论著
T细胞免疫球蛋白黏液素3基因在急性白血病中的表达及其临床意义
白血病·淋巴瘤, 2016,25(5) : 259-263. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1009-9921.2016.05.002
摘要
目的

探讨T细胞免疫球蛋白黏液素3 (Tim-3)基因在急性白血病患者和白血病细胞株中的表达情况,并分析其临床意义。

方法

收集初治急性白血病患者65例和8株白血病细胞株,同时收集15名健康供体的骨髓作为健康对照,分离单个核细胞,提取DNA,应用实时荧光定量聚合酶链反应检测单个核细胞上Tim-3 mRNA相对表达量,比较不同类型白血病Tim-3 mRNA表达差异,分析急性白血病患者Tim-3 mRNA表达与临床特征的关系。

结果

M3细胞株NB4及非M3细胞株Kasumi-1、HL60、SHI-1、THP-1、Jurkat、CCRF-CEM、Mutz-1 Tim-3 mRNA相对表达量分别为(4.51±0.62)×10-5、(79.22± 2.91)×10-5、(41.14±3.01)×10-5、(27.70±3.50)×10-5、(60.47±4.97)×10-5、(10.44±1.77)×10-5、(42.80± 2.95)×10-5、(11.68±1.96)×10-5。非M3细胞株Tim-3 mRNA表达水平均高于NB4细胞株(均P<0.05)。非M3型急性髓系白血病(AML)患者Tim-3 mRNA相对表达量为(27.64±13.35)×10-4,AML-M3患者为(4.81±2.30)×10-4,急性淋巴细胞白血病(ALL)为(32.09±23.42)×10-4。其在非M3型AML和ALL中的表达水平高于健康对照[(12.02±4.22)×10-4],差异有统计学意义(P<0.05),非M3型AML和ALL患者的Tim-3 mRNA表达水平差异无统计学意义(P>0.05)。在非M3型AML中,根据法、美、英协作组(FAB)分型,Tim-3 mRNA在AML-M4中的表达水平高于其他类型AML (P<0.05)。不同性别、年龄、骨髓原始细胞数、初诊白细胞数的急性白血病患者间Tim-3 mRNA表达水平差异均无统计学意义(均P>0.05)。

结论

Tim-3 mRNA高表达于非M3型的急性白血病患者和细胞株,其表达水平与初治急性白血病患者的性别、年龄和原始细胞数无关。

引用本文: 徐良静, 徐金格, 李晓莉, 等.  T细胞免疫球蛋白黏液素3基因在急性白血病中的表达及其临床意义 [J] . 白血病·淋巴瘤, 2016, 25(5) : 259-263. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1009-9921.2016.05.002.
参考文献导出:   Endnote    NoteExpress    RefWorks    NoteFirst    医学文献王
扫  描  看  全  文

正文
作者信息
基金 0  关键词  0
English Abstract
评论
阅读 0  评论  0
相关资源
引用 | 论文 | 视频

版权归中华医学会所有。

未经授权,不得转载、摘编本刊文章,不得使用本刊的版式设计。

除非特别声明,本刊刊出的所有文章不代表中华医学会和本刊编委会的观点。

急性白血病是一类高度异质性血液系统恶性肿瘤,近几年发病率呈逐年上升趋势,其病因和发病机制复杂,是多因素共同作用的结果。T细胞免疫球蛋白黏液素3 (Tim-3)是近年来备受关注的一个重要负性共刺激分子,是Tim基因家族成员之一,该基因定位于人类染色体5q33.2,编码Ⅰ型膜蛋白[1]。Kikushige等[2]发现大多数急性髓系白血病(AML)患者(除急性早幼粒细胞白血病,即除M3型)的白血病干细胞(LSC)表面高表达Tim-3,而在正常的造血干细胞表面不表达,因此Tim-3有可能成为潜在的清除AML LSC的治疗靶点。近期研究显示,Tim-3可以异位表达于肿瘤细胞,如非小细胞肺癌、子宫颈癌等,其表达水平上调与实体瘤的发生、发展相关[3,4]。Tim-3基因在成年人急性白血病中的表达特点及临床意义目前尚鲜见报道。本研究通过实时荧光定量聚合酶链反应(RT-qPCR)检测Tim-3基因在急性白血病细胞株及成年人急性白血病中的表达,并探讨其临床意义。

