论著
阿帕替尼对FLT3-ITD突变急性髓系白血病MV4-11和MOLM-13细胞增殖与凋亡的影响及其机制
白血病·淋巴瘤, 2020,29(9) : 530-534. DOI: 10.3760/cma.j.cn115356-20200515-00127
摘要
目的

研究阿帕替尼对FLT3-ITD突变的急性髓系白血病(AML)细胞增殖及凋亡的影响,并探讨相关机制。

方法

取对数生长期FLT3-ITD突变的AML细胞株MV4-11和MOLM-13,分别采用不同浓度阿帕替尼处理48 h,采用CCK-8法检测细胞增殖情况,流式细胞术检测细胞凋亡情况,JC-1法检测线粒体膜电位的变化,蛋白质印迹法分析血管内皮生长因子受体2(VEGFR2)通路相关蛋白表达的变化。

结果

阿帕替尼对MV4-11和MOLM-13细胞株均具有增殖抑制作用,48 h半数抑制浓度(IC50)分别为(2.23±0.42)μmol/L、(4.08±2.62)μmol/L。流式细胞术检测细胞凋亡结果显示,10、20、30、40 μmol/L阿帕替尼对MV4-11和MOLM-13细胞具有诱导凋亡作用,且作用呈浓度依赖性,48 h细胞凋亡率分别为(81.95±1.15)%、(88.80±0.23)%、(97.46±0.49)%、(99.29±0.05)%及(47.30±0.87)%、(67.00±3.71)%、(82.60±2.89)%、(98.06±5.34)%,差异均有统计学意义(F=6 915.0,P<0.01;F=5 385.0,P<0.01)。JC-1法检测线粒体膜电位结果显示,10、20、30、40 μmol/L阿帕替尼作用MV4-11和MOLM-13细胞24 h后,JC-1多聚体/单体平均荧光强度(MFI)比值分别为0.45±0.06、0.19±0.07、0.12±0.03、0.09±0.01及0.84±0.05、0.66±0.13、0.35±0.11、0.27±0.02,与对照组(0.67±0.15和0.97±0.42)相比,差异均具有统计学意义(F=372.3,P<0.05;F=276.4,P<0.05)。蛋白质印迹法检测不同浓度阿帕替尼(2.5、5.0、10.0 μmol/L)作用MV4-11细胞株24 h结果发现,阿帕替尼可下调VEGFR2、Src和STAT3磷酸化水平,且作用呈浓度依赖性。

结论

阿帕替尼对FLT3-ITD突变AML细胞具有抑制增殖和诱导凋亡的作用,其机制可能与下调VEGFR2及其下游Src和STAT3磷酸化水平相关。

引用本文: 查洁, 赵海军, 邓漫漫, 等.  阿帕替尼对FLT3-ITD突变急性髓系白血病MV4-11和MOLM-13细胞增殖与凋亡的影响及其机制 [J] . 白血病·淋巴瘤, 2020, 29(9) : 530-534. DOI: 10.3760/cma.j.cn115356-20200515-00127.
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FLT3-ITD突变是正常核型急性髓系白血病(AML)患者最常见的突变类型,约占初诊AML患者的30%。FLT3-ITD突变AML患者预后较差,接受造血干细胞移植者的中位总生存(OS)时间仅17个月,而未接受移植者的中位OS时间仅9个月[1]。由于传统治疗效果不佳,靶向抑制FLT3抑制剂成为治疗FLT3-ITD突变AML的热点,目前已有多种FLT3抑制剂进入临床应用阶段[2]。然而目前国内上市药物只有索拉非尼(sorafenib),临床应用发现其疗效并不满意,不良反应及继发耐药的问题相对严重[3]。我国自主研发的新型小分子酪氨酸激酶抑制剂阿帕替尼(apatinib)是一种选择性靶向抑制血管内皮生长因子受体2(VEGFR2)的抗血管生成药物,已广泛应用于实体瘤的治疗[4,5,6,7]。但是关于阿帕替尼在血液肿瘤中的研究目前相关报道尚少,因此本研究探讨阿帕替尼对FLT3-ITD突变AML细胞的作用及其分子机制,为FLT3-ITD突变AML患者提供治疗选择。

