论著
妊娠期血清同型半胱氨酸浓度与MTHFR基因C677T位点多态性及红细胞叶酸水平的相关性分析
中华妇幼临床医学杂志(电子版), 2020,16(3) : 362-367. DOI: 10.3877/cma.j.issn.1673-5250.2020.03.017
摘要
目的

探讨正常孕妇妊娠期血清同型半胱氨酸(Hcy)浓度与MTHFR基因C677T位点多态性及红细胞叶酸(RBCF)水平的相关性。

方法

选择2018年1月至2019年4月,在眉山市妇幼保健院进行常规产前检查的483例早孕期正常孕妇为研究对象。根据其MTHFR基因C677T位点的CC、CT与TT基因型,将其分为CC组、CT组与TT组。采用荧光定量PCR法,检测受试者MTHFR基因C677T位点多态性;采用循环酶法、电化学发光法,分别检测受试者早、中、晚孕期血清Hcy浓度与RBCF水平。对3组受试者早、中、晚孕期的血清Hcy浓度与RBCF水平进行比较,采用单因素方差分析,而二者的相关性分析,采用直线回归分析。3组受试者年龄、孕龄、孕次、产次等一般临床资料比较,差异均无统计学意义(P>0.05)。本研究遵循的程序符合《世界医学协会赫尔辛基宣言》要求,与所有受试者签署临床研究知情同意书。

结果

①这483例受试者的MTHFR基因C677T位点的CC、CT、TT基因型,分别为159例、237例、87例,分别纳入CC组、CT组与TT组;其基因型表达频率分别为32.9%、49.1%与18.0%;C、T等位基因频率分别为57.5%与42.5%。②483例受试者早、中、晚孕期血清Hcy浓度分别为(5.2±2.4)、(3.8±2.0)、(4.8±2.5) μmol/L,RBCF水平分别为(965±190)、(1 157±189)、(1 179±225) ng/mL,早、中、晚孕期血清Hcy浓度、RBCF水平分别比较,差异均有统计学意义(F=44.542、163.830,P<0.001)。CC组、CT组、TT组受试者早孕期血清Hcy浓度及早、中、晚孕期RBCF水平分别比较,差异均有统计学意义(F=8.925、9.181、19.757、21.877,P<0.001)。③直线回归分析结果显示,483例受试者早、中、晚孕期血清Hcy浓度与其RBCF水平呈线性负相关关系,建立的直线回归方程为y=-0.003x+7.986(R2=0.082,F=129.669,P<0.001),其中,x为RBCF水平(ng/mL),y为血清Hcy浓度(μmol/L)。

结论

正常孕妇妊娠期血清Hcy浓度与MTHFR基因C677T位点多态性及RBCF水平相关。对育龄女性进行MTHFR基因C677T位点多态性筛查、血清Hcy浓度和RBCF水平监测,对围孕期保健具有重要指导意义。