1 资料与方法
1.1 研究对象

收集2015年1月至8月于我院血液内科住院及门诊就诊的初治急性白血病患者65例。包括AML 50例,急性淋巴细胞白血病(ALL)15例;男性30例,女性35例,中位年龄42岁(18~ 72岁)。50例初治AML中,M0 1例,M1 8例,M2 13例,M3 10例,M4 12例,M5 5例,M6 1例。15例ALL中,T-ALL 3例,B-ALL 12例。以15名健康骨髓移植供者或体检者作为健康对照,包括男性6名,女性9名,中位年龄36岁(21~ 46岁)。上述标本采集均经患者家属知情同意后实施。诊断采用形态学、免疫学、细胞遗传学和分子生物学(MICM)诊断模式,形态学根据法、美、英协作组(FAB)分型法细则进行分型;免疫分型参考我国诊断标准和欧洲白血病免疫学分型协作组(EGIL)抗原积分系统[5]

1.2 实验方法
1.2.1 细胞培养

髓系白血病细胞株包括Kasumi-1、HL60、NB4、SHI-1、THP-1;淋系白血病细胞株包括Jurkat、CCRF-CEM、SIL-ALL、Mutz-1。所有白血病细胞株均由江苏省血液学研究所保存。除SHI-1细胞接种于含10%灭活小牛血清的IMDM培养液中外,其余细胞株均接种于含10%灭活小牛血清的RPMI 1640培养液中,于37 ℃、5% CO2、饱和湿度下培养,每2~ 3 d换液,取对数生长期的细胞进行实验。

1.2.2 RNA提取及cDNA合成

取骨髓标本,采用Ficoll密度梯度法分离骨髓单个核细胞,按照TRIzol(美国Invitrogen公司)法提取总RNA,经1.5%琼脂糖凝胶电泳确定为完整RNA,用紫外分光光度仪测定其吸光度(A260/A280比值均大于1.8,计算RNA含量。用六随机引物100 ng、M-MLV酶(美国Promega公司)200 U反转录成cDNA。

1.2.3 RT-qPCR检测Tim-3基因表达

利用SYBR GreenⅠ染料在ABI荧光定量PCR仪上检测Tim-3基因的表达。Tim-3上游引物:5'-CTG CTGCTACTACTTACAAGGTC-3' ;下游引物:5'-GCAGG GCAGATAGGCATTCT-3'。内参β-actin上游引物:5'-ACTGGGACGACATGGAGAAA-3' ;下游引物:5'-TAGC ACAGCCTGGATAGCAA-3'。反应体系:cDNA 1.5 μl、上下游引物各0.5 μl、2× SYBR mix 10 μl,加双蒸水至20 μl。PCR采用两步法进行,反应条件:95 ℃,10 min预变性;95 ℃ 15 s, 60 ℃退火延伸1 min,共40个循环。反应完毕后,将扩增的每份PCR产物进行熔解曲线分析,判断是否为特异性产物。每个样本的Tim-3和β-actin mRNA的检测均做3个平行管以保证结果的准确性,取平均值。目的基因相对表达水平以2-△Ct计算。

△Ct=Ct目的基因-Ct内参基因

1.3 统计学方法

采用SPSS 20.0软件对数据进行统计学分析,计量资料以±s表示,方差齐性检验采用Levene检验,两组独立样本之间的比较采用双尾t检验,多重独立样本之间的比较采用方差分析法(one-way ANOVA)。P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果
2.1 Tim-3基因PCR产物的特异性分析

熔解曲线显示,Tim-3和β-actin的PCR产物均呈较锐的单峰,熔解温度分别为79.79 ℃和88.14 ℃,熔解温度均一。熔解曲线中没有其他杂峰,提示扩增产物具有特异性,无引物二聚体及非特异性产物。随机抽取标本的RT-qPCR产物进行2%琼脂糖凝胶电泳,结果显示均呈单一条带(图1),目的基因Tim-3与内参基因β-actin的PCR产物分别位于75 bp和188 bp,无其他杂带,进一步证明了反应的特异性。

