论著
急性髓系白血病患者CD34、CD123、CD38的表达及其临床意义
白血病·淋巴瘤, 2018,27(10) : 604-608. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1009-9921.2018.10.007
摘要
目的

探讨急性髓系白血病(AML)患者CD34、CD123、CD38的表达及其临床意义。

方法

收集2014年2月至2015年7月中南大学湘雅医院164例AML患者,用流式细胞术检测患者细胞免疫分型。根据CD34、CD38、CD123的表达情况,将患者分成阳性组与阴性组,对两组的临床资料及骨髓象进行比较分析。

结果

164例AML患者中,CD34阳性102例,阳性率62.2%;CD123阳性126例,阳性率76.8%;CD38阳性144例,阳性率88.3%。各项阳性组与阴性组患者年龄、性别比较差异均无统计学意义(P>0.05);两组患者骨髓中幼稚细胞比例、白细胞计数及血红蛋白水平比较差异均有统计学意义(均P<0.05)。CD34、CD38、CD123表达率与微小残留病发生率、疾病完全缓解率有相关性(均P<0.05)。

结论

CD34、CD123、CD38是AML检测的有效标志物,其表达可作为细胞成熟度的判断标志,有利于AML患者病情及预后的判定。

引用本文: 赵丹丹, 徐慧, 凌晗, 等.  急性髓系白血病患者CD34、CD123、CD38的表达及其临床意义 [J] . 白血病·淋巴瘤, 2018, 27(10) : 604-608. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1009-9921.2018.10.007.
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急性髓系白血病(AML)是一种常见的造血系统恶性肿瘤。采用流式细胞术应用单克隆抗体,能够鉴定细胞表面或胞质中免疫标志,分析细胞的分化阶段,从而指导临床分型、治疗方案选择及预后判断。CD34为造血干/祖细胞抗原标志物,在正常骨髓白细胞中表达率为2%~4%,而在AML细胞上则有较高的表达率[1]。有研究报道,CD123在急性白血病(AL)细胞中普遍表达,而正常骨髓干细胞很少表达[2]。亦有研究报道,CD123、CD38与急性淋巴细胞白血病预后有着密切联系[3,4],但CD123、CD38在AML中诊断与恶性程度评估的作用报道很少。我们对CD34、CD123、CD38在AML中的表达进行了探讨,现报道如下。

1 资料与方法
1.1 一般资料

中南大学湘雅医院2014年2月至2015年7月收治的AML患者164例,男性81例,女性82例,年龄1~84岁,平均年龄42.56岁。按法、美、英(FBA)标准进行分型,其中M0 17例,M1 41例,M2 48例,M3 14例,M4、M5 34例,M6 10例。所有患者均排除有严重心、肺、脑、肝、肾等器官功能障碍及其他血液系统疾病。AML诱导治疗方案采用HADH、LA、DA等方案。疗效判断根据1987年苏州全国白血病化疗会议制订的标准:(1)临床无贫血、出血、感染及白血病细胞浸润表现;(2)外周血血红蛋白水平>90 g/L,白细胞计数正常或减低,白细胞分类无幼稚细胞,血小板计数>100×109/L;(3)骨髓象原始细胞加早幼阶段细胞(或幼稚细胞)<0.05,红细胞系统及巨核细胞系统正常。

1.2 主要试剂及仪器

采用FACS-calibur流式细胞仪(美国BD公司)进行检测。异硫氰酸荧光素(FITC)标志的单抗为:CD3、CD7、CD14、CD19、CD20、CD22、HLA-DR、cMPO、CD38;藻红蛋白(PE)标志的单抗为:CD2、CD5、CD10、CD13、CD33、CD34、CD117、CD96、CD123;多甲藻叶绿素蛋白(Pre-CP)标志的单抗为:CD45、CD34。所有抗体均购自美国BD公司。

1.3 方法
1.3.1 细胞形态学分型诊断

患者骨髓涂片采用瑞特姬萨姆染色,于油镜下观察计数200个细胞,并进行过氧化物酶染色、过碘酸雪夫反应及醋酸萘酚酯酶染色和氟化钠抑制试验等细胞化学染色。

1.3.2 白血病细胞免疫表型分析

乙二胺四乙酸钠(EDTA-Na2)抗凝管采集患者骨髓1~2 ml,采集后6 h内处理,待测样品白细胞计数控制在(1.0~2.0)×105/L,取50 μl备用细胞与20 μl单抗混匀后,室温避光培养20 min,再向各试管中加入溶血素1 ml,振荡混匀后置室温避光培养10 min,400×g离心5 min,去上清,PBS洗涤2次,加入500 μl 1%多聚甲醛PBS,于4 ℃保存,24 h内上机检测。阳性判断标准:骨髓原始细胞≥0.20,CD38、HLA-DR均≥20%或CD3、cMPO≥10%,其他抗体≥20%。根据CD34、CD123、CD38的表达情况,将164例AML患者分成阳性组与阴性组,并对两组的临床资料及骨髓细胞进行比较分析。

