综述
肿瘤神经科学的研究现状与展望
中华医学杂志, 2024,104(24) : 2279-2282. DOI: 10.3760/cma.j.cn112137-20231227-01498
摘要

近年来,随着对肿瘤研究的深入,各种致力于抗肿瘤的新思路、新方法不断涌现。在影响肿瘤进展的诸多因素中,神经系统参与了肿瘤从发生发展到转移扩散的各个环节,发挥着至关重要的作用。本文围绕神经科学与肿瘤学的交叉领域及新兴学科“肿瘤神经科学”概念,分别从肿瘤与中枢神经系统、外周神经系统间交互关系的角度,阐述神经与肿瘤相互作用的机制及当前的研究进展,并讨论当下需要解决的问题,以期能为肿瘤的攻克提供新思路、新方法、新进展。

引用本文: 李想, 李鸿雁. 肿瘤神经科学的研究现状与展望 [J] . 中华医学杂志, 2024, 104(24) : 2279-2282. DOI: 10.3760/cma.j.cn112137-20231227-01498.
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神经系统与肿瘤的交互研究并非无人涉足,关于神经系统来源的肿瘤(如胶质瘤)与神经系统交互的研究已经涌现出了许多成果,但非神经来源的肿瘤与神经系统间的关系却需要进一步完善阐明。神经跟随血管走行,遍布人体各个角落,甚至深入肿瘤微环境(TME)中参与肿瘤生长代谢的各个环节。理所当然的,神经系统与各种实体肿瘤均关系密切。因此,探讨神经与各肿瘤相互作用的新兴交叉学科“肿瘤神经科学”潜力可观,应得到更多关注。本文就神经-肿瘤交互机制进行综述,阐明各不同来源肿瘤的神经相互作用,并讨论当下亟需解决的问题以及对未来发展的展望。

一、中枢神经系统(CNS)与肿瘤
(一)对CNS肿瘤的调控作用

神经系统参与调控肿瘤的方方面面,对不同种类的肿瘤,神经系统可以通过各不同途径和方式对肿瘤细胞生理产生巨大影响。在CNS肿瘤中,以胶质瘤为例,受旁分泌因子和神经元-胶质瘤突触等机制的影响,相关神经元正常的神经活动可促进胶质瘤进一步生长播散。在已有突变条件下,神经活动对胶质瘤的形成和进展起决定性作用,甚至视觉、嗅觉、痛觉等感觉传入刺激都能发挥促癌作用。

1. 神经旁分泌因子:神经旁分泌是神经肿瘤交互的重要途径。神经活动释放促有丝分裂的旁分泌信号分子,这些信号分子进一步引发信号转导,最终促进肿瘤细胞增殖。这在患者来源的高级别胶质瘤模型1和1型神经纤维瘤病(NF1)小鼠模型中都有体现2。胶质瘤细胞和神经细胞共培养后生长明显加快3;对NF1模型小鼠实施从出生开始的去光处理减少小鼠视觉体验以阻止视觉中枢激活,小鼠肿瘤形成显著减少;在对NF1成瘤小鼠行去光处理后,现存肿瘤组织减小甚至消失,证实NF1小鼠成瘤因素中,神经活动极为重要2。常见旁分泌信号因子有脑源性神经营养因子(BDNF)、突触后连接蛋白(NLGN3)及胰岛素样生长因子-1(IGF-1)。BDNF可通过α-氨基-3-羟基-5-甲基-4-异恶唑丙酸受体(AMPAR)激活神经功能以促进胶质瘤进展3, 4,而NLGN3减低能阻止NF1向低级别视神经胶质瘤的转变。嗅觉刺激也可调节胶质瘤发生。在源自少突胶质前体细胞(OPC)的高级别胶质瘤小鼠模型中5,嗅球中的嗅觉受体神经元接收嗅觉刺激后激活二尖瓣细胞及簇状细胞,被激活的细胞释放IGF-16,促进胶质瘤发生进展。反之,二尖瓣和簇状细胞中IGF-1的特异性敲除,或OPC中IGF-1受体敲除,可降低或消除神经活动引发的促细胞分裂作用,从而抑制胶质瘤生长6。神经旁分泌也和其他肿瘤神经互动方式产生联动:如NLGN3既可在胶质瘤细胞中刺激胞内磷脂酰肌醇激酶/雷帕霉素靶蛋白诱导肿瘤细胞增殖,也可在TME中诱导胶质瘤细胞产生并释放新的NLGN3分子形成正反馈,还能上调肿瘤细胞中突触相关基因的表达,以促进神经细胞与肿瘤细胞间突触的形成7,共同促进神经肿瘤交互,加速胶质瘤进展。

