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临床研究
青藏高原藏族高原红细胞增多症与EDNRA基因遗传多态性的关系
中华医学杂志, 2015,95(18) : 1382-1385. DOI: 10.3760/cma.j.issn.0376-2491.2015.18.006
摘要
目的

探讨EDNRA基因的遗传多态性是否和青藏高原藏族的高原红细胞增多症(HAPC)易感性有关。

方法

采用病例对照研究策略,研究了63名HAPC藏族和131名健康的、年龄和性别相匹配的对照藏族,所有的藏族都来自中国青海省海拔3 500米以上的玉树地区。采用Sequenom Mass ARRAY的方法检测了所有研究对象EDNRA基因的5个SNP位点(rs10003447, rs1801708, rs2048894, rs5335 and rs6841581)基因型和等位基因分布,比较各SNP位点在两组之间的差异。

结果

发现EDNRA基因的5个SNP位点等位基因在HAPC组和健康对照组的分布差异无统计学意义(P=0.742;P=0.733;P=0.828;P=0.417; P=0.096)。

结论

虽然EDNRA基因多态性和藏族适应高原有关但是和藏族HAPC的易感性无关。

引用本文: 胥瑾, 杨应忠, 王展, 等.  青藏高原藏族高原红细胞增多症与EDNRA基因遗传多态性的关系 [J] . 中华医学杂志, 2015, 95(18) : 1382-1385. DOI: 10.3760/cma.j.issn.0376-2491.2015.18.006.
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青藏高原是世界上海拔最高的高原,平均海拔在4 000 m以上,大部分的藏族人长期居住在青藏高原海拔3 500 m以上的高原地区[1]。这些藏族拥有适应低氧环境的独特遗传优势,表现为更低的血红蛋白(Hb)水平,更低的红细胞压积(HCT),更高的新生儿动脉血氧气饱和度,更强的低氧下劳动耐力[2]。但是有部分世居藏族表现出高的血红蛋白浓度,甚至发展为高原红细胞增多症(HAPC)[3]。HAPC的特征是过度的红细胞增生,(男,血红蛋白浓度 ≥210 g/L;女,血红蛋白浓度≥190 g/L)[4]。久居高原的人群机体为了适应高原低氧,血液循环中增生出更多的红细胞去携带更多的氧气到机体各组织,所以会出现代偿性的红细胞增生现象。过度的红细胞增生就发展为HAPC,HAPC发生在5%~18%的青藏高原居民中[5],可以导致机体血液黏度增加,微循环障碍,睡眠呼吸紊乱,血栓及组织器官损伤[6,7,8]。虽然高原低氧环境被认为是高原居民发生HAPC的使动因素,但HAPC具体的发病机制还不十分清楚。

EDNRA(Endothelin receptors type A)基因被XP-EHH (Cross Population Extended Haplotype Homozogysity)和iHS(integrated haplotype score)方法检测出是和藏族适应高原低氧环境相关的正选基因[9]。它主要介导EDN1(endothelin 1)的功能,例如启动内皮细胞和血管平滑肌的迁移和增殖,刺激T淋巴细胞的增殖,促进单核/巨噬细胞的趋化作用。EDNRA表达于血管平滑肌,和血管平滑肌的作用有关。它的多态性和很多疾病有关,如冠状动脉疾病、原发性胆汁性肝硬化和囊性纤维化肺疾病等[10]。很多研究表明EDNRA, EPAS1, EGLN1, PPARA是高原世居藏族适应高原的相关基因[9,11]。是否所有的藏族都具有相同的EDNRA基因基因型,是否EDNRA基因的多态性和HAPC的易感性相关尚不十分清楚。本研究为了验证EDNRA基因的多态性可能和藏族HAPC易感性有关,检测了青海省玉树地区(海拔3 500 m以上)63个藏族HPAC患者和131个健康藏族EDNRA基因的5个SNP位点(rs10003447, rs1801708, rs2048894, rs5335 and rs6841581)。