1 材料与方法
1.1 药物与试剂

甲磺酸阿帕替尼(YN968D1)为江苏恒瑞医药股份有限公司产品。CCK-8试剂、JC-1试剂盒均购自上海碧云天生物技术有限公司。Annexin V-FITC/PI细胞凋亡检测试剂盒购自美国eBioscience公司。BCA法蛋白浓度测定试剂盒购自美国Pierce公司。兔单克隆抗VEGFR2抗体、兔单克隆抗pVEGFR2抗体、兔单克隆抗Src抗体、兔单克隆抗pSrc抗体、兔单克隆抗STAT3抗体、兔多克隆抗pSTAT3抗体、辣根过氧化物酶(HRP)偶联抗兔二抗均购自美国Cell Signaling Technology公司。

1.2 细胞株及培养条件

FLT3-ITD突变AML细胞株MV4-11和MOLM-13均由厦门大学附属第一医院血液病研究所传代保存。MV4-11和MOLM-13细胞培养于含10%胎牛血清的伊思柯夫改良培养液(IMDM)中,置于37 ℃、5% CO2恒温细胞培养箱中培养,取对数生长期细胞离心,锥虫蓝染色后计数,拒染细胞超过98%用于后续实验。

1.3 CCK-8法检测细胞增殖

取对数生长期MV4-11和MOLM-13细胞悬液以5×104/孔分别接种于96孔板中,每孔100 μl。设置对照组(加入含10%胎牛血清的IMDM 100 μl)及不同浓度阿帕替尼组(2.5、5.0、10.0、20.0、40.0 μmol/L)。37 ℃、5% CO2恒温细胞培养箱中培养48 h后,每孔加入10 μl CCK-8工作液,在培养箱中继续培养2~4 h后,酶标仪测定450 nm处吸光度(A)值,计算细胞增殖抑制率。半数抑制浓度(IC50)为50%细胞生长受抑时的药物浓度。

细胞增殖抑制率(%)=(1-药物组A值/对照组A值)×100%

1.4 流式细胞术检测细胞凋亡

取对数生长期MV4-11和MOLM-13细胞,以2×105/孔分别接种于24孔板。设置对照组(加入含10%胎牛血清的IMDM 100 μl)和不同浓度阿帕替尼组(10、20、30、40 μmol/L)。37 ℃、5% CO2恒温细胞培养箱中培养48 h后收集细胞。参照Annexin V-FITC/PI细胞凋亡检测试剂盒说明书操作步骤处理细胞后,流式细胞仪检测。凋亡细胞比例为Annexin V阳性细胞占分析细胞的比例。

1.5 流式细胞术检测细胞线粒体膜电位的变化

取对数生长期MV4-11和MOLM-13细胞悬液,300×g,离心5 min,弃上清,计数细胞,调整细胞密度为5×105/ml,接种于24孔板中,每孔1 ml细胞悬液。设置对照组(加入含10%胎牛血清的IMDM 100 μl)及不同浓度阿帕替尼组(10、20、30、40 μmol/L)。37 ℃、5% CO2恒温细胞培养箱中培养24 h后收集细胞。参照上海碧云天生物技术有限公司JC-1线粒体膜电位检测试剂盒说明书操作步骤处理细胞后,流式细胞仪检测。细胞线粒体膜电位用JC-1多聚体/单体平均荧光强度(MFI)比值表示。

1.6 蛋白质印迹法检测VEGFR2-Src-STAT3通路相关蛋白

分别收集对照组(加入含10%胎牛血清的IMDM 100 μl)及不同浓度阿帕替尼(2.5、5.0、10.0 μmol/L)分别作用24 h后的MV4-11细胞,300×g离心5 min,弃上清。加入100 μl含1% PMSF的RIPA裂解液,将裂解液与细胞充分混匀,冰上裂解15 min后,4 ℃,12 000×g离心15 min,取上清至新的1.5 ml EP管中,按照BCA试剂盒说明书操作步骤测定蛋白浓度。取等量变性后的蛋白用12%十二烷基磺酸钠-聚丙烯酰胺(SDS-PAGE)凝胶电泳,完毕后转至聚偏氟乙烯(PVDF)膜。用含5%脱脂奶粉的TBST溶液室温封闭2 h,分别放入相应的1∶1 000抗体稀释液中,4 ℃摇床过夜。TBST洗膜3次后把目的条带放入HRP标记的羊抗兔二抗(1∶10 000),室温培养1 h,TBST洗膜3次。膜与化学发光底物反应5 min,暗室中电化学发光法(ECL)显色,压片曝光。