点击查看大图
图1
实时荧光定量聚合酶链反应检测急性白血病患者T细胞免疫球蛋白黏液素3 (Tim-3)基因表达
点击查看大图

M: marker; 1~ 4:急性白血病患者;5、6:健康对照

图1
实时荧光定量聚合酶链反应检测急性白血病患者T细胞免疫球蛋白黏液素3 (Tim-3)基因表达
2.2 Tim-3基因在急性白血病细胞株中的表达

NB4、Kasumi-1、HL60、SHI-1、THP-1、Jurkat、CCRF-CEM、Mutz-1细胞株Tim-3 mRNA相对表达量分别为(4.51±0.62)×10-5、(79.22±4.91)× 10-5、(41.14 ± 3.01)× 10-5、(27.70 ± 3.50)× 10-5、(60.47 ± 4.97)× 10-5、(10.44 ± 1.77)× 10-5、(42.80 ± 2.95)× 10-5、(11.68 ± 1.96)× 10-5。表达最高的为Kasumi-1细胞,表达最低的为NB4细胞。非M3细胞株(Kasumi-1、HL60、SHI-1、THP-1、Jurkat、CCRF-CEM、Mutz-1)Tim-3 mRNA表达水平均高于M3 (NB4)细胞株(t值分别为26.15、20.56、11.30、19.35、5.59、22.00、6.04,均P<0.05)(图2)。

点击查看大图
图2
各急性白血病细胞株T细胞免疫球蛋白黏液素3 (Tim-3)基因表达情况
点击查看大图

1 :NB4; 2:Kasumi-1; 3: HL60; 4: SHI-1;5:THP-1 ;6:Jurkat; 7: CCRF-CEM; 8: Mutz-1

图2
各急性白血病细胞株T细胞免疫球蛋白黏液素3 (Tim-3)基因表达情况
2.3 Tim-3基因在健康对照和急性白血病患者骨髓中的表达

15名健康对照者Tim-3 mRNA相对表达量为(12.02±4.22)×10-4。在除AML-M3外的55例急性白血病患者中,Tim-3 mRNA相对表达量为(28.85 ± 15.36)×10-4。非M3型AML、ALL、AML-M3患者Tim-3相对表达量分别为(27.64 ± 13.35)× 10-4、(32.09 ± 23.42)×10-4、(4.81±2.30)×10-4。非M3型AML和ALL患者Tim-3 mRNA表达水平均高于健康对照(t= 4.43,P<0.05;t=3.27,P<0.05),AML-M3患者低于健康对照(t=4.92,P<0.05),但非M3型AML和ALL相比,Tim-3 mRNA表达水平差异无统计学意义(t= 0.89 ,P>0.05)。初治AML中,M0、M1、M2、M4、M5、M6的Tim-3 mRNA相对表达量分别为10.11 × 10-4、(16.74±10.52)×10-4、(27.85±13.94)×10-4、(40.01± 8.93)× 10-4、(31.13 ± 15.78)× 10-4、13.72 × 10-4。其中,M4较除M3型外的其他分型AML Tim-3 mRNA表达水平[(22.37±14.89)×10-4]高,差异有统计学意义(t=3.78,P=0.01)。ALL患者中,T-ALL的Tim-3 mRNA相对表达量为(34.92±20.55)×10-4,B-ALL为(31.35 ± 25.34)× 10-4,两者差异无统计学意义(t= 0.25,P>0.05)。