对象与方法
一、对象

收集中国青海省西南部玉树地区(平均海拔3 760米)63例HAPC藏族患者(HAPC组)年龄(45.5±10.1)岁,131例健康藏族对照组年龄(45.1±11.8)岁,均为世居康巴藏族。所有的HAPC患者是在2011年5月至2013年6月在玉树州人民医院被诊断为HAPC。纳入标准是:红细胞过度增生(男,血红蛋白≥210 g/L;女,血红蛋白≥190 g/L)。随机选择年龄、性别、工作条件和HAPC组病例一致的在门诊常规体检的健康藏族作为对照组。迈德血液分析仪(BC-2300,深圳,中国)用来检测静脉血的血红蛋白(Hb)和红细胞压积(HCT),脉搏氧饱和度仪(Ohmeda 3700 Pulse Oximeter, Datex-Ohmeda, Boulder, Colorado,美国)。所有的研究对象都没有呼吸病史和心脏病史,比如慢性阻塞性肺疾病,肺部感染,心脏瓣膜病,先天性心脏病和高血压心脏病。该项研究获得青海大学医学院伦理委员会批准。

二、DNA提取和分型检测

采用Gentra Puregene全血试剂盒(Qiagen, Germany),按照标准步骤从受试者的静脉血中提取基因组DNA。用分光光度计定量,琼脂糖凝胶电泳质检,基因组DNA电泳条带通常不小于20 kb。质检合格的DNA将浓度调整到50 ng/μl,转移至384孔板,–20 ℃储存备用。采用Sequenom MassARRAY® SNP (博奥生物集团有限公司)分型检测方法,经过多重PCR技术、MassARRAY iPLEX单碱基延伸技术,和基质辅助激光解吸附电离飞行时间质谱分析质谱技术(matrix-assisted laser desorption/ionization-time of flight,MALDI-TOF)进行分型检测。将包含SNP位点区域的DNA模板通过PCR技术扩增,再使用特异的延伸引物与PCR产物进行单碱基延伸反应。由于多态性位点碱基不同,延伸产物不同的末端碱基将导致延伸后的产物分子量的差异,因此由SNP多态性引起的碱基差异通过分子量的差异而体现,通过基质辅助激光解吸附电离飞行时间质谱分析质谱技术,检测延伸产物分子量的大小,通过判断分子量的差异而进行SNP分型检测。使用Sequenom公司Genotyping Tools及MassARRAY Assay Design软件设计待测SNP位点的PCR扩增引物及单碱基延伸引物。

三、统计学分析

采用SPSS 17.0软件处理,χ2检验方法分析EDNRA基因的5个SNP位点的基因型和等位基因频率分布在HAPC组和对照组之间的差异,用比值比(OR),95%可信区间(95%CI)和P值表示,以P<0.05为差异有统计学意义,Hardy-Weinberg平衡(HWE)是在基因型频率的基础上用χ2检验方法分析出来的。

结果
1.一般表型资料结果:

HAPC患者和对照组的平均年龄,性别,动脉氧饱和度(SaO2)、血红蛋白(Hb)和血细胞比容(HCT)在表1中列出。HAPC的发病率在男性比女性高,符合已知的HAPC在男性中高发的倾向[12]。HAPC组的SaO2显著降低,Hb和HCT显著升高(P<0.05)。

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表1

HAPC 组和对照组的一般表型资料

表1

HAPC 组和对照组的一般表型资料

组别例数性别平均年龄(岁)SaO2 (%)Hb (g/L)HCT (%)
HAPC组3547.7±3.483.4±1.8a230±25a66.6±2.9a
 2842.8±3.685.1±1.4a201±17a59.9±3.8a
对照组7446.4±3.588.8±1.6162±3146.6±3.6
 5543.2±2.987.3±1.3158±2441.6±2.1

注:SaO2:动脉氧饱和度,Hb:血红蛋白,HCT:血细胞比容,与对照组比较,aP<0.05

2.基因型和等位基因的分布结果:

表3结果显示HAPC组和对照组EDNRA基因的5个SNP位点(rs10003447, rs1801708, rs2048894, rs5335 and rs6841581)的基因型和等位基因频率分布。HAPC组和对照组都符合Hardy-Weinberg平衡分布(表2)。我们比较了基因型、等位基因频率分布及比值比(OR)、95%可信区间(95%CI),发现这5个SNP位点的多态性在HAPC组和对照组之间差异无统计学意义(P>0.05,表3)。