1.7 统计学方法

采用SPSS 20.0软件处理数据,计量资料符合正态分布,以均数±标准差(±s)表示,多组间比较采用单因素方差分析,P<0.05为差异有统计学意义。每个实验重复3次,每次实验设置至少3个复孔。

2 结果
2.1 阿帕替尼对MV4-11和MOLM-13细胞增殖的影响

阿帕替尼对MV4-11和MOLM-13细胞均具有增殖抑制作用,IC50值分别为(2.23±0.42)μmol/L、(4.08±2.62)μmol/L。不同浓度阿帕替尼(2.5、5.0、10.0、20.0、40.0 μmol/L)对MV4-11细胞增殖抑制作用呈浓度依赖性,细胞增殖抑制率分别为(57.89±2.31)%、(69.86±1.42)%、(80.63±3.41)%、(86.50±2.01)%和(91.10±2.34)%,差异有统计学意义(F=139.5,P<0.01);对MOLM-13细胞增殖抑制作用同样呈浓度依赖性,细胞增殖抑制率分别为(45.15±3.12)%、(59.45±2.75)%、(87.10±1.92)%、(93.80±3.22)%和(99.03±1.76)%,差异有统计学意义(F=201.7,P<0.01)。

2.2 阿帕替尼对MV4-11和MOLM-13细胞凋亡的影响

10、20、30、40 μmol/L阿帕替尼对MV4-11细胞具有浓度依赖性诱导凋亡作用,48 h细胞凋亡率分别为(81.95±1.15)%、(88.80±0.23)%、(97.46±0.49)%和(99.29±0.05)%,差异有统计学意义(F=6 915.0,P<0.01)(图1);对MOLM-13细胞同样具有浓度依赖性诱导凋亡作用,细胞凋亡率分别为(47.30±0.87)%、(67.00±3.71)%、(82.60±2.89)%和(98.06±5.34)%,差异有统计学意义(F=5 385.0,P<0.01)(图2)。

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图1
流式细胞术检测不同浓度阿帕替尼作用48 h后对FLT3-ITD突变急性髓系白血病细胞株MV4-11细胞凋亡的影响
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注:对照组加入含10%胎牛血清的伊恩柯夫改良培养液

图1
流式细胞术检测不同浓度阿帕替尼作用48 h后对FLT3-ITD突变急性髓系白血病细胞株MV4-11细胞凋亡的影响
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图2
流式细胞术检测不同浓度阿帕替尼作用48 h后对FLT3-ITD突变急性髓系白血病细胞株MOLM-13细胞凋亡的影响
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注:对照组加入含10%胎牛血清的伊恩柯夫改良培养液

图2
流式细胞术检测不同浓度阿帕替尼作用48 h后对FLT3-ITD突变急性髓系白血病细胞株MOLM-13细胞凋亡的影响
2.3 阿帕替尼对MV4-11和MOLM-13细胞线粒体膜电位的影响

10、20、30、40 μmol/L阿帕替尼作用MV4-11后,JC-1多聚体/单体MFI比值为0.45±0.06、0.19±0.07、0.12±0.03、0.09±0.01,与对照组(0.67±0.15)相比均下降,差异具有统计学意义(F=372.3,P<0.05);10、20、30、40 μmol/L阿帕替尼作用MOLM-13后,JC-1多聚体/单体MFI比值为0.84±0.05、0.66±0.13、0.35±0.11、0.27±0.02,与对照组(0.97±0.42)相比均下降,差异具有统计学意义(F=276.4,P<0.05)。提示阿帕替尼处理24 h后的MV4-11和MOLM-13细胞线粒体膜电位呈浓度依赖性下降。

2.4 阿帕替尼对VEGFR2-Src-STAT3通路相关蛋白的影响

不同浓度(2.5、5.0、10.0 μmol/L)阿帕替尼作用MV4-11细胞24 h后,阿帕替尼呈浓度依赖性下调VEGFR2、Src和STAT3磷酸化水平,而总蛋白水平无明显变化(图3)。提示阿帕替尼对MV4-11和MOLM-13细胞诱导细胞凋亡作用可能与下调VEGFR2、Src、STAT3表达有关。