2. 神经细胞与肿瘤细胞形成的突触:除旁分泌信号因子,神经元还可直接与胶质瘤细胞形成突触以加速胶质瘤进展。神经元和胶质瘤细胞形成的谷氨酸能突触,通过钙通透性AMPAR进行信号传导3, 4,与普通神经元与OPC所形成的正常突触一致。前临床模型显示,阻断胶质瘤AMPAR会阻碍胶质瘤的生长3, 4,激活AMPA信号通路则加速胶质瘤进展3。NLGN3的分泌可以促进神经元-胶质瘤突触的形成,BDNF的分泌会增加突触后电流强度8,提示针对神经元-胶质瘤细胞突触的调节也可通过联合调控旁分泌因子来增强效果。

(二)CNS肿瘤通过多种方式影响神经

神经元活动对胶质瘤的诸多功能起调控作用,而胶质瘤也能反过来“劫持”神经系统,使被影响的神经活动有利于肿瘤自身,抵抗死亡并快速增殖扩散,形成恶性循环,加深加快肿瘤进展。

1. 肿瘤相关神经发育:既往判断肿瘤神经交互一般基于影像学及生物标志物信息。如在病理切片中观察到神经鞘内肿瘤细胞,或神经外肿瘤灶累及神经,即可确认存在神经侵犯;生物标志物钙结合蛋白S-100和部分趋化因子也可辅助判断9。当前,随着光遗传学、双光子显微镜等技术的应用及深度学习的辅助,包括时空信息的深部组织图像信噪比不断提高,针对像神经精细组织结构及功能的准确分析成为可能10。胶质瘤细胞间可建立突触连接,随肿瘤侵袭时间延长,孤立肿瘤细胞通过建立彼此间肿瘤微管,形成具备功能的肿瘤细胞网络10。肿瘤细胞通过肿瘤微管间的缝隙连接沟通,进行小分子互换,并通过细胞间瞬时钙波进行信息交互,最终降低抗肿瘤药物的敏感度,形成抗治疗能力。胶质瘤对标准化疗药物替莫唑胺耐药性的产生就有肿瘤网络的参与;相应的,缺乏连接的胶质瘤对治疗更敏感11。因神经元-肿瘤突触与正常突触的一致性,肿瘤神经网络可通过突触形成和电信号播散整合进入正常脑组织3, 4,加速神经侵袭并获取更多活跃信号以驱动肿瘤生长扩散,形成恶性循环。

2. 神经元高兴奋性及突触生成因子:神经胶质瘤中异常增加的突触和部分旁分泌因子会诱导相邻神经元高兴奋性。在胶质母细胞瘤模型中,通过胱氨酸-谷氨酸反向转运系统分泌的谷氨酸显著增加神经元兴奋性12,促进肿瘤增殖。胶质瘤还可分泌突触生成因子如凝血反应蛋白113、葡聚糖-3等14,驱动神经元高兴奋性,促进肿瘤-神经突触产生。