引用本文: 刘绪义, 秦琦, 辛亚兰, 等.  妊娠期血清同型半胱氨酸浓度与MTHFR基因C677T位点多态性及红细胞叶酸水平的相关性分析 [J/OL] . 中华妇幼临床医学杂志(电子版), 2020, 16(3) : 362-367. DOI: 10.3877/cma.j.issn.1673-5250.2020.03.017.
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红细胞叶酸(red blood cell folate,RBCF)检测主要用于巨幼细胞性贫血的诊断。同型半胱氨酸(homocysteine,Hcy)是一种具有细胞毒性的含硫氨基酸,是甲硫氨酸代谢的中间产物。围孕期Hcy浓度升高,可导致胎儿神经管畸形、先天性心脏病、唐氏综合征、唇腭裂等出生缺陷,流产、早产、胎儿宫内生长受限、低出生体重等不良妊娠结局,以及妊娠期高血压疾病、妊娠期糖尿病等疾病[1]。亚甲基四氢叶酸还原酶(methylenetetrahydrofolate reductase,MTHFR)是叶酸代谢过程中的关键酶,可催化5,10-亚甲基四氢叶酸生成5-甲基四氢叶酸,是Hcy转化为甲硫氨酸的必要条件[2]MTHFR基因C677T位点多态性,是叶酸代谢的重要基因多态性位点,该位点的不同基因型可决定MTHFR活性,从而影响体内叶酸代谢和血清Hcy浓度[3]。胎盘血管疾病患者血清Hcy浓度升高,RBCF水平降低,叶酸代谢相关基因MTHFR基因C677T位点纯合突变率增高[4]。这提示,MTHFR基因中第677位核苷酸发生C-T突变,可能是导致胎盘血管疾病的危险因素。高Hcy血症伴血栓高危因素,可导致神经管缺陷发病风险增加2~6倍[5]。本研究对正常孕妇不同妊娠期血清Hcy浓度与MTHFR基因C677T位点多态性及RBCF水平的相关性进行分析,旨在探讨血清Hcy浓度影响因素,为临床监测和管理孕妇血清Hcy浓度提供参考。现将研究结果报道如下。

1 资料与方法
1.1 研究对象及分组

选择2018年1月至2019年4月,在眉山市妇幼保健院进行常规产前检查的483例早孕期正常孕妇为研究对象。根据受试者MTHFR基因C677T位点的CC、CT与TT基因型,将其分为CC组(n=159)、CT组(n=237)与TT组(n=87)。3组受试者年龄、孕龄、孕次、产次等一般临床资料比较,差异均无统计学意义(P>0.05)。本研究遵循的程序符合《世界医学协会赫尔辛基宣言》要求,与所有受试者签署临床研究知情同意书。

1.2 方法
1.2.1 纳入与排除标准

本研究纳入标准:无不良孕产史和妊娠合并症者;同意采集口腔黏膜细胞进行基因检测,于早、中、晚孕期抽取肘静脉血进行血清Hcy浓度和RBCF水平检测者;临床病例资料完整者。排除标准:有胃、肠道切除术史者;合并严重消化系统疾病及肝、肾功能不全者;罹患冠心病、糖尿病、甲状腺疾病、恶性肿瘤、血液系统或免疫系统疾病者;不配合参加本研究者。

1.2.2 血清Hcy浓度与RBCF水平检测

于早孕期(0~13+6孕周)、中孕期(14~27+6孕周)及晚孕期(≥28孕周),采集每例受试者的空腹肘静脉血3 mL,置于含二氧化硅(SiO2)促凝剂的采血管(江苏康健医疗用品有限公司)内备用。于室温下,采用TD-5G型离心机(四川蜀科仪器有限公司),对血样离心4 min(4 000 r/min,离心半径为16.5 cm)后,留取上层血清,置于-20 ℃冰箱保存。采用循环酶法,使用AU680型贝克曼全自动生化仪[贝克曼库尔特商贸(中国)有限公司],以及血清Hcy检测试剂盒(批号:17-1222、18-0206、18-0517、18-0927、18-1113、18-0731、18-1218、18-1218,北京九强生物技术股份有限公司),检测受试者血清Hcy浓度。于早孕期(0~13+6孕周)、中孕期(14~27+6孕周)及晚孕期(≥28孕周),采集每例受试者的空腹肘静脉血2 mL,置于含乙二胺四乙酸二钾抗凝剂的采血管(江苏康健医疗用品有限公司)内,并保存于-20 ℃冰箱。取100 μL血样,充分混匀后,与3 mL RBCF检测试剂盒(批号:24051701、24051703、33299601、39019001、33299604,德国罗氏诊断有限公司)轻轻混匀,避免产生气泡,于20~25 ℃条件下放置(90±15) min,并于2 h内采用cobas e411电化学发光全自动免疫分析仪(德国罗氏诊断有限公司),检测受试者RBCF水平。所有检测步骤均严格按照上述2种试剂盒的说明书进行操作。