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图3
蛋白质印迹法检测不同浓度阿帕替尼作用FLT3-ITD突变急性髓系白血病细胞株MV4-11 24 h对血管内皮生长因子受体2(VEGFR2)-Src-STAT3通路相关蛋白的影响
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注:1为对照组(加入含10%胎牛血清的伊思柯夫改良培养液);2为2.5 μmol/L阿帕替尼组;3为5.0 μmol/L阿帕替尼组;4为10.0 μmol/L阿帕替尼组

图3
蛋白质印迹法检测不同浓度阿帕替尼作用FLT3-ITD突变急性髓系白血病细胞株MV4-11 24 h对血管内皮生长因子受体2(VEGFR2)-Src-STAT3通路相关蛋白的影响
3 讨论

AML是一种高度异质性的恶性克隆性疾病,FLT3-ITD突变是AML中最常见的遗传学改变,FLT3-ITD突变AML患者常表现为高白细胞血症,且复发率高及无病生存期短。美国国立综合癌症网络(NCCN)指南已将FLT3-ITD作为AML患者预后不良的独立预后标志,是目前AML治疗的重点及难点[8]

由于传统化疗策略对FLT3-ITD突变AML疗效不佳,FLT3的抑制剂成为FLT3-ITD突变AML治疗的重点。目前已有5种FLT3抑制剂[米哚妥林(midostaurin)、索拉菲尼(sorafenib)、奎扎替尼(quizartinib)、吉列替尼(gilteritinib)及crenolanib]进入临床试验。然而目前国内仅有索拉菲尼,有报道索拉菲尼虽可以改善年龄<60岁难治复发AML患者的无事件生存率,却增加年龄>60岁难治复发AML患者的死亡率[9]。提示该药不良反应较大,且继发耐药发生率较高。探索已有新型靶向药物对FLT3-ITD突变AML细胞杀伤作用的新潜能具有"事半功倍"的效果。本研究发现阿帕替尼对FLT3-ITD突变AML具有增殖抑制和诱导凋亡作用,而且48 h的IC50均低于目前临床所应用的浓度,表明该药对于FLT3-ITD突变AML具有较好的转化前景。阿帕替尼为我国自主研发的新药,并已上市,价格相对较低且不良反应相对较小,本研究的发现为阿帕替尼在FLT3-ITD突变AML中的应用奠定了理论基础和实验基础。

线粒体膜电位在决定细胞存活及凋亡过程中起关键作用。研究表明,线粒体膜电位下降是细胞凋亡的早期标志性事件[10],且不可逆转。本研究结果显示,阿帕替尼作用MV4-11和MOLM-13细胞24 h后导致细胞线粒体膜电位下降,提示阿帕替尼诱导FLT3-ITD突变AML细胞凋亡的作用可能与触发线粒体凋亡有关。

FLT3-ITD突变导致FLT3的异常激活,致使FLT3受体在不依赖配体的情况下持续自身磷酸化,激活VEGF-Src及JAK-STAT等信号转导通路,导致因子非依赖性细胞增殖和抑制凋亡,进而促进白血病的发生与发展[11]。当VEGF与其细胞表面受体结合后,可导致Src的激活,进而磷酸化及激活STAT3。磷酸化后的STAT3迅速进入细胞核,由单体形成同源或异源二聚体而作为转录因子,与靶基因的启动子结合,激活转录,促进肿瘤细胞增殖及耐药形成[12]。临床研究表明STAT3的持续激活导致AML患者无疾病进展时间及总生存时间缩短[13]。此外,动物研究证实靶向抑制STAT3不仅抑制AML细胞增殖、促进凋亡,而且能够激活免疫系统,进而阻断肿瘤免疫逃逸发生[14,15]。本研究中蛋白质印迹法检测结果证实,不同浓度阿帕替尼作用MV4-11细胞后,VEGFR2、Src及STAT3磷酸化水平下降且呈浓度依赖性,提示阿帕替尼对FLT3-ITD突变AML细胞的抑制增殖和诱导凋亡作用可能与抑制该通路相关。

总之,阿帕替尼对FLT3-ITD突变AML细胞具有抑制增殖和诱导凋亡的作用,可能机制与下调VEGFR2及其下游Src和STAT3磷酸化水平相关。未来我们将在动物模型中进一步验证上述现象及机制,为临床FLT3-ITD突变AML患者靶向治疗提供更多帮助。

