综述
影像组学预测模型在宫颈癌诊断及预后中应用的研究进展
中华医学杂志, 2024,104(30) : 2871-2874. DOI: 10.3760/cma.j.cn112137-20240401-00747
摘要

宫颈癌是女性中最常见的恶性肿瘤之一。许多临床参数被用于宫颈癌患者的预后预测,但在预测准确性方面存在局限性,因此需要开发一种非侵入性的检测技术,以在治疗开始前或治疗过程中提供更具体的肿瘤特征,使临床医师能够实施更个性化的治疗。影像组学是一种从医学图像中提取信息的数学统计方法,具有预测宫颈癌患者的分期、组织学类型、淋巴结状态、治疗效果、生存和复发的潜力,还可以实现对于宫颈癌生物标志物和免疫微环境的评估。本文综述影像组学应用于宫颈癌诊断和预后预测的最新研究进展,并讨论影像组学目前在临床应用中的局限性和挑战。

引用本文: 林治辰, 江萍, 陈泓钵, 等.  影像组学预测模型在宫颈癌诊断及预后中应用的研究进展 [J] . 中华医学杂志, 2024, 104(30) : 2871-2874. DOI: 10.3760/cma.j.cn112137-20240401-00747.
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宫颈癌是全球女性癌症发病和死亡的第四大常见原因1。目前研究比较明确的宫颈癌预后因素包括国际妇产科联盟(FIGO)分期、组织学类型、肿瘤体积、淋巴结转移(LNM)和淋巴血管间隙浸润(LVSI)2, 3。在上述已知的预后因素基础上寻求更多的预测方法是目前宫颈癌研究的热点方向之一。目前,MRI和18F-氟脱氧葡萄糖正电子发射断层扫描/计算机断层扫描(PET/CT)已被广泛用于宫颈癌的诊断、治疗决策和预后评估。本综述主要关注影像组学在鉴别宫颈癌肿瘤分期、组织学类型、LNM、LVSI和预测生存、复发和远处转移方面的研究进展和临床价值。

一、影像组学方法简介

影像组学是指从医学影像中提取大量特征的多种数学方法,提取基于强度、形状、大小或体积的定量影像特征以及纹理特征,作为潜在基因表达模式以及肿瘤相关生物学特征(如肿瘤形态和肿瘤内异质性)的替代标记,进而预测肿瘤患者的分期、淋巴结状态和治疗反应等预后因素4。通常影像组学研究的设计和工作流程包括图像分割、影像组学特征提取、降维和特征选择以及统计分析和模型构建5, 6。影像组学的特征主要有以下几个类别:(1)强度特征:是由影像像素强度计算得到的一阶统计量,反映肿瘤的信号强度;(2)形状特征:显示肿瘤的大小和形状信息;(3)纹理特征:测量每个肿瘤体素与其周围环境的关系,量化肿瘤内异质性和使用复杂的肿瘤模式,如大小区域矩阵;(4)小波特征:将图像分解为低频和高频,从每个频率提取影像组学特征,可以量化高维多频肿瘤信息;(5)拉普拉斯-高斯特征:通过拉普拉斯-高斯空间带通滤波器提取纹理特征7, 8

二、影像组学预测宫颈癌分期和病理组织学分级

获得准确的肿瘤分期和病理组织学亚型是评估宫颈癌患者预后和进行治疗决策的关键因素。在早期宫颈癌中,仅靠MRI图像对分期判断存在局限性,限制了临床诊断的准确性和治疗效果。Zhao等4应用基于MRI的影像组学来区分57例Ⅰb期和Ⅱa期宫颈癌,共在T1加权成像(T1WI)、T2加权成像(T2WI)、弥散加权成像、动态对比增强序列和表观扩散系数(ADC)中提取27个特征建立模型。在所有模型中,支持向量机(SVM)分类器构建的T2WI模型在训练集和测试集均为最佳,受试者工作特征曲线下面积(AUC)分别为0.915和0.907,说明影像组学的纹理特征和一阶统计学特征可用于早期宫颈癌的术前分期。Wang等9发现联合T2WI和弥散峰度成像(DKI)的影像组学特征在鉴别肿瘤病理分型和分级的效果最佳,AUC为0.823,而单独应用DKI影像组学特征鉴别FIGO分期的效果最佳,AUC为0.868。

