综述
EVI1基因阳性的急性髓系白血病发病机制及潜在治疗靶点的研究进展
白血病·淋巴瘤, 2023,32(9) : 561-565. DOI: 10.3760/cma.j.cn115356-20230118-00020
摘要

原癌基因EVI1在急性髓系白血病(AML)的发病中起到了重要作用,EVI1基因阳性的AML通常伴有EVI1异常高表达,患者预后不良。目前已经对EVI1阳性的AML的发病机制展开了研究,发现EVI1编码的锌指蛋白可以结合多种DNA,并且EVI1和AML细胞的凋亡、分化、增殖、化疗耐药等密切相关。此外,随着二代测序技术的普遍应用,发现了一系列EVI1阳性的AML相关的共突变和下游靶点。文章阐述了EVI1基因导致AML发病的机制和潜在的治疗靶点。

引用本文: 马晓航, 赵晓甦. EVI1基因阳性的急性髓系白血病发病机制及潜在治疗靶点的研究进展 [J] . 白血病·淋巴瘤, 2023, 32(9) : 561-565. DOI: 10.3760/cma.j.cn115356-20230118-00020.
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急性髓系白血病(AML)是一组具有不同临床表现和治疗反应的异质性肿瘤,可根据其独特的遗传异常进行分类[1],其中EVI1阳性的AML相对罕见。2017年世界卫生组织(WHO)分类将其定义为伴有inv(3)(q21q26.2)/t(3;3)(q21;q26.2);GATA2,MECOM(EVI1)的AML,其侵袭性高且患者生存时间短[2];2022年因其不良预后和原始细胞比例无关,将其重新定义为伴有MECOM重排的AML[3]。EVI1通常不在正常造血细胞中表达[4],但在8%~10%的成年人AML的白血病细胞中过表达,在儿童以及成年人MLL重排的AML中EVI1高表达的比例分别为27%和73%[5,6]。EVI1阳性的AML主要发病机制是第3号染色体畸变引发的EVI1与GATA2表达失调[7],该病最突出的特点是终末髓系分化和细胞周期调节的破坏[5]

目前,通过高通量测序检测出多个EVI1的共突变[8],这些共突变对EVI1阳性的AML的影响尚不明确。文章介绍了近年来EVI1基因致AML发病的机制及潜在治疗靶点的研究进展。

1 EVI1基因及其编码蛋白结构

研究者最早发现定位于3q26染色体上的EVI1基因在一些伴有inv(3)(q21q26.2)/t(3;3)(q21;q26.2)染色体重排的AML患者中高表达,同时在t(3;21)(q26;q22)AML中观察到RUNX1-EVI1、MDS1-EVI1融合转录本。由MDS1和EVI1融合形成的复合基因座被称为MECOM。EVI1定位在染色体3q26.2位点,MDS1定位在EVI1上游170~400 kb位点,MDS1的3个外显子选择性剪接到EVI1的第2个外显子[9]。整个人类MECOM基因大约有580 kb,EVI1仅65 kb,包含16个外显子,其中14个外显子编码,产生3种不同异构体,即MDS1-EVI1(蛋白相对分子质量135×103)、EVI1A(123×103)、EVI1Δ324(103×103[9]

EVI1作为DNA结合蛋白,编码2个锌指结构域,分别是位于N端的ZF1和C端的ZF2[9]。ZF1识别并结合GA(C/T)AAGA(T/C)AAGATAA序列,ZF2识别GAAGATGAG序列[10]。EVI1Δ324缺少了N端6、7锌指结构,因此不能结合DNA[5]。在2个锌指结构域之间是1个抑制结构域,包含共抑制子CtBP的相互作用位点,在EVI1蛋白的C端还包含1个酸性结构域[11]

2 EVI1基因在造血中的功能

EVI1作为原癌基因,在人类胚胎和成年人骨髓的造血干细胞(HSC)中均高表达[12],在分化过程中迅速下调[13]。EVI1调控组织发育以及HSC的增殖和分化[12]

2.1 EVI1参与多种细胞增殖、分化和血管形成

靶向诱变破坏小鼠胚胎干细胞中的EVI1全长转录本,EVI1纯合突变的胚胎在第10.5天死亡。在死亡突变胚胎中,外周神经系统发育失败,体节、心脏和脑神经节出现缺陷。同时和野生型胚胎期第9.5天的小鼠相比,EVI1敲除的小鼠胚胎不能形成组织化和复杂的血管网,尤其是纯合突变体小鼠在大脑周围形成了神经丛样的血管网络结构,这些血管趋于不发育或退化[10]

2.2 EVI1维持HSC的自我更新能力

研究表明EVI1敲除导致小鼠HSC增殖和再生缺陷,并伴有GATA2低表达,GATA2可促进HSC增殖和分化;若重建EVI1的表达即可通过上调GATA2,恢复小鼠HSC增殖和分化的能力[12]。此外,EVI1可以作为长期HSC标志物。EVI1联合传统的HSC表面标志物分选能显著提高具有HSC活性的细胞分选纯度。

