠较对照组焦虑或抑郁情绪减轻。但这些抗焦虑和抗抑郁作用在切除迷走神经之后即消失,提示鼠李糖乳杆菌对于中枢神经系统的影响依赖于迷走神经的传导。表现出迷走神经依赖性的益生菌还有长双歧杆菌,为了进一步明确长双歧杆菌是否通过肠神经系统参与肠-脑轴的调节,Bercik等[25]将小鼠的肠神经浸润于长双歧杆菌的发酵产物之中,发现肠神经元受到刺激后的动作电位较对照组出现显著改变,提示长双歧杆菌的代谢产物可能直接改变肠神经元的激动性,参与肠-脑轴的调节。该实验并未观察到脑组织中BDNF水平的变化,提示上述长双歧杆菌增加BDNF表达水平的机制可能不直接依赖于其代谢产物的作用,而与细菌本身作用相关。

5.参与免疫功能调节:

在另一项应用早期应激小鼠模型的研究中,Desbonnet等[26]发现生后早期与母亲隔离的小鼠成年(2~4月龄)后表现出情绪和行为异常,同时伴有血白细胞介素6水平升高,而白细胞介素6已被证实在抑郁症的发病中起一定作用[27]。但在50日龄时持续予以婴儿双歧杆菌口服的小鼠则没有出现明显的情绪行为异常和白细胞介素6水平的变化,提示对于该因子的调节作用可能是益生菌影响情绪行为的机制之一。

益生菌不仅可以对外周的免疫反应进行调控,Thion等[28]最近的一项研究还发现肠道菌群可以影响脑中小胶质细胞的数量及形态。小胶质细胞在中枢神经系统中起着类似于巨噬细胞的作用,是脑中的重要免疫防线,并在脑发育和脑功能维持中发挥着重要作用。Thion等[28]研究发现无菌小鼠胚胎期脑内的小胶质细胞数量较对照组增加,细胞形态上也出现了更多的分枝。研究还发现,肠道菌群对于小胶质细胞的影响与发育不同阶段和性别均有关系。雄性无菌小鼠在胚胎期脑内小胶质细胞数目增加较雌性小鼠更为明显,而雌性无菌小鼠成年后脑内小胶质细胞较雄性小鼠增殖更为显著。但不论性别或发育阶段,无菌小鼠小胶质细胞的免疫相关基因表达水平均与对照组有所不同,提示肠道菌群对脑内正常免疫功能的建立起重要作用。

三、问题与展望

尽管目前的研究显示,不同种类的益生菌对于脑发育和脑功能可能有着相似的影响和作用,包括改善焦虑和抑郁情绪,提升记忆力等,但不同种类益生菌的作用机制和作用途径可能会有所不同,如部分菌种的作用依赖于迷走神经的兴奋,并且这些作用可能仅限于某菌种特定的一些菌株。因此,我们还需要更深入地研究某一特定菌种或者菌株影响脑发育的具体作用机制,以便更有依据和针对性地进行个体化靶向治疗。目前相关人类试验十分缺乏,将动物实验进一步转化为临床试验并验证其结果面临着诸多困难。但关于益生菌对脑发育的调控及其机制的研究空间和前景十分广阔,肠与脑之间的交流联系可望更进一步深入研究,为以后实现精神神经系统疾病的早期干预提供可能途径。