三、影像组学预测宫颈癌LNM、LVSI和肿瘤出芽

LNM是影响宫颈癌患者无病生存期(DFS)和总生存期(OS)的主要因素10。盆腔和主动脉旁淋巴结(PALN)是宫颈癌肿瘤引流和LNM的首要部位11。Wang等12从T2WI、T2WI频率衰减反转恢复序列和轴向ADC序列中提取影像组学特征,纳入肿瘤分化程度和FIGO分期,预测宫颈癌患者的盆腔转移时表现出了良好的准确性。Song等13分析132例宫颈癌患者经病理证实正常大小的盆腔淋巴结的术前影像,分别提取T2WI中淋巴结和肿瘤的影像组学特征,将淋巴结影像组学特征与临床形态学特征相结合提高了正常大小盆腔转移淋巴结的鉴别诊断效能。Lucia等14在239例局部晚期宫颈癌(LACC)患者的PET/CT影像中提取影像组学特征,临床与影像结合模型还纳入了FIGO分期,该模型能够很好地预测PALN受累的风险。研究表明,肿瘤细胞易从原发肿瘤迁移到周围区域并引起MRI形态学改变15。Wu等16在Ⅰb~Ⅱa期宫颈癌患者矢状位T2WI和ADC图上提取肿瘤内和肿瘤周围组织的影像学特征,比较了单纯提取肿瘤或肿瘤周围特征的模型与同时提取肿瘤和肿瘤周围特征的模型,预测LNM的敏感性从43.0%提高到85.7%。

LVSI被定义为癌细胞在淋巴管和(或)血管内的存在,是肿瘤细胞扩散的关键步骤17。Li等18开发并验证了基于轴向T1对比增强(CE-T1WI)MRI的临床联合影像组学模型,该模型能够很好地区分LVSI组和非LVSI组,训练集和验证集的AUC分别为0.754和0.727。最近一项纳入300例患者的双中心研究也筛选了CE-T1WI序列中与LVSI相关的影像组学特征,采用k-均值聚类方法,与全肿瘤模型相比,生境模型在外部测试队列中可达到更高的预测效能19。生境影像可更好地量化与肿瘤生长或侵袭相关的亚区域20。因此,在未来的研究中可以更多地采用基于生境分析的肿瘤亚区域影像组学模型评估宫颈癌的多种预后因素。

肿瘤出芽是指单个或≤4个肿瘤细胞组成的小细胞簇出现在浸润性肿瘤前缘或主要肿瘤体内21。研究表明,肿瘤出芽状态与宫颈癌的生存结局相关22。目前已有2项研究分别采用MRI和PET/CT影像组学预测宫颈癌肿瘤出芽状态23, 24,分别应用逻辑回归、随机森林、SVM和神经网络4种机器学习算法构建MRI影像组学预测模型,各模型在测试集中的平均AUC为0.816,对肿瘤出芽状态具有良好的预测效能;PET/CT影像组学特征与瘤内出芽状态相关,而在瘤周出芽阳性和阴性组之间的影像组学特征没有差异24

四、影像组学预测宫颈癌治疗反应、生存、复发和远处转移

FIGO分期、组织学分级、肿瘤大小和LNM等临床和组织病理学参数是宫颈癌患者生存的预测因素2, 3。然而,受个体差异影响,即使临床特征相同,治疗反应和预后也可能有所差异25。目前,已有许多研究应用影像组学早期预测宫颈癌患者治疗反应、生存、复发和远处转移。

包含从多个MRI序列提取特征的影像组学模型较单一序列模型有更低的偏倚风险。Zhang等26在185例宫颈鳞状细胞癌患者的T2WI、ADC图、动脉和延迟期对比增强MRI这4个序列中提取影像组学特征,影像组学与T分期、LNM位置的联合模型对无进展生存期和OS的预测效果最佳,显著高于仅用影像组学评分。Fang等7在对248例早期宫颈癌患者进行的回顾性研究中探讨了基于治疗前T2WI和CE-T1w MRI的影像组学评分对DFS的预测价值。LVSI和LNM是DFS的重要独立预后因素,但是与影像组学模型相比,结合这两项因素的临床与影像联合模型在3年DFS的估测中没有表现出效能改善,这与前文所述的研究不同。这表明影像组学评分可能已经充分包含了临床因素中的信息,而影像组学通过观察整个肿瘤范围并提取高维特征,可以挖掘出比临床因素更多的预后信息。Sun等27在一项多中心研究中采用多序列MRI影像组学预测LACC患者对新辅助化疗的临床反应,结合T1WI瘤内区域、T2WI瘤内区域和瘤周区域的组合模型在训练集和测试集中的AUC分别为0.998和0.999,明显优于单一序列和其他组合模型。总之,纳入多个序列的影像组学模型可综合发挥不同序列的优势,提高预后预测效能。