1.2.3  MTHFR基因C677T位点多态性检测

采集每例受试者口腔黏膜脱落细胞,使用硅胶吸附方法,提取其基因组DNA,使用ABI 7900型荧光定量PCR仪(美国Applied Biosystems公司)及MTHFR基因多态性检测试剂盒(批号:862905632、863087710、863254497,美国Applied Biosystem公司),检测该基因组DNA的MTHFR基因C677T位点多态性。Taqman-MGB探针为GAAAAGCTGCGTGATGATGAAATCG[G/A]CTCCCGCAGACACCTTCTCCTTCAA。PCR反应体系总体积为10.0 μL,包含上述基因组DNA含量为20 ng/L的DNA模板1.0 μL,20×Taqman-MGB探针0.5 μL,2×Taqman Universal MasterMix 5.0 μL,去离子水3.5 μL。PCR反应条件为95 ℃预变性10 min;92 ℃变性15 s,60 ℃退火1 min,共计20个循环;89 ℃变性15 s,60 ℃退火90 s,共计30个循环。PCR反应结束后,在ABI 7900型荧光定量PCR仪上,读取每个样品孔终点荧光,利用Sequence Detection Software软件确定MTHFR基因分型结果。

1.3 统计学分析方法

采用SPSS 19.0统计学软件,对本研究数据进行统计学分析。采用Ssize软件,确定满足本研究统计检验的最小样本量。对于呈正态分布的计量资料,如受试者早、中、晚孕期血清Hcy浓度与RBCF水平等,采用±s表示,3组比较,采用单因素方差分析。受试者早、中、晚孕期血清Hcy浓度与其RBCF水平的相关性分析,采用直线回归分析。所有统计学检验采用双侧检验,以P<0.05表示差异有统计学意义。

2 结果
2.1  MTHFR基因C677T位点多态性基因型和等位基因频率分析

本研究483例孕妇的MTHFR基因C677T位点多态性分布,经Hardy-Weinberg遗传平衡检验结果显示,符合Hardy-Weinberg遗传平衡定律(χ2=0.007,P=0.936)。这483例孕妇的MTHFR基因C677T的CC、CT、TT基因型,分别为159例、237例、87例,分别纳入CC组、CT组与TT组;CC、CT、TT基因型频率分别为32.9%、49.1%与18.0%;C、T等位基因频率分别为57.5%与42.5%。

2.2 3组受试者妊娠期血清Hcy浓度和RBCF水平比较

本研究483例受试者中,早、中、晚孕期血清Hcy浓度分别为(5.2±2.4)、(3.8±2.0)、(4.8±2.5) μmol/L,RBCF水平分别为(965±190)、(1 157±189)、(1 179±225) ng/mL,早、中、晚孕期血清Hcy浓度、RBCF水平分别比较,差异均有统计学意义(F=44.542、163.830,P<0.001)。

3组受试者早孕期血清Hcy浓度及早、中、晚孕期RBCF水平分别比较,差异均有统计学意义(P<0.05);3组受试者中、晚孕期血清Hcy浓度分别比较,差异均无统计学意义(P>0.05)。CC组受试者早、中、晚孕期血清Hcy浓度、RBCF水平分别比较,差异均有统计学意义(P<0.05);CT组、TT组的这2个指标早、中、晚孕期分别比较,差异亦均有统计学意义(P<0.05)。3组受试者早、中、晚孕期血清Hcy浓度与RBCF水平比较,见表1

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表1

3组正常孕妇早、中、晚孕期血清Hcy浓度与RBCF水平比较(±s)

表1

3组正常孕妇早、中、晚孕期血清Hcy浓度与RBCF水平比较(±s)