二、外周神经系统(PNS)与肿瘤

与CNS在中枢肿瘤中的地位相似,PNS在神经密集的外周器官中也扮演相似角色。外周器官多受PNS自主神经,即交感神经、副交感神经及其递质的支配调节,故自主神经系统在肿瘤发生发展中也起重要作用。国内外普遍认为,在外周肿瘤,特别是如结直肠癌15、胰腺癌16、前列腺癌17等神经分布较多的肿瘤中,神经浸润(PNI)作为肿瘤与神经建立交互的标志,预示高度恶性与不良预后。近期,PNI的不良预后在乳腺癌18、胆囊癌19中也被证实,提示神经肿瘤交互机制在各肿瘤中普遍存在。外周肿瘤的脑转移有与中枢肿瘤相似的交互特性,来源于小细胞肺癌的脑转移瘤有类似胶质瘤的神经交互机制:脑皮质神经元活动会引发脑转移瘤细胞的膜电流和钙瞬变,从而引发去极化并促进肿瘤生长20。外周肿瘤神经交互普遍存在且参与神经高度相似,但不同肿瘤会因自身特性而导致与同种神经交互产生不同结果。考虑肿瘤神经交互与肿瘤自身特点及周围神经均有强相关性,我们将举例阐述周围器官与神经系统相互作用机制及特点。

(一)乳腺癌

乳腺中肾上腺素能神经分布密集,乳腺肿瘤发生发展也受神经系统调控。对乳腺癌组织标本的分析显示:预后不佳的病理类型中,瘤内神经纤维检出数更多,PNI程度也更高,而神经纤维的多寡又与乳腺癌细胞中神经生长因子(NGF)的表达水平正相关,表明神经肿瘤相互作用调控乳腺癌的侵袭与转移能力。在人乳腺癌异种移植物小鼠和化学诱导乳腺癌大鼠中操控自主神经,刺激交感神经则癌症生长加快,刺激副交感神经则肿瘤生长减少21。小鼠原位乳腺癌活体成像数据显示β肾上腺素能信号介导的神经激活增加30倍远处转移,β肾上腺素能信号传导的药理性激活可有相似效果,而拮抗剂普萘洛尔抑制肿瘤转移22。表明乳腺癌发生发展受自主神经支配影响,交感支配与临床不利因素相关,副交感支配则是乳腺癌保护因素;药物调控的有效性也提供了局部调控肾上腺素能信号进行乳腺癌治疗的新思路。

(二)胃癌

胃及其消化功能都受到神经系统的支配,在胃肿瘤的发生发展中,神经系统支配的改变影响巨大。在多种小鼠胃癌模型中,迷走神经切断术或局部注射A型肉毒杆菌毒素均能降低肿瘤的发生率和进展速度23。进一步研究表明,胆碱能信号来源于神经以及双皮质素样激酶1(DCLK1+)的簇状细胞,可作用于乙酰胆碱毒蕈碱型受体(CHRM)3,增强Wnt信号通路活性以促进肿瘤生长23,还可刺激胃上皮细胞造成NGF过表达。NGF反过来促使神经分布变广,同时促进癌变的发生24。DCLK1+细胞的消融或NGF/Trk信号通路的阻断都以毒蕈碱型胆碱受体M3依赖的方式抑制胃肿瘤发生24,间接证明自主神经在胃癌形成中的作用及机制,并为肿瘤的预防性干预及治疗提供了潜在靶点。

(三)胰腺癌

胰腺癌的PNI不仅提示预后不良,还通过多种方式促进胰腺癌增殖扩散,并帮助胰腺癌细胞抵抗营养不良,逃避细胞死亡。在胰腺癌小鼠模型中可观察到传入神经肥大、神经源性炎症相关分子增多和多种神经营养因子及其受体的增加25,且神经改变并非于胰腺癌形成后才出现,而是在胰腺上皮内瘤变(PanIN)2期26时就已开始。同样在PanIN 2期,实验发现胰腺腺泡细胞沿感觉神经侵入脊髓,并一直迁移到胸下部和腰上部,通过注射辣椒素消融感觉神经元可阻止PNI26。与其他外周肿瘤相似,自主神经支配对胰腺癌也有调控作用。肾上腺素能神经释放的儿茶酚胺驱动胰腺导管腺癌(PDAC)的进展、NGF的分泌和胰腺神经密度的增加;与之相反,胆碱能受体激动剂及副交感神经释放的胆碱能信号对胰腺癌起抑制作用,同时去副交感神经可增加胰腺肿瘤发生率27。此外,PDAC的TME呈现高度营养不良状态,营养不良造成的丝氨酸缺乏影响肿瘤的代谢及增殖28。PDAC细胞通过选择性翻译分泌NGF,从而招募外周神经,使神经密度增大,借助轴突释放至TME中的丝氨酸补偿PDAC细胞生长29。这一过程既帮助PDAC细胞克服低营养环境带来的生存压力,又显著促进PNI,成为患者不良预后的前兆。此外,TME中激活的施万细胞(SC)能动态地形成施万细胞轨道(TAST)作为细胞的运动途径,并对癌细胞施加作用力以提高其运动能力30,提示针对SC的调控手段可能成为控制胰腺癌转移的重要途径。