除瘤内和瘤周区域影像外,也有研究利用非肿瘤的其他身体部位影像组学信息来预测宫颈癌预后。Yusufaly等28回顾性分析127例宫颈癌患者PET/CT影像上大体肿瘤体积(GTV)、计划靶区(PTV)、肌肉、骨骼和脂肪的965个影像组学特征,因为这些全身特征可能反映患者整体炎症状态的变化。根据包含肿瘤分期、2个GTV、1个PTV和1个全身(CT骨均方根)影像组学生物标志物的Cox模型将患者分层为高危组和低危组,其风险比为0.019,预测肿瘤无进展生存期效果最佳。

有研究分析了PET/CT和MRI的联合纹理特征以预测生存29, 30。Lucia等29在一项纳入102例接受同步放化疗的LACC患者的研究中发现,治疗前ADC灰度共生矩阵熵和PET灰度行程矩阵灰度不均匀性是局部区域控制(LRC)的独立预测因素。此外,他们在其他医疗中心验证了该影像组学模型,预测LACC患者的DFS准确率为90%,预测LRC的模型准确率达到98%30

五、影像组学预测宫颈癌相关的生物标志物及免疫微环境

许多蛋白分子被作为宫颈癌的预后生物标志物和治疗靶点,已有研究探讨了宫颈癌影像组学特征与这些预后生物标志物的表达之间的联系,其中一部分研究则将影像组学特征与预后生物标志物联合预测宫颈癌的LNM、LVSI、生存和转移,达到了良好的预测效能。

血管内皮生长因子(VEGF)的过表达与多种恶性肿瘤的不良预后相关,包括宫颈癌31。准确且无创地预测VEGF表达可以为靶向药物的选择提供有用的信息32。Li等18探讨PET/CT影像组学特征在预测VEGF表达的价值,发现26个直方图和灰度共生矩阵影像组学特征与VEGF表达相关。Deng等33则采用MRI影像组学预测VEGF表达。这2项研究均证明影像组学与VEGF的结合模型对于LNM具有良好的预测效能。E-钙黏蛋白(E-cad)表达降低可导致肿瘤侵袭、转移、放射抵抗和预后不良34。Li等35研究表明整合原发肿瘤和瘤周区域的PET/CT影像组学可预测早期宫颈癌中E-cad低表达,在训练集和验证集AUC分别为0.915和0.844。Li等36建立PET/CT影像组学、环氧化酶-2(Cox-2)和腱糖蛋白C(TNC)结合的机器学习模型来预测早期宫颈癌患者LVSI,结果表明TNC不仅与LVSI显著相关,也与影像组学评分和Cox-2相关。这两项研究表明影像组学为无创性检测TNC和Cox-2表达提供了新的可能。Zhang等37通过对有无脑转移的宫颈癌患者核糖核酸转录数据进行统计分析,确定β1肾上腺素受体(ADRB1)是与宫颈癌脑神经血管转移相关的危险因素。该研究通过4种临床特征(年龄、分期、N和T)以及1种影像组学特征(original_glszm_GrayLevelVariance Rad-score)构建了基于列线图的模型,在高和低影像组学评分组间ADRB1表达的差异具有统计学意义。表明影像组学特征可以用于预测ADRB1表达,从而预测宫颈癌的脑转移。

近年来,影像组学也越来越多地应用于肿瘤微环境的评估,有关肿瘤浸润淋巴细胞的影像组学研究已应用于乳腺癌、肺癌等多种肿瘤38,但与宫颈癌相关的研究很少。Li等39整合了来自单细胞和批量转录组测序、全外显子组测序、基因分型阵列、免疫组织化学和MRI的多组学数据,分析肿瘤微环境中γδT细胞的特征,阐明γδT细胞通过直接细胞毒性产生抗肿瘤作用的分子机制。高丰度的γδT细胞与宫颈癌的预后呈正相关,且γδT细胞浸润水平高的患者可能更适合免疫疗法。结果表明MRI影像组学特征可以作为γδT细胞浸润水平的指标,有助于宫颈癌患者的个体化治疗。