利益冲突
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所有作者均声明不存在利益冲突

参考文献
[1]
CryanJF, DinanTG. Mind-altering microorganisms: the impact of the gut microbiota on brain and behaviour[J]. Nat Rev Neurosci, 2012,13(10):701-712. DOI: 10.1038/nrn3346.
[2]
AzizQ, ThompsonDG. Brain-gut axis in health and disease[J]. Gastroenterology, 1998,114(3):559-578.
[3]
Al-AsmakhM, AnuarF, ZadjaliF, et al. Gut microbial communities modulating brain development and function[J]. Gut Microbes, 2012,3(4):366-373. DOI: 10.4161/gmic.21287.
[4]
CerdóT, RuízA, SuárezA, et al. Probiotic, prebiotic, and brain development[J]. Nutrients, 2017, 9(11). DOI: 10.3390/nu9111247.
[5]
DiazHR. Fetal, neonatal, and infant microbiome: perturbations and subsequent effects on brain development and behavior[J]. Semin Fetal Neonatal Med, 2016, 21(6): 410-417. DOI: 10.1016/j.siny.2016.04.012.
[6]
Bermudez-BritoM, Plaza-DíazJ, Muñoz-QuezadaS, et al. Probiotic mechanisms of action[J]. Ann Nutr Metab, 2012, 61(2):160-174. DOI: 10.1159/000342079.
[7]
Food and Agriculture Organization and World Health Organization. Health and nutritional properties of probiotics in food including powder milk with live lactic acid bacteria. Report of a joint FAO/WHO expert consultation on evaluation of health and nutritional properties of probiotics in food including powder milk with live lactic acid bacteria.2001.
[8]
IvanovII, HondaK. Intestinal commensal microbes as immune modulators[J]. Cell Host Microbe, 2012, 12(4): 496-508. DOI: 10.1016/j.chom.2012.09.009.
[9]
BertelsenRJ, BrantsæterAL, MagnusMC, et al. Probiotic milk consumption in pregnancy and infancy and subsequent childhood allergic diseases[J]. J Allergy Clin Immunol, 2014, 133(1): 165-171.e1-8. DOI: 10.1016/j.jaci.2013.07.032.
[10]
WangH, LeeIS, BraunC, et al. Effect of probiotics on central nervous system functions in animals and humans: a systematic review[J]. J Neurogastroenterol Motil, 2016, 22(4): 589-605. DOI: 10.5056/jnm16018.
[11]
O′LearyOF, CryanJF. A ventral view on antidepressant action: roles for adult hippocampal neurogenesis along the dorsoventral axis[J]. Trends Pharmacol Sci, 2014, 35(12): 675-687. DOI: 10.1016/j.tips.2014.09.011.
[12]
OgbonnayaES, ClarkeG, ShanahanF, et al. Adult hippocampal neurogenesis is regulated by the microbiome[J]. Biol Psychiatry, 2015, 78(4): e7-9. DOI: 10.1016/j.biopsych.2014.12.023.
[13]
LuczynskiP, WhelanSO, O′SullivanC, et al. Adult microbiota-deficient mice have distinct dendritic morphological changes: differential effects in the amygdala and hippocampus[J]. Eur J Neurosci, 2016, 44(9): 2654-2666. DOI: 10.1111/ejn.13291.
[14]
HobanAE, StillingRM, RyanFJ, et al. Regulation of prefrontal cortex myelination by the microbiota[J]. Transl Psychiatry, 2016, 6: e774. DOI:1038/tp.2016.42.
[15]
BranisteV, Al-AsmakhM, KowalC, et al. The gut microbiota influences blood-brain barrier permeability in mice[J]. Sci Transl Med, 2014,6(263):263ra158. DOI: 10.1126/scitranslmed.3009759.
[16]
DaskalakisNP, De KloetER, YehudaR, et al. Early life stress effects on glucocorticoid-BDNF interplay in the hippocampus[J]. Front Mol Neurosci, 2015, 8:68. DOI: 10.3389/fnmol.2015.00068.
[17]
SudoN, ChidaY, AibaY, et al. Postnatal microbial colonization programs the hypothalamic-pituitary-adrenal system for stress response in mice[J]. J Physiol, 2004, 558(Pt 1): 263-275. DOI: 10.1113/jphysiol.2004.063388.
[18]
WallR, MarquesTM, O′SullivanO, et al. Contrasting effects of bifidobacterium breve NCIMB 702258 and bifidobacterium breve DPC 6330 on the composition of murine brain fatty acids and gut microbiota[J]. Am J Clin Nutr, 2012, 95(5): 1278-1287. DOI: 10.3945/ajcn.111.026435.
[19]
LupienSJ, McEwenBS, GunnarMR, et al. Effects of stress throughout the lifespan on the brain, behaviour and cognition[J]. Nat Rev Neurosci, 2009, 10(6): 434-445. DOI: 10.1038/nrn2639.
[20]
LiuYW, LiuWH, WuCC, et al. Psychotropic effects of Lactobacillus plantarum PS128 in early life-stressed and naïve adult mice[J]. Brain Res, 2016, 1631: 1-12. DOI: 10.1016/j.brainres.2015.11.018.
[21]
TeissierA, Soiza-ReillyM, GasparP. Refining the role of 5-HT in postnatal development of brain circuits[J]. Front Cell Neurosci, 2017, 11: 139. DOI: 10.3389/fncel.2017.00139.
[22]
ClarkeG, GrenhamS, ScullyP, et al. The microbiome-gut-brain axis during early life regulates the hippocampal serotonergic system in a sex-dependent manner[J]. Mol Psychiatry, 2013, 18(6): 666-673. DOI: 10.1038/mp.2012.77.
[23]
WuC, SunD. GABA receptors in brain development, function, and injury[J]. Metab Brain Dis, 2015, 30(2): 367-379. DOI: 10.1007/s11011-014-9560-1.
[24]
BravoJA, ForsytheP, ChewMV, et al. Ingestion of Lactobacillus strain regulates emotional behavior and central GABA receptor expression in a mouse via the vagus nerve[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2011, 108(38): 16050-16055. DOI: 10.1073/pnas.1102999108.
[25]
BercikP, ParkAJ, SinclairD, et al. The anxiolytic effect of bifidobacterium longum NCC3001 involves vagal pathways for gut-brain communication[J]. Neurogastroenterol Motil, 2011, 23(12): 1132-1139. DOI: 10.1111/j.1365-2982.2011.01796.x.
[26]
DesbonnetL, GarrettL, ClarkeG, et al. Effects of the probiotic bifidobacterium infantis in the maternal separation model of depression[J]. Neuroscience, 2010, 170(4): 1179-1188. DOI: 10.1016/j.neuroscience.2010.08.005.
[27]
DinanTG. Inflammatory markers in depression[J]. Curr Opin Psychiatry, 2009, 22(1): 32-36. DOI: 10.1097/YCO.0b013e328315a561.
[28]
ThionMS, LowD, SilvinA, et al. Microbiome influences prenatal and adult microglia in a sex-specific manner[J]. Cell, 2018, 172(3): 500-516.e16. DOI: 10.1016/j.cell.2017.11.042.
 
 
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