(四)前列腺癌

与其他神经分布密集的外周器官类似,PNI增加及浸润神经的直径较长都是前列腺癌不良预后的指征。将前列腺癌细胞与背根神经节进行体外共培养,前列腺癌细胞增殖加快,证明神经活动促进前列腺癌生长31。人源性前列腺癌小鼠模型中,切断小鼠交感神经,肿瘤生长受限;去除肾上腺素能受体,肿瘤生长和扩散均受到抑制32,表明肾上腺素能神经促进前列腺癌生长和转移。与在其他肿瘤中发挥的抑瘤功能不同,副交感神经在前列腺癌中协同交感神经作用,共同促进前列腺癌发生发展。研究表明,前列腺癌中的CHRM1转导的胆碱能信号促进前列腺癌转移32。除此之外,研究显示,位于脑室下区的表达双皮质素(DCX+)的神经祖细胞由于血脑屏障的破坏等因素进入循环并浸润于前列腺中,能够分化成新的肾上腺素能神经元;且DCX+细胞的选择性耗竭抑制前列腺癌早期生长,而DCX+细胞的移植促进前列腺癌转移;除此之外,DCX+细胞在人体中与前列腺癌的侵袭性和复发相关33,展示了一种独特的前列腺癌神经交互,为未来前列腺癌药物的开发提供了新方向。

三、总结与展望

综上所述,神经系统通过分泌信号分子、与肿瘤细胞建立突触等方式促进肿瘤的生长播散,而肿瘤也会在增殖过程中重塑肿瘤相关神经,使得被“劫持”的神经系统利于肿瘤发挥其侵袭功能。除直接交互外,神经系统还可间接调控肿瘤功能,如帮助肿瘤细胞克服营养不良环境,增强肿瘤细胞转移潜能等。神经系统对各种不同来源的肿瘤都起关键的调控作用。目前针对相关机制的研究及药物临床试验都在不断推进中。

肿瘤神经研究不断深入的同时,关于肿瘤神经科学仍然有许多内容尚需进一步探索。临床中判断肿瘤神经交互的手段仍不成熟:影像学手段漏诊风险大,生物标志物特异性不足;受限于方法学,肿瘤侵犯神经的程度难以判断。找到更优的肿瘤神经临床检测方法是临床研究更进一步的关键。在部分已进行的体外实验中,肿瘤神经交互展现出重要甚至决定性作用,表明神经调控在临床应用中的巨大潜力,但在临床中仍缺乏针对性阻断肿瘤神经交互的成熟手段。针对此问题的临床研究将是推动肿瘤治疗的主要方向。此外,当前已有的神经调控药物及手术等治疗方法,如何融入当前肿瘤治疗体系,仍缺乏高质量的试验结果指导,靶向神经的治疗仍需进一步探索。总之,肿瘤神经科学作为一个新兴的交叉学科,从神经新视角,为肿瘤治疗带来创新方向,具有巨大潜力;但也面临挑战,针对肿瘤神经科学的进一步探索能极大丰富对抗肿瘤的新方法,并为肿瘤治疗提供新策略和新思路。

引用本文:

李想, 李鸿雁. 肿瘤神经科学的研究现状与展望[J]. 中华医学杂志, 2024, 104(24): 2279-2282. DOI: 10.3760/cma.j.cn112137-20231227-01498.