目前应用于宫颈癌的影像组学模型研究普遍存在一定的局限性。使用联合模型的研究之间所纳入的临床特征有较大的差异,且现有研究以单中心回顾性研究为主,多数研究的样本量较少,且不同的研究之间存在较大的方法学差异,由于尚不完全清楚这些方法学差异的影响,很难对这些影像组学模型报告的效能指标直接进行比较26。因此需要多中心研究和外部队列的研究验证来提高影像组学模型的可重复性和稳定性,使预测模型实现临床转化,在治疗中采取更有针对性和个体化的策略,改善子宫颈癌患者的预后。

综上,影像组学可以提供有关肿瘤特征的大量定量信息,在子宫颈癌的分期、病理组织学分级、LNM、LVSI及预后预测中均展现了实用价值。也有研究提供了新的思路,使影像组学通过预测生物标志物的表达水平和肿瘤免疫微环境中重要的免疫细胞含量来预测宫颈癌的预后。这些影像组学模型绝大多数表现出了优于临床病理特征的预测效能。影像组学与结合了FIGO分期、肿瘤体积、浸润深度、LNM的状态和位置、放疗剂量等临床病理因素的联合模型往往具有更高的预测效能。

引用本文:

林治辰, 江萍, 陈泓钵, 等. 影像组学预测模型在宫颈癌诊断及预后中应用的研究进展[J]. 中华医学杂志, 2024, 104(30): 2871-2874. DOI: 10.3760/cma.j.cn112137-20240401-00747.