组别例数血清Hcy浓度(μmol/L)RBCF水平(ng/mL)
早孕期中孕期晚孕期FP早孕期中孕期晚孕期FP
CC组1594.9±2.13.6±1.94.7±2.316.246<0.001953±1661 140±1691 154±20760.711<0.001
CT组2375.1±2.23.9±2.04.8±2.518.959<0.001945±1811 127±1881 145±22473.833<0.001
TT组876.1±3.14.1±2.25.1±3.111.202<0.0011 042±2311 267±1881 317±20942.163<0.001
F8.9251.8141.0459.18119.75721.877
P<0.0010.1640.352<0.001<0.001<0.001

注:CC、CT、TT组分别为MTHFR基因C677T位点基因型分别为CC、CT、TT基因型的正常孕妇。Hcy为同型半胱氨酸,RBCF为红细胞叶酸

2.3 血清Hcy浓度与RBCF水平相关性分析

采用直线回归分析方法,对483例受试者早、中、晚孕期血清Hcy浓度与RBCF水平进行相关性分析的结果显示,二者呈线性负相关关系,建立的直线回归方程为y =-0.003x +7.986(R2=0.082,F=129.669,P<0.001),其中x为RBCF水平(ng/mL),y为血清Hcy浓度(μmol/L)。本研究483例受试者早、中、晚孕期血清Hcy浓度与RBCF水平直线回归关系散点图,见图1

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图1
483例正常孕妇早、中、晚孕期血清Hcy浓度与RBCF水平直线回归关系散点图
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注:Hcy为同型半胱氨酸,RBCF为红细胞叶酸

图1
483例正常孕妇早、中、晚孕期血清Hcy浓度与RBCF水平直线回归关系散点图
3 讨论

Hcy是甲硫氨酸代谢的中间产物,又被称为"邪恶氨基酸"。体内蓄积Hcy,可降低机体甲基化水平,损伤血管内皮细胞,是导致心血管、神经系统疾病的危险因素[6,7,8]。孕妇血清Hcy浓度与母婴健康密切相关[9],可为孕前保健和优生优育提供参考,并可作为孕妇RBCF水平评价指标,以及妊娠相关疾病与胎儿出生缺陷预测指标[10,11,12]。血清Hcy浓度受年龄、性别、遗传、饮食、药物、疾病状态等多种因素影响。妊娠期是特殊生理阶段,孕妇Hcy浓度对血管损伤的敏感性明显增加。本研究结果显示,483例受试者早、中、晚孕期血清Hcy浓度分别为(5.2±2.4)、(3.8±2.0)、(4.8±2.5) μmol/L,3者比较,差异有统计学意义(P<0.05);CC组受试者早、中、晚孕期血清Hcy浓度比较,差异均有统计学意义(P<0.05);CT组、TT组早、中、晚孕期血清Hcy浓度分别比较,差异亦均有统计学意义(P<0.05)。孕妇血清Hcy浓度,早孕期至中孕期呈逐渐下降趋势,而中孕期至晚孕期则呈逐渐升高趋势。Murphy等[13]认为,早孕期至中孕期血清Hcy浓度降低,可能与循环血容量增加、血液稀释及雌激素水平升高有关;另外,胎儿对必需氨基酸的需求增加,使Hcy过度甲基化,也可导致血清Hcy浓度降低[14]。骆婵珍等[15]体外实验研究结果显示,Hcy可增强子宫肌层自发性收缩,因此推测,孕妇晚孕期血清Hcy浓度逐渐升高,可能与促进分娩时子宫收缩有关。

MTHFR基因编码的MTHFR是叶酸代谢过程中的关键酶。一项对墨西哥风湿性关节炎患者的研究结果显示,MTHFR基因C677T位点TT基因型受试者血清Hcy浓度,较CC基因型者高11%~26%[2]。本研究483例正常孕妇中,MTHFR基因C677T位点TT基因型频率为18.0%,T等位基因频率为42.5%,均低于山东淄博市的43.6%与65.6%[16]、河北廊坊市的37.8%与60.9%[17]、辽宁沈阳市的31.3%与56.6%[18],高于广西南宁市的7.7%与21.9%[19]、广东佛山市的5.6%与21.5%[20];CC、CT、TT组受试者血清早孕期血清Hcy浓度及早、中、晚孕期RBCF水平分别比较,差异均有统计学意义(P<0.05),TT组受试者早孕期血清Hcy浓度高于CC组。