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参考文献
[1]
VenkateshHS, JohungTB, CarettiV, et al. Neuronal activity promotes glioma growth through neuroligin-3 secretion[J].Cell, 2015, 161(4): 803-816. DOI: 10.1016/j.cell.2015.04.012.
[2]
PanY, HysingerJD, BarronT, et al. NF1 mutation drives neuronal activity-dependent initiation of optic glioma[J].Nature, 2021, 594(7862):277-282. DOI: 10.1038/s41586-021-03580-6.
[3]
VenkateshHS, MorishitaW, GeraghtyAC, et al. Electrical and synaptic integration of glioma into neural circuits[J]. Nature, 2019, 573(7775):539-545. DOI: 10.1038/s41586-019-1563-y.
[4]
VenkataramaniV, TanevDI, StrahleC, et al. Glutamatergic synaptic input to glioma cells drives brain tumour progression[J].Nature, 2019, 573(7775):532-538. DOI: 10.1038/s41586-019-1564-x.
[5]
Alcantara LlagunoSR, WangZ, SunD, et al. Adult lineage-restricted CNS progenitors specify distinct glioblastoma subtypes[J].Cancer Cell, 2015, 28(4):429-440. DOI: 10.1016/j.ccell.2015.09.007.
[6]
ChenP, WangW, LiuR, et al. Olfactory sensory experience regulates gliomagenesis via neuronal IGF1[J]. Nature, 2022, 606(7914): 550-556. DOI: 10.1038/s41586-022-04719-9.
[7]
VenkateshHS, TamLT, WooPJ, et al. Targeting neuronal activity-regulated neuroligin-3 dependency in high-grade glioma[J]. Nature, 2017, 549(7673):533-537. DOI: 10.1038/nature24014.
[8]
TaylorKR, BarronT, HuiA, et al. Glioma synapses recruit mechanisms of adaptive plasticity[J]. Nature, 2023, 623(7986): 366-374. DOI: 10.1038/s41586-023-06678-1.
[9]
LiuQ, MaZ, CaoQ, et al. Perineural invasion-associated biomarkers for tumor development[J].Biomedecine Pharmacotherapie, 2022, 155:113691. DOI: 10.1016/j.biopha.2022.113691.
[10]
VenkataramaniV, YangY, SchubertMC, et al. Glioblastoma hijacks neuronal mechanisms for brain invasion[J]. Cell, 2022, 185(16): 2899-2917.e31. DOI: 10.1016/j.cell.2022.06.054.
[11]
SchneiderM, PotthoffAL, EvertBO, et al. Inhibition of intercellular cytosolic traffic via gap junctions reinforces lomustine-induced toxicity in glioblastoma independent of MGMT promoter methylation status[J]. Pharmaceuticals, 2021, 14(3): 195. DOI: 10.3390/ph14030195.
[12]
BuckinghamSC, CampbellSL, HaasBR, et al. Glutamate release by primary brain tumors induces epileptic activity[J]. Nature Medicine, 2011, 17(10): 1269-1274. DOI: 10.1038/nm.2453.
[13]
KrishnaS, ChoudhuryA, KeoughMB, et al. Glioblastoma remodelling of human neural circuits decreases survival[J]. Nature, 2023, 617(7961): 599-607. DOI: 10.1038/s41586-023-06036-1.
[14]
YuK, LinCC, HatcherA, et al. PIK3CA variants selectively initiate brain hyperactivity during gliomagenesis[J]. Nature, 2020, 578(7793): 166-171. DOI: 10.1038/s41586-020-1952-2.
[15]
张大鹏, 周逢强, 耿振, . 结直肠癌神经浸润的研究进展[J]. 中华实验外科杂志, 2021, 38(2): 389-392. DOI: 10.3760/cma.j.cn421213-20200822-00627.
[16]
卢孝治, 黄诗朦, 蒋奎荣, . 神经浸润在胰腺癌发展中的作用[J].中华普通外科杂志, 2022, 37(5): 395-397. DOI: 10.3760/cma.j.cn113855-20210511-00296.
[17]
莫汝均, 罗杰鑫, 米其武, . 前列腺癌神经支配研究现状及其靶向治疗应用探讨[J].中华医学杂志, 2022, 102(46):3663-3666. DOI: 10.3760/cma.j.cn112137-20220527-01167.
[18]
HuJ, ChenW, ShenL, et al. Crosstalk between the peripheral nervous system and breast cancer influences tumor progression[J]. Biochim Biophys Acta Rev Cancer, 2022, 1877(6):188828. DOI: 10.1016/j.bbcan.2022.188828.