1.4 统计学方法

采用SPSS 18.0统计软件进行统计学分析。计量资料符合正态分布,采用±s表示,两组间比较采用t检验;计数资料两组间比较采用χ2检验,以P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果
2.1 AML患者CD34、CD38、CD123表达率与临床特征的关系

164例AML患者中,CD34阳性106例,阳性率64.6%;CD123阳性125例,阳性率76.2%;CD38阳性131例,阳性率79.9%。CD34、CD123、CD38阳性组与阴性组患者年龄及性别差异均无统计学意义(均P>0.05);两组患者骨髓幼稚细胞比例、白细胞计数及血红蛋白水平差异均有统计学意义(均P<0.05)(表1);两组患者CD34与CD123表达有相关性(P<0.05)(表2),二者与CD38表达均无相关性(均P>0.05)。

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表1

急性髓系白血病患者CD123、CD34、CD38表达与临床资料关系

表1

急性髓系白血病患者CD123、CD34、CD38表达与临床资料关系

组别例数年龄(岁,±stP性别(例)χ2P骨髓幼稚细胞比例(±stP
CD123           
 阳性组12542.37±19.161.2280.82061644.1210.1270.537±0.3003.8050.000
 阴性组3943.18±19.5021180.330±0.179
CD34           
 阳性组10642.49±19.720.0380.97056506.3450.3860.604±0.3063.6620.000
 阴性组5842.37±18.3924340.437±0.287
CD38           
 阳性组13143.26±18.980.3020.76771606.3450.3860.628±0.3242.2240.028
 阴性组3341.82±19.9214190.462±0.304
组别例数白细胞计数(×109/L,±stP血红蛋白(g/L,±stP
CD123       
 阳性组12556.78±11.752.4230.01768.27±15.65- 5.4460.000
 阴性组3951.54±11.9184.62±18.50
CD34       
 阳性组10658.10±11.933.8820.00063.56±12.70- 11.1050.000
 阴性组5850.83±10.5987.88±14.62
CD38       
 阳性组13156.56±11.722.2160.02867.82±15.52- 7.1360.000
 阴性组3351.45±12.2189.39±15.55
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表2

急性髓系白血病患者CD34与CD123表达的关系(例)

表2

急性髓系白血病患者CD34与CD123表达的关系(例)

CD34例数CD123
阳性阴性
阳性1069313
阴性583226
χ2 21.931
P 0.000
2.2 AML患者CD34、CD38、CD123表达率与微小残留病(MRD)的关系

对经诱导化疗后获CR的79例AML患者采用流式细胞术进行MRD细胞检测(图1),分析MRD发生与CD34、CD38、CD123表达率的关系。结果发现,MRD发生与CD34、CD38、CD123表达率均有相关性(均P<0.05)。CD34、CD123双阳性患者MRD发生率较高(表3)。

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表3

急性髓系白血病完全缓解患者微小残留病(MDR)发生与CD34、CD38、CD123表达的关系(例)

表3

急性髓系白血病完全缓解患者微小残留病(MDR)发生与CD34、CD38、CD123表达的关系(例)

组别例数MDRχ2P
阳性阴性
CD34     
 阳性组261885.3630.021
 阴性组532231
CD38     
 阳性组47311610.9010.002
 阴性组32923
CD123     
 阳性组4630169.3710.001
 阴性组331023
CD34、CD123     
 双阳性组291455.3180.021
 非双阳性组602634
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图1
急性髓系白血病完全缓解患者微小残留病(MDR)流式细胞术检测结果 1A:MDR阴性结果;1B:MDR阳性结果
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注:R3为残留白血病细胞

图1
急性髓系白血病完全缓解患者微小残留病(MDR)流式细胞术检测结果 1A:MDR阴性结果;1B:MDR阳性结果
2.3 AML患者CD34、CD38、CD123表达率与CR的关系

分析白血病患者缓解率与CD34、CD38、CD123表达率的关系,结果发现,CR率与CD34、CD38、CD123表达率均有相关性(均P<0.05)。CD34、CD123双阳性患者CR率较低(表4)。

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表4

急性髓系白血病患者近期疗效与CD34、CD38、CD123表达率的关系(例)

表4

急性髓系白血病患者近期疗效与CD34、CD38、CD123表达率的关系(例)