利益冲突
利益冲突

所有作者均声明不存在利益冲突

参考文献
[1]
LiuSBDongHJBaoXBet al. Impact of FLT3-ITD length on prognosis of acute myeloid leukemia[J]. Haematologica20191041):e9-9e12. DOI:10.3324/haematol.2018.191809.
[2]
DaverNSchlenkRFRussellNHet al. Targeting FLT3 mutations in AML:review of current knowledge and evidence[J]. Leukemia2019332):299-312. DOI:10.1038/s41375-018-0357-9.
[3]
WeisbergESattlerMRayAet al. Drug resistance in mutant FLT3-positive AML[J]. Oncogene20102937):5120-5134. DOI:10.1038/onc.2010.273.
[4]
LiangLWenYHuRet al. Safety and efficacy of PD-1 blockade-activated multiple antigen-specific cellular therapy alone or in combination with apatinib in patients with advanced solid tumors:a pooled analysis of two prospective trials[J]. Cancer Immunol Immunother2019689):1467-1477. DOI:10.1007/s00262-019-02375-z.
[5]
GuoQSunYKongEet al. Apatinib combined with chemotherapy or concurrent chemo-brachytherapy in patients with recurrent or advanced cervical cancer:a phase 2,randomized controlled,prospective study[J]. Medicine(Baltimore)20209911):e19372. DOI:10.1097/MD.0000000000019372.
[6]
王茂勋关露露陈小兵.阿帕替尼治疗恶性肿瘤的现状和进展[J].肿瘤研究与临床2018304):281-285. DOI:10.3760/cma.j.issn.1006-9801.2018.04.017.
WangMXGuanLLChenXB. Status and progress of apatinib in treatment of malignant tumors[J]. Cancer Research and Clinic2018304):281-285. DOI:10.3760/cma.j.issn.1006-9801.2018.04.017.
[7]
何志惠曾江正黄芬.阿帕替尼治疗晚期胃癌效果及安全性观察[J].肿瘤研究与临床201931(12):814-817. DOI:10.3760/cma.j.issn.1006-9801.2019.12.005.
HeZHZengJZHuangFet al. Efficacy and safety observation of apatinib in treatment of advanced gastric cancer[J]. Cancer Research and Clinic201931(12):814-817. DOI:10.3760/cma.j.issn.1006-9801.2019.12.005.
[8]
O'DonnellMRTallmanMSAbboudCNet al. Acute myeloid leukemia,version 3.2017,NCCN Clinical Practice Guidelines in Oncology[J]. J Natl Compr Canc Netw201715:926-957. DOI:10.6004/jnccn.2017.0116.
[9]
SasakiKKantarjianHMKadiaTet al. Sorafenib plus intensive chemotherapy improves survival in patients with newly diagnosed,FLT3-internal tandem duplication mutation-positive acute myeloid leukemia[J]. Cancer2019125(21):3755-3766. DOI:10.1002/cncr.32387.
[10]
DornGW. Molecular mechanisms that differentiate apoptosis from programmed necrosis[J]. Toxicol Pathol201341(2):227-234. DOI:10.1177/0192623312466961.
[11]
MarhällAHeidelFFischerTet al. Internal tandem duplication mutations in the tyrosine kinase domain of FLT3 display a higher oncogenic potential than the activation loop D835Y mutation[J]. Ann Hematol201897(5):773-780. DOI:10.1007/s00277-018-3245-5.
[12]
GuYMohammadISLiuZ. Overview of the STAT-3 signaling pathway in cancer and the development of specific inhibitors[J]. Oncol Lett202019(4):2585-2594. DOI:10.3892/ol.2020.11394.
[13]
BenekliMZhengXDonohueKAet al. Constitutive activity of signal transducer and activator of transcription 3 protein in acute myeloid leukemia blasts is associated with short disease-free survival[J]. Blood200299(1):252-257. DOI:10.1182/blood.v99.1.252.
[14]
HossainDMDos SantosCZhangQet al. Leukemia cell-targeted STAT3 silencing and TLR9 triggering generate systemic antitumorimmunity[J]. Blood2014123(1):15-25. DOI:10.1182/blood-2013-07-517987
[15]
ZhangQHossainDMDuttaguptaPet al. Serum-resistant CpG-STAT3 decoy for targeting survival and immune checkpoint signaling in acute myeloid leukemia[J]. Blood2016127(13):1687-1700. DOI:10.1182/blood-2015-08-665604.
 
 
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