[19]
孟春艳, 王菁, 王波. 肝外胆管恶性狭窄的鉴别诊断[J]. 临床肝胆病杂志, 2024, 40(4):844-849.
[20]
SavchukS, GentryK, WangW, et al. Neuronal-activity dependent mechanisms of small cell lung cancer progression[J]. bioRxiv:Preprint Server Biol, 2023, 2023.01.19.524430. DOI: 10.1101/2023.01.19.524430.
[21]
KamiyaA, HayamaY, KatoS, et al. Genetic manipulation of autonomic nerve fiber innervation and activity and its effect on breast cancer progression[J]. Nature Neuroscience, 2019, 22(8): 1289-1305. DOI: 10.1038/s41593-019-0430-3.
[22]
SloanEK, PricemanSJ, CoxBF, et al. The sympathetic nervous system induces a metastatic switch in primary breast cancer[J]. Cancer Research, 2010, 70(18):7042-7052. DOI: 10.1158/0008-5472.CAN-10-0522.
[23]
ZhaoCM, HayakawaY, KodamaY, et al. Denervation suppresses gastric tumorigenesis[J]. Sci Transl Med, 2014, 6(250):250ra115. DOI: 10.1126/scitranslmed.3009569.
[24]
HayakawaY, SakitaniK, KonishiM, et al. Nerve growth factor promotes gastric tumorigenesis through aberrant cholinergic signaling[J]. Cancer Cell, 2017, 31(1): 21-34. DOI: 10.1016/j.ccell.2016.11.005.
[25]
StopczynskiRE, NormolleDP, HartmanDJ, et al. Neuroplastic changes occur early in the development of pancreatic ductal adenocarcinoma.[J]. Cancer Research, 2014, 74(6): 1718-1727. DOI: 10.1158/0008-5472.CAN-13-2050.
[26]
SalomanJL, AlbersKM, LiD, et al. Ablation of sensory neurons in a genetic model of pancreatic ductal adenocarcinoma slows initiation and progression of cancer[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2016, 113(11):3078-3083. DOI: 10.1073/pnas.1512603113.
[27]
Kim-FuchsC, LeCP, PimentelMA, et al. Chronic stress accelerates pancreatic cancer growth and invasion: a critical role for beta-adrenergic signaling in the pancreatic microenvironment[J].Brain Behavior Immunity, 2014, 40: 40-47. DOI: 10.1016/j.bbi.2014.02.019.
[28]
SullivanMR, MattainiKR, DennstedtEA, et al. Increased serine synthesis provides an advantage for tumors arising in tissues where serine levels are limiting[J]. Cell Metabolism, 2019, 29(6): 1410-1421.e4. DOI: 10.1016/j.cmet.2019.02.015.
[29]
BanhRS, BiancurDE, YamamotoK, et al. Neurons release serine to support mRNA translation in pancreatic cancer[J].Cell, 2020, 183(5):1202-1218.e25. DOI: 10.1016/j.cell.2020.10.016.
[30]
DebordeS, GusainL, PowersA, et al. Reprogrammed schwann cells organize into dynamic tracks that promote pancreatic cancer invasion[J]. Cancer Discov, 2022, 12(10): 2454-2473. DOI: 10.1158/2159-8290.CD-21-1690.
[31]
AyalaGE, WheelerTM, ShineHD, et al. In vitro dorsal root ganglia and human prostate cell line interaction: redefining perineural invasion in prostate cancer[J]. Prostate, 2001, 49(3): 213-223. DOI: 10.1002/pros.1137.
[32]
MagnonC, HallSJ, LinJ, et al. Autonomic nerve development contributes to prostate cancer progression[J]. Science, 2013, 341(6142): 1236361. DOI: 10.1126/science.1236361.
[33]
MauffreyP, TchitchekN, BarrocaV, et al. Progenitors from the central nervous system drive neurogenesis in cancer[J].Nature, 2019, 569(7758):672-678. DOI: 10.1038/s41586-019-1219-y.
 
 
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