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参考文献
[1]
BrayF, LaversanneM, SungH, et al. Global cancer statistics 2022: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries[J]. CA Cancer J Clin, 2024, 74(3):229-263. DOI: 10.3322/caac.21834.
[2]
KloppAH, EifelPJ. Biological predictors of cervical cancer response to radiation therapy[J]. Semin Radiat Oncol, 2012, 22(2):143-150. DOI: 10.1016/j.semradonc.2011.12.009.
[3]
RosePG, JavaJ, WhitneyCW, et al. Nomograms predicting progression-free survival, overall survival, and pelvic recurrence in locally advanced cervical cancer developed from an analysis of identifiable prognostic factors in patients from NRG oncology/gynecologic oncology group randomized trials of chemoradiotherapy[J]. J Clin Oncol, 2015, 33(19):2136-2142. DOI: 10.1200/JCO.2014.57.7122.
[4]
ZhaoX, WangX, ZhangB, et al. Classifying early stages of cervical cancer with MRI-based radiomics[J]. Magn Reson Imaging, 2022, 89:70-76. DOI: 10.1016/j.mri.2022.03.002.
[5]
AiY, ZhuH, XieC, et al. Radiomics in cervical cancer: current applications and future potential[J]. Crit Rev Oncol Hematol, 2020, 152:102985. DOI: 10.1016/j.critrevonc.2020.102985.
[6]
GilliesRJ, KinahanPE, HricakH. Radiomics: images are more than pictures, they are data[J]. Radiology, 2016, 278(2):563-577. DOI: 10.1148/radiol.2015151169.
[7]
FangJ, ZhangB, WangS, et al. Association of MRI-derived radiomic biomarker with disease-free survival in patients with early-stage cervical cancer[J]. Theranostics, 2020, 10(5):2284-2292. DOI: 10.7150/thno.37429.
[8]
ZhangY, LiuL, ZhangK, et al. Nomograms combining clinical and imaging parameters to predict recurrence and disease-free survival after concurrent chemoradiotherapy in patients with locally advanced cervical cancer[J]. Acad Radiol, 2023, 30(3):499-508. DOI: 10.1016/j.acra.2022.08.002.
[9]
WangM, PeruchoJ, VardhanabhutiV, et al. Radiomic features of T2-weighted imaging and diffusion kurtosis imaging in differentiating clinicopathological characteristics of cervical carcinoma[J]. Acad Radiol, 2022, 29(8):1133-1140. DOI: 10.1016/j.acra.2021.08.018.
[10]
KiddEA, SiegelBA, DehdashtiF, et al. Lymph node staging by positron emission tomography in cervical cancer: relationship to prognosis[J]. J Clin Oncol, 2010, 28(12):2108-2113. DOI: 10.1200/JCO.2009.25.4151.
[11]
BaderAA, WinterR, HaasJ, et al. Where to look for the sentinel lymph node in cervical cancer[J]. Am J Obstet Gynecol, 2007, 197(6):678.e1-e7. DOI: 10.1016/j.ajog.2007.09.053.
[12]
WangT, LiYY, MaNN, et al. A MRI radiomics-based model for prediction of pelvic lymph node metastasis in cervical cancer[J]. World J Surg Oncol, 2024, 22(1):55. DOI: 10.1186/s12957-024-03333-5.
[13]
SongJ, HuQ, MaZ, et al. Feasibility of T2WI-MRI-based radiomics nomogram for predicting normal-sized pelvic lymph node metastasis in cervical cancer patients[J]. Eur Radiol, 2021, 31(9):6938-6948. DOI: 10.1007/s00330-021-07735-x.
[14]
LuciaF, BourbonneV, PleyersC, et al. Multicentric development and evaluation of (18)F-FDG PET/CT and MRI radiomics models to predict para-aortic lymph node involvement in locally advanced cervical cancer[J]. Eur J Nucl Med Mol Imaging, 2023, 50(8):2514-2528. DOI: 10.1007/s00259-023-06180-w.
[15]
Pérez-MoralesJ, TunaliI, StringfieldO, et al. Peritumoral and intratumoral radiomic features predict survival outcomes among patients diagnosed in lung cancer screening[J]. Sci Rep, 2020, 10(1):10528. DOI: 10.1038/s41598-020-67378-8.
[16]
WuQ, WangS, ChenX, et al. Radiomics analysis of magnetic resonance imaging improves diagnostic performance of lymph node metastasis in patients with cervical cancer[J]. Radiother Oncol, 2019, 138:141-148. DOI: 10.1016/j.radonc.2019.04.035.
[17]
PaderaTP, KadambiA, di TomasoE, et al. Lymphatic metastasis in the absence of functional intratumor lymphatics[J]. Science, 2002, 296(5574):1883-1886. DOI: 10.1126/science.1071420.
[18]
LiK, SunH, LuZ, et al. Value of [(18)F]FDG PET radiomic features and VEGF expression in predicting pelvic lymphatic metastasis and their potential relationship in early-stage cervical squamous cell carcinoma[J]. Eur J Radiol, 2018, 106:160-166. DOI: 10.1016/j.ejrad.2018.07.024.
[19]
WangS, LiuX, WuY, et al. Habitat-based radiomics enhances the ability to predict lymphovascular space invasion in cervical cancer: a multi-center study[J]. Front Oncol, 2023, 13:1252074. DOI: 10.3389/fonc.2023.1252074.
[20]
WuJ, CaoG, SunX, et al. Intratumoral spatial heterogeneity at perfusion MR imaging predicts recurrence-free survival in locally advanced breast cancer treated with neoadjuvant chemotherapy[J]. Radiology, 2018, 288(1):26-35. DOI: 10.1148/radiol.2018172462.
[21]