2.4 Tim-3基因表达与初治急性白血病患者临床特征的关系

初治非M3型急性白血病患者Tim-3 mRNA表达水平在不同性别、年龄、骨髓原始细胞比例、初治白细胞数亚组间差异均无统计学意义(均P>0.05)(表1)。

点击查看表格
表1

T细胞免疫球蛋白黏液素3 (Tim-3)基因表达与初治非M3型急性白血病患者临床特征的关系(×10-4

表1

T细胞免疫球蛋白黏液素3 (Tim-3)基因表达与初治非M3型急性白血病患者临床特征的关系(×10-4

临床特征例数Tim-3 mRNA相对表达量统计量值P
性别    
 2428 04±13.75t= 0.240 61
 3129 14±19.42
年龄(岁)    
 <604127 95±18.63t= 0.64042
 ≥601431 48±15.17
白细胞计数(×109/L)    
 <1004628 23±15.70t= 0.610 53
 ≥100931 76±17.82
原始细胞比例(%)    
 20~491025 75±14.53  
 50~792530 37±16.69F= 0.120 89
 ≥802032 16±18.85  
3 讨论

急性白血病是由于造血干、祖细胞在较早阶段发生增殖失控、凋亡受阻、分化障碍而引起的一组造血系统恶性肿瘤。AML是一组在形态学、细胞遗传学、免疫分型、分子生物学及临床特征上均存在显著差异的异质性疾病[6]。近年来随着化疗方案的改进及造血干细胞移植技术的发展,小于65岁AML患者完全缓解(CR)率可达70%~80 %,但缓解后复发率仍较高,国外学者认为是LSC对化疗药物耐药所致[7,8]

Tim-3在2002年第一次被发现,定位于染色体5q33.2,编码Ⅰ型膜蛋白,是T细胞免疫球蛋白黏蛋白分子家族的一员,主要表达于Th1细胞、树突状细胞、单核细胞和巨噬细胞中,在肿瘤免疫监视逃逸中扮演了重要角色[9,10]。其配体为半乳凝素9 (Gal-9),这是一种广泛表达的可溶性分子,受到干扰素γ (IFN-γ)的调节。当Tim-3与Gal-9相互作用后,促进Th1细胞凋亡,CD8+ T细胞功能缺失,伴随IFN-γ生成减少,从而间接抑制免疫反应[11,12]。近期研究显示,除免疫细胞外,Tim-3可以异位表达于非造血细胞的肿瘤细胞,特别是原发性癌细胞,包括非小细胞肺癌、子宫颈癌、脂肪肉瘤、黑色素瘤等[3,4,13,14]。Tim-3在黑色素瘤细胞中表达可使肿瘤细胞黏附力降低,促进肿瘤进展[14]。Tim-3在胃癌细胞中的高表达与患者预后呈负相关[15]。国外学者发现,Tim-3高表达于除M3的大多数亚型AML干细胞中,更重要的是,Tim-3在正常造血干细胞中几乎不表达,且Tim-3阳性LSC的前凋亡基因BAX和SIVA明显下调,提示Tim-3阳性LSC极可能是功能性LSC[2,16]

本研究发现Tim-3 mRNA在Kasumi-1细胞株中表达最高,在NB4细胞株中表达最低。且Tim-3基因在Kasumi-1、HL60、SHI-1、Jurkat等非M3型细胞株中表达水平均高于M3型细胞株(NB4)。我们还发现Tim-3基因在非M3型急性白血病患者中表达,但非M3型AML和ALL组间差异无统计学意义。Tim-3 mRNA在M4中的表达较其他AML高。由于本研究样本量较少,没有发现急性白血病患者Tim-3 mRNA表达水平在不同性别、年龄、骨髓原始细胞比例、初诊白细胞数亚组间有差异(均P>0.05)。由于随访时间偏短,本研究没有对患者的生存和复发情况进行统计分析,我们将继续扩大样本量,延长随访期,进一步分析Tim-3基因表达与预后的关系。

综上所述,本研究发现Tim-3基因表达于非M3型急性白血病中,其异常表达可能是成年人急性白血病发生、发展的一个重要因素。但考虑到白血病是一类高度异质性疾病,Tim-3基因在不同类型白血病患者中的差异、作用机制及能否成为一个新的白血病治疗靶点,尚需进一步深入研究。