2.3 EVI1抑制红系增殖和分化

GATA-1是一种红细胞转录调控因子,参与调节红细胞中多种基因的表达[12]。EVI1通过ZF1结构域中的WGATAR (W=A或T,R=A或G)基序结合锌指蛋白GATA-1而发挥调控红细胞特异基因表达和细胞分化的功能。EVI1促使小鼠32DEpol细胞失去对红细胞生成素(EPO)的正常应答能力,红系祖细胞克隆的形成也明显减少;CAT实验进一步显示EVI1的表达明显抑制了GATA-1依赖的转录激活[12]。通过点突变破坏EVI1的2个锌指的空间结构后干扰了GATA-1和EVI1的蛋白相互作用,从而体外诱导小鼠骨髓红系正常分化[14]

2.4 EVI1抑制粒系分化

EVI1遏制粒细胞集落刺激因子(G-CSF)诱导的小鼠32DC13细胞向粒细胞分化。EVI1与PU.1相互作用并抑制髓样启动子的PU.1依赖性激活。若对PU.1和EVI1相互作用的位点进行靶向突变,EVI1将不能结合PU.1,并恢复PU.1调控基因的活性及体外骨髓祖细胞正常的分化。

2.5 EVI1表达促进巨核系偏移

人类红白血病(HEL)细胞在TPA刺激下,向巨核细胞分化,EVI1表达的HEL细胞在TPA刺激后会出现明显的生长停滞,同时伴有cyclin A的降低,以至于CDK2的持续催化活性下降,最终抑制巨核细胞分化,因此异位的EVI1表达造成巨核细胞分化程序缺陷[15]。在inv(3)AML小鼠模型中,此3q重排驱动EVI1过表达和GATA2杂合缺失,促进了巨核系和髓系偏移祖细胞以及巨核细胞、血小板的累积[16]

总之,EVI1基因在HSC中高表达促进了HSC的自我更新,抑制了其分化。进入分化阶段后,若EVI1异常表达则会抑制红系、粒系和巨核系的成熟和分化。

3 EVI1导致白血病发病的相关机制

EVI1异常高表达和AML的不良预后相关[17],EVI1阳性的AML最显著的遗传异常就是3q26.2位点的MECOM过表达EVI1,而3q21位点的GATA2单倍体不足[7,18]。目前对EVI1致AML的发病机制进行了广泛研究,发现以下机制可能与EVI1诱导白血病发病有关。

3.1 EVI1上调Spi1促进髓系分化

Spi编码的ETS结构域转录因子PU.1调节骨髓细胞和B淋巴细胞分化的基因表达。EVI1通过结合Spi1的1个14 kb上游调节元件(14 kb URE),上调编码PU.1的Spi1,促进髓系前白血病细胞的扩增,同时抑制红细胞和淋巴细胞生成;这种髓系异常扩张最终导致AML的发病。当敲减Spi1时,髓系细胞标志物Sca-1表达降低;敲除Spi1的14 kb URE时也消除了EVI1对HSC的影响[19]

3.2 EVI1解除转化生长因子β(TGF-β)介导的细胞生长抑制

EVI1通过与Smad3相互作用来拮抗TGF-β的生长抑制作用。TGF-β需要通过SMAD信号转导蛋白发挥生长抑制作用[20]。EVI1的ZF1与磷酸化Smad3的MH2结构域结合,并显著降低Smad3复合物和DNA结合的能力,从而抑制TGF-β的信号转导作用。

3.3 EVI1下调CDK2激酶活性阻滞细胞周期

EVI1过表达导致了cyclin D1和p21表达水平的升高以及CDK2活性的下降,因此降低了处于活跃态细胞周期循环中的细胞比例,处于G0/G1期的细胞积累[21]。并且EVI1上调LT-HSC特征性的干性相关基因,如Aldh1a1、Abca1等,下调DNA复制的基因(cyclins及其激酶)和DNA修复的基因(Brca1等)[22]

3.4 EVI1抑制JNK活性阻止细胞死亡

JNK是一组丝裂原活化蛋白激酶,参与细胞的应激反应。EVI1能够和JNK相互作用抑制JNK通路,保护细胞免受应激诱导的死亡,从而造成细胞的致癌性转化[23]。沉默EVI1对JNK通路的激活和白血病细胞凋亡的诱导均有显著影响[24]

4 EVI1阳性的AML共突变基因对预后的影响

二代测序(NGS)技术的广泛应用有助于早期发现AML的伴随突变特征。在EVI1阳性的AML患者中观察到每例患者至少包含1种额外突变,例如NRAS、PTPN11、KRAS等[8],但额外突变对EVI1阳性的AML患者的预后影响尚不明确。研究者对MECOM重排AML患者的预后进行了分析,发现影响预后的主要因素是伴随的基因突变,而非原始细胞计数,SF3B1、NRAS、PTPN11是最频繁发生的前3种突变,与携带2个及以上额外突变的患者相比,没有额外突变或只有1个突变的患者表现出更高的总生存(OS)率[25]。因此,额外突变越多的EVI1阳性的AML患者预后越不良。