KoelzerVH, ZlobecI, LugliA. Tumor budding in colorectal cancer--ready for diagnostic practice?[J]. Hum Pathol, 2016, 47(1):4-19. DOI: 10.1016/j.humpath.2015.08.007.
[22]
ChongGO, Jee-Young ParkN, HanHS, et al. Intratumoral budding: a novel prognostic biomarker for tumor recurrence and a potential predictor of nodal metastasis in uterine cervical cancer[J]. Eur J Surg Oncol, 2021, 47(12):3182-3187. DOI: 10.1016/j.ejso.2021.07.009.
[23]
ChongGO, ParkSH, JeongSY, et al. Prediction model for tumor budding status using the radiomic features of F-18 fluorodeoxyglucose positron emission tomography/computed tomography in cervical cancer[J]. Diagnostics (Basel), 2021, 11(8):1517. DOI: 10.3390/diagnostics11081517.
[24]
ChongGO, ParkSH, ParkNJ, et al. Predicting tumor budding status in cervical cancer using MRI radiomics: linking imaging biomarkers to histologic characteristics[J]. Cancers (Basel), 2021, 13(20):5140. DOI: 10.3390/cancers13205140.
[25]
ZhengX, LiC, ZhangL, et al. Combining intravoxel incoherent motion diffusion weighted imaging and texture analysis for a nomogram to predict early treatment response to concurrent chemoradiotherapy in cervical cancer patients[J]. J Oncol, 2021, 2021:9345353. DOI: 10.1155/2021/9345353.
[26]
ZhangX, ZhaoJ, ZhangQ, et al. MRI-based radiomics value for predicting the survival of patients with locally advanced cervical squamous cell cancer treated with concurrent chemoradiotherapy[J]. Cancer Imaging, 2022, 22(1):35. DOI: 10.1186/s40644-022-00474-2.
[27]
SunC, TianX, LiuZ, et al. Radiomic analysis for pretreatment prediction of response to neoadjuvant chemotherapy in locally advanced cervical cancer: a multicentre study[J]. EBio Medicine, 2019, 46:160-169. DOI: 10.1016/j.ebiom.2019.07.049.
[28]
YusufalyTI, ZouJ, NelsonTJ, et al. Improved prognosis of treatment failure in cervical cancer with nontumor PET/CT radiomics[J]. J Nucl Med, 2022, 63(7):1087-1093. DOI: 10.2967/jnumed.121.262618.
[29]
LuciaF, VisvikisD, DesseroitMC, et al. Prediction of outcome using pretreatment (18)F-FDG PET/CT and MRI radiomics in locally advanced cervical cancer treated with chemoradiotherapy[J]. Eur J Nucl Med Mol Imaging, 2018, 45(5):768-786. DOI: 10.1007/s00259-017-3898-7.
[30]
LuciaF, VisvikisD, VallièresM, et al. External validation of a combined PET and MRI radiomics model for prediction of recurrence in cervical cancer patients treated with chemoradiotherapy[J]. Eur J Nucl Med Mol Imaging, 2019, 46(4):864-877. DOI: 10.1007/s00259-018-4231-9.
[31]
ChoiCH, SongSY, ChoiJJ, et al. Prognostic significance of VEGF expression in patients with bulky cervical carcinoma undergoing neoadjuvant chemotherapy[J]. BMC Cancer, 2008, 8:295. DOI: 10.1186/1471-2407-8-295.
[32]
MarquinaG, ManzanoA, CasadoA. Targeted agents in cervical cancer: beyond bevacizumab[J]. Curr Oncol Rep, 2018, 20(5):40. DOI: 10.1007/s11912-018-0680-3.
[33]
DengX, LiuM, SunJ, et al. Feasibility of MRI-based radiomics features for predicting lymph node metastases and VEGF expression in cervical cancer[J]. Eur J Radiol, 2021, 134:109429. DOI: 10.1016/j.ejrad.2020.109429.
[34]
PengJ, QiS, WangP, et al. Meta-analysis of downregulated E-cadherin as a poor prognostic biomarker for cervical cancer[J]. Future Oncol, 2016, 12(5):715-726. DOI: 10.2217/fon.15.332.
[35]
LiXR, JinJJ, YuY, et al. PET-CT radiomics by integrating primary tumor and peritumoral areas predicts E-cadherin expression and correlates with pelvic lymph node metastasis in early-stage cervical cancer[J]. Eur Radiol, 2021, 31(8):5967-5979. DOI: 10.1007/s00330-021-07690-7.
[36]
LiX, XuC, YuY, et al. Prediction of lymphovascular space invasion using a combination of tenascin-C, cox-2, and PET/CT radiomics in patients with early-stage cervical squamous cell carcinoma[J]. BMC Cancer, 2021, 21(1):866. DOI: 10.1186/s12885-021-08596-9.
[37]
ZhangZ, LiX, SunH. Development of machine learning models integrating PET/CT radiomic and immunohistochemical pathomic features for treatment strategy choice of cervical cancer with negative pelvic lymph node by mediating COX-2 expression[J]. Front Physiol, 2022, 13:994304. DOI: 10.3389/fphys.2022.994304.
[38]
BramanN, PrasannaP, WhitneyJ, et al. Association of peritumoral radiomics with tumor biology and pathologic response to preoperative targeted therapy for HER2 (ERBB2)-positive breast cancer[J]. JAMA Netw Open, 2019, 2(4):e192561. DOI: 10.1001/jamanetworkopen.2019.2561.
[39]
LiJ, ShiZ, LiuF, et al. XGBoost classifier based on computed tomography radiomics for prediction of tumor-infiltrating CD8+T-Cells in patients with pancreatic ductal adenocarcinoma[J].Frontiers in Oncology, 2021, 11:1714. DOI: 10.3389/fonc.2021.671333.
 
 
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