利益冲突
利益冲突

参考文献
[1]
FreemanGJ, CasasnovasJM, UmetsuDTet al. TIM genes:a family of cell surface phosphatidylserine receptors that regulate innate and adaptive immunity [J]. Immunol Rev2010235 (1):172-189. DOI: 10.1111/j.0105-2896.2010.00903.x.
[2]
KikushigeY, ShimaT, TakayanagiSet al. TIM-3 is a promising target to selectively kill acute myeloid leukemia stem cells[J]. Cell Stem Cell20107(6):708-717. DOI: 10.1016/j.stem.2010.11.014.
[3]
ZhuangX, ZhangX, XiaXet al. Ectopic expression of TIM-3 in lung cancers:a potential independent prognostic factor for patients with NSCLC [J]. Am J Clin Pathol2012137(6):978-985. DOI: 10.1309/AJCP9Q6OVLVSHTMY.
[4]
CaoY, ZhouX, HuangXet al. Tim-3 expression in cervical cancer promotes tumor metastasis[J]. PLoS One20138(1):e53834. DOI: 10.1371/journal.pone.0053834。
[5]
BeneMC, CastoldiG, KnappWet al. Proposals for the immunological classification of acute leukemias. European Group for the Immunological Characterization of Leukemias (EGIL)[J]. Leukemia19959(10):1783-1786.
[6]
徐英辉崔久嵬李薇.急性髓系白血病细胞遗传学特征与诱导治疗反应的相关性分析[J].白血病·淋巴瘤2013, 22(4):206-208. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1009-9921.2013.04.004.
XuYH, CuiJW, LiWet al. Clinical analysis of cytogenetic features in acute myeloid leukemia and its relationship with early responses after induction therapy [J]. Journal of Leukemia & Lymphoma201322 (4):206-208. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1009-9921.2013.04.004.
[7]
MiyawakiS. Clinical studies of acute myeloid leukemia in the Japan Adult Leukemia Study Group [J]. Int J Hematol201296(2):171-177. DOI: 10.1007/s12185-012-1150-6.
[8]
EsteyEH. Acute myeloid leukemia:2013 update on risk-stratification and management[J]. Am J Hematol201388(4):318-327. DOI: 10.1002/ajh.23404.
[9]
MonneyL, SabatosCA, GagliaJLet al. Th1-specific cell surface protein Tim-3 regulates macrophage activation and severity of an autoimmune disease[J]. Nature2002415 (6871):536-541. DOI: 10.1038/415536a.
[10]
MeyersJH, SabatosCA, ChakravartiSet al. The TIM gene family regulates autoimmune and allergic diseases[J]. Trends Mol Med200511 (8):362-369. DOI: 10.1016/j.molmed.2005.06.008.
[11]
ZhuC, AndersonAC, SchubartA, et al. The Tim-3 ligand galectin-9 negatively regulates T helper type 1 immunity[J]. Nat Immunol20056 (12):1245-1252. DOI: 10.1038/ni1271.
[12]
FolgieroV, CifaldiL, LiPGet al. TIM-3/Gal-9 interaction induces IFNγ-dependent IDO1 expression in acute myeloid leukemia blast cells[J]. J Hematol Oncol20158:36. DOI: 10.1186/s13045-015-0134-4.
[13]
LiH, ZhouX, RanQet al. Parapharyngeal liposarcoma:a case report[J]. Diagn Pathol20138:42. DOI: 10.1186/1746-1596-8-42.
[14]
WienerZ, KohalmiB, PoczaPet al. TIM-3 is expressed in melanoma cells and is upregulated in TGF-beta stimulated mast cells[J]. J Invest Dermatol2007127(4):906-914. DOI: 10.1038/sj.jid.5700616.
[15]
ChengG, LiM, WuJet al. Expression of Tim-3 in gastric cancer tissue and its relationship with prognosis [J]. Int J Clin Exp Pathol20158(8):9452-9457.
[16]
KikushigeY, MiyamotoT. TIM-3 as a novel therapeutic target for eradicating acute myelogenous leukemia stem cells[J]. Int J Hematol201398(6):627-633. DOI: 10.1007/s12185-013-1433-6.
 
 
展开/关闭提纲
查看图表详情
回到顶部
放大字体
缩小字体
标签
关键词