组别例数近期疗效χ2P
完全缓解未完全缓解
CD34     
 阳性组106802667.1040.000
 阴性组58553
CD38     
 阳性组131795218.7340.000
 阴性组33627
CD123     
 阳性组125794627.2210.000
 阴性组39633
CD34 CD123     
 双阳性组93741966.2130.000
 非双阳性组711160
3 讨论

大量研究表明,白血病细胞起源于白血病干细胞(LSC),LSC具有与正常造血干细胞类似的自我更新和无限增殖能力,是白血病发生发展及耐药和复发的根本原因[5,6]。LSC主要起源于多能造血干细胞(HSC)和早期造血祖细胞。CD34抗原是连续表达于造血干/祖细胞的一种细胞分化抗原高度糖基化的跨膜蛋白[7],从干细胞开始直至造血前体细胞。目前已证实CD34是造血干祖细胞分选的重要标志[8]。CD34常为AML预后不良因素[9],尤其与CD7或多耐药基因(MDR1)共表达时,常提示预后不良。CD34在AML中阳性表达国内报道不一,多在23.0%~61.0%,本研究中CD34阳性表达率为64.6%,CD34阳性组幼稚细胞比例明显高于阴性组,与文献报道基本一致。表明CD34表达与AML有相关性,能够为AML恶性程度判断提供一定的参考。

CD123又称白细胞介素3受体α(IL-3Rα),是高亲和性IL-3受体的重要组成部分,在LSC中高表达而正常HSC中几乎检测不到,可作为LSC的特异性标志。CD123与IL-3相互作用可促进造血干/祖细胞的生存、增殖和分化[10,11,12]。国外学者报道发现,IL-3R氨基酸序列的突变可诱发一系列信号转导的变化,从而引发肺脏腺癌及白血病的发生[13,14]。而国内也有研究表明,AL高危患者CD123表达率高于低危患者,提示CD123的表达与预后相关,CD123表达高提示预后不良。这可能与白血病干细胞含量高或FLT3突变有关导致患者对化疗药物不敏感成为患者复发和耐药的根源。此外,有研究者将纯化的CD34+ CD123+白血病细胞移植给有免疫缺陷的NOD/SCID小鼠,结果表明该细胞可在小鼠体内建立和保持白血病细胞群。本研究发现AML患者CD123表达率为76.2%,CD34阳性患者CD123表达率为87.7%,与以往报道一致,提示CD123是AML检测的有效标志。本研究还发现,CD34阳性患者中CD123阳性表达率明显增高,与已有报道在初治AML患者中CD34+细胞表面CD123高表达的结果一致,两者的内在联系及分子机制有待进一步研究。

CD38为单链Ⅱ型跨膜糖蛋白,广泛表达于多种正常造血细胞表面,参与细胞生长和分化的调节。CD38的表达可影响白血病细胞的增殖、分化和疾病的转归。CD38作为慢性淋巴细胞白血病患者的独立风险因素已逐渐被肯定[15,16],一些研究认为CD38表达对AML患者临床化疗疗效判断无明显指导意义。但本研究发现AML患者CD38表达率高达79.9%,且CD38阳性组幼稚细胞比例明显高于阴性组。因此,CD38与AML发病有一定的相关性,同时也可以考虑作为评估细胞成熟度的指标之一。

在初发AML患者中,外周血白细胞数量增高、贫血、血小板数降低及原始幼稚细胞比例高等常提示预后不良。本研究发现CD34、CD38、CD123与原始幼稚细胞比例、外周血白细胞及血红蛋白量有一定联系。随着原始幼稚细胞比例、患者外周血白细胞数增高及血红蛋白的降低,CD34、CD38、CD123表达率明显增高,CD34、CD38、CD123表达与AML预后有一定联系。

MDR是白血病复发的关键因素,残留白血病克隆性再生的特点类似于实体瘤的微小转移,先是原位增殖形成白血病细胞灶,当白血病细胞增殖到一定时间开始向外迁移,导致白血病复发。本研究白血病患者中,诱导缓解治疗后CD34、CD38、CD123阳性患者中CR率明显较低,而CD34、CD123双阳性患者CR率更低。CD34、CD38、CD123阳性组MDR阳性率明显增高,而CD34、CD123双阳性患者MDR阳性率更高。提示CD34、CD123的表达与白血病预后及复发有关。

总之,CD34、CD38、CD123能够作为AML的诊断指标,且与AML预后有一定联系,能够作为预后判定指标之一,并为白血病治疗方案的确定提供一定理论依据。进一步探究CD34、CD123、CD38与AML的关系,有望为AML的预后评估提供新的辅助指标。

利益冲突
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