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表2

HAPC 组和对照组Hardy-Weinberg(HWE)平衡分析

表2

HAPC 组和对照组Hardy-Weinberg(HWE)平衡分析

组别Prs10003447rs1801708rs2048894rs5335rs684158
HAPC组HWE0.2100.3530.2470.4520.522
对照组HWE0.2240.5130.2250.8440.182
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表3

EDNRA 基因的5个多态性位点在HAPC组和对照组基因型和等位基因的频率分布[例(%)]

表3

EDNRA 基因的5个多态性位点在HAPC组和对照组基因型和等位基因的频率分布[例(%)]

多态性位点基因型和等位基因HAPC组对照组OR(95% CI)χ2P
rs10003447CC36(60.0)86(66.7)   
 CT23(38.3)36(27.9)0.655(0.341~1.258)1.6250.202
 TT1(1.7)7(5.4)2.930(0.348~24.685)1.0670.302
 C95(79.2)208(80.6)   
 T25(20.8)50(19.4)0.913(0.533~1.564)0.1090.742
rs1801708AG26(42.6)65(50.4)   
 AA12(19.7)18(14.1)0.600(0.254~1.419)1.3680.242
 GC23(37.7)46(35.7)0.800(0.407~1.573)0.4190.518
 G72(59.0)157(60.9)   
 A50(41.0)101(39.1)0.926(0.597~1.437)0.1170.733
rs2048894CC36(61.0)86(66.7)   
 CT22(37.3)36(27.9)0.685(0.355~1.322)1.2770.258
 TT1(1.7)7(5.4)2.930(0.348~24.685)1.0670.302
 C94(79.7)208(80.6)   
 T24(20.3)50(19.4)0.942(0.546~1.623)0.0470.828
rs5335GG9(15.0)28(21.7)   
 CC19(31.7)38(29.5)0.643(0.253~1.631)0.8710.351
 CG32(53.3)63(48.8)0.633(0.267~1.500)1.0890.297
 G50(41.7)119(46.1)   
 C70(58.3)139(53.9)0.834(0.539~1.293)0.6580.417
rs6841581GG24(38.7)64(49.6)   
 AA7(11.3)7(5.4)0.375(0.119~1.182)2.9490.086
 AG31(50.0)58(45.0)0.702(0.370~1.331)1.1800.277
 G79(63.7)186(72.1)   
 A45(36.3)72(27.9)0.680(0.431~1.072)2.7700.096
讨论

内皮素受体A(EDNRA)能够和内源性血管收缩肽内皮素-1结合,从而发挥调节血管舒缩、维持体液平衡等方面的重要作用。ENDNA基因被认为是血管性疾病的易感基因之一[10,13]ENDNA基因也被筛选出和藏族对高原环境适应相关[9]。HAPC的藏族红细胞显著升高的症状是他们不能适应高原环境的一种表现,本研究假设HAPC藏族和健康藏族的高原适应相关基因EDNRA可能存在不同的基因型。所以我们在青海玉树地区海拔(3 500米以上)地区采集了明确临床诊断的藏族HAPC病例和同海拔健康藏族对照的外周血白细胞DNA,检测了两组研究对象的DNA序列中缺氧相关基因EDNRA的5个SNP位点的多态性,通过统计学分析(比较基因型和等位基因分布的两组差异)发现,这5个SNP位点的多态性在HAPC组和对照组之间没有显著性差异(P>0.05)。提示我们:EDNRA基因虽然和藏族多高原环境的适应有关,但是并不能保护他们不罹患HAPC,其多态性和藏族HAPC易感性无关。在北美的高原世居民族安第斯人和藏族生活环境相似,也是高原世居民族,已证实EDNRA基因的SNP位点和安第斯人的新生儿的体重、氧传递显著相关[14]。但是安第斯人和藏族对高原环境的适应模式有所不同,所以安第斯人群EDNRA基因的研究结果并不能给我们提供很多提示。

我们需要根据国际和国内的研究结果来调整研究藏族HAPC遗传机制的研究策略,重点关注高原缺氧导致的相关基因表达调控变化[15],检测更多的藏族适应高原相关基因如EPAS1、EGLN1等的遗传多态性,并将研究热点聚集到表观遗传学、mcroRNA等方面,从而更加系统地研究藏族HAPC的发病机制。

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