5 EVI1阳性的AML潜在的治疗靶点

Glass等[5]对EVI1过表达的白血病细胞进行了染色质免疫共沉淀测序(ChIP-seq)和转录组测序(RNA-seq),结果显示涉及凋亡、分化和增殖的基因失调都可能促进EVI1阳性的AML的发生和发展。随着代谢组学的发展,与EVI1阳性的AML发病相关的代谢异常靶点也逐步被发现[18]。上述基因均有可能成为EVI1阳性的AML的潜在治疗靶点。

5.1 细胞分化

EVI1可以直接结合并下调参与髓系分化调控基因Cebpe及其下游靶基因的表达,下调以Serpinb2为代表的驱动细胞分化的Jak-Stat信号通路中的基因[5]。此外,EVI1过表达时敲减Spi1可使髓系表达降低[19]。因此Cebpe和Spi1可能是EVI1阳性的AML的潜在治疗靶点。

5.2 细胞凋亡

EVI1通过抑制MS4A3减慢细胞死亡,促进肿瘤细胞侵袭[26]。此外,EVI1也能结合并下调参与凋亡的P2rx7基因的表达[5]。若抑制这些基因下调,即可抵消EVI1诱导的凋亡抑制。

5.3 细胞增殖

EVI1和miR-1-2的表达具有显著正相关性,且通过ChIP实验发现EVI1直接结合该miRNA的启动子,上调miR-1-2的表达,增强了EVI1异常的AML细胞的增殖潜能。当抑制EVI1阳性的HEL细胞的miR-1-2的表达后,细胞增殖能力显著降低[27]

5.4 代谢

EVI1和Fbp1增强子区域之间相互作用上调了糖异生酶Fbp1和其他戊糖磷酸酶的转录,EVI1过表达白血病细胞的代谢组分析揭示了EVI1过表达的磷酸戊糖途径上调;通过短发夹RNA(shRNA)介导的敲减抑制Fbp1和戊糖磷酸酶途径,在体外选择性降低了EVI1驱动的白血病发病[18]

5.5 化疗敏感性

EVI1高表达AML细胞具有很强的黏附性,并且促进整合素亚基α6(ITGA6)表达上调。使用抗ITGA6的中和抗体处理EVI1高表达AML细胞加强了这些细胞对抗肿瘤药物的反应性,并且降低了细胞黏附能力,AML复发患者ITGA6的表达水平也更高,表明ITGA6可能是难治复发AML的潜在治疗靶点[28]

通过对整个基因组进行簇状规则间隔短回文重复序列(CRISPR)筛选,发现ERG以及CCND1可能是EVI1的下游靶点。ERG介导HSC自我更新异常和细胞分化受损[29],ERG还可能与AML细胞化疗耐药相关。CCND1可能与细胞耗竭和肿瘤免疫抑制相关[17]

6 EVI1阳性的AML患者的治疗新尝试

对于伴有EVI1高表达的AML患者,以蒽环类药物为基础的传统化疗方案通常疗效不佳且易复发[30]。因此针对EVI1高表达的AML患者展开了一些试验性的研究。在此前的研究中发现超剂量浓度的三氧化二砷(ATO)能降低EVI1的表达[31]。在另一项临床研究中发现治疗前EVI1高表达患者对ATO可能具有独特的敏感性[32]。使用有机砷治疗inv(3)AML患者可迅速改善患者的临床症状,并且提高了患者的生命质量[33]。另外,使用全反式维甲酸(ATRA)联合或不联合阿扎胞苷对13例EVI1阳性的AML患者进行治疗,7例患者获得完全缓解,提示ATRA联合"3+7"方案可能对EVI1阳性的AML患者更有效[34],可能是因为与ATRA能够诱导AML原始细胞的分化、降低其克隆生成能力有关。

7 小结与展望

目前尚未建立起能真实反映EVI1阳性的AML患者体内状况并进行研究的合适的细胞模型[19],可能是肿瘤细胞之间存在较大的异质性,且EVI1本身不足以诱导肿瘤的发生所致[17,19]。利用YCU AML1细胞系建立的MDS/AML模型很好地模拟了具有inv(3)(q21q26.2)/t(3;3)(q21;q26.2)和单体7的高危AML临床表型和分子基础,可作为进一步探索t(3;3)(q21;q26.2)和单体7的高危MDS/AML分子发病机制和新治疗策略的可行工具[35]。随着单细胞测序技术的发展,有望明确EVI1阳性的AML患者肿瘤细胞中真正起到致癌作用的细胞亚群,并且对该亚群进行表征确定,从而更好地将EVI1阳性的AML分层,且可以此为基础构建合适的细胞模型以及动物模型来模拟人体EVI1阳性的AML的发病情况。目前EVI1阳性的AML患者的治疗方法主要是传统化疗结合异基因造血干细胞移植,未来可研发针对EVI1阳性的AML发病机制的新型靶向治疗方法,进一步改善疗效。

利益冲突
利益冲突

所有作者均声明不存在利益冲突

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