叶酸作为MTHFR底物,在机体Hcy代谢中具有重要意义,高水平叶酸具有对抗转甲基循环障碍作用。人体血清或RBCF水平,可作为叶酸营养状态评价指标。RBCF水平代表体内循环状态的叶酸水平,但是易受到膳食等因素影响。RBCF水平与红细胞更新过程有关,可反映人体内叶酸长期变化状态和叶酸储备情况,故本研究检测的是RBCF水平,分析其与血清Hcy浓度的相关性。对本研究受试者早、中、晚孕期血清Hcy浓度与RBCF水平的直线回归分析结果显示,二者呈线性负相关关系y=-0.003x+7.986(R2=0.082,F=129.669,P<0.001),其中x为RBCF水平(ng/mL),y为血清Hcy浓度(μmol/L)。这表明,在其他因素不变情况下,RBCF水平可解释正常孕妇血清Hcy浓度个体差异的8.2%。

综上所述,正常孕妇不同妊娠期血清Hcy浓度与MTHFR基因C677T位点多态性、RBCF水平相关。对育龄女性进行MTHFR基因C677T位点多态性筛查、血清Hcy浓度和RBCF水平监测,并合理补充叶酸,避免不良妊娠结局的发生,具有重要临床意义。

利益冲突
利益冲突

所有作者均声明不存在利益冲突

参考文献
[1]
JiajinL, ShuyanC, YingW, et al. Genetic polymorphisms in folate metabolism as risk for Down syndrome in the southern China [J]. J Matern Fetal Neonatal Med, 2019, 32(12): 2030-2035. DOI: 10.1080/14767058.2018.1424818.
[2]
Gonzalez-MercadoMG, RivasF, GallegosarreolaP, et al. MTRR A66G, RFC1 G80A, and MTHFR C677T and A1298C polymorphisms and disease activity in Mexicans with rheumatoid arthritis treated with methotrexate [J]. Genet Test Mol Biomarkers, 2017, 21(11): 698-704. DOI: 10.1089/gtmb.2017.0124.
[3]
GeorgeAK, HommeRP, MajumderA, et al. Hydrogen sulfide intervention in cystathionine-β-synthase mutant mouse helps restore ocular homeostasis [J]. Int J Ophthalmol, 2019, 12(5): 754-764. DOI: 10.18240/ijo.2019.05.09.
[4]
WaśkiewiczA, PiotrowskiW, BrodaG, et al. Impact of MTHFR C677T gene polymorphism and vitamins intake on homocysteine concentration in the Polish adult population [J]. Kardiol Pol, 2011, 69(12): 1259-1264.
[5]
WangY, LiuY, JiW, et al. Analysis of MTR and MTRR polymorphisms for neural tube defects risk association [J]. Medicine (Baltimore), 2015, 94(35): e1367. DOI: 10.1097/MD.0000000000001367.
[6]
张晓燕牛秀敏. 同型半胱氨酸与妊娠[J]. 中华妇产科杂志2003, 38(5): 316. DOI: 10.3760/j.issn:0529-567X.2003.05.023.
ZhangXY, NiuXM. Homocysteine and pregnancy [J]. Chin J Obstet Gynecol, 2003, 38(5): 316. DOI: 10.3760/j.issn:0529-567X.2003.05.023.
[7]
LaskowskaM, LaskowskaK, OleszczukJ. Differences in the association between maternal serum homocysteine and ADMA levels in women with pregnancies complicated by preeclampsia and/or intrauterine growth restriction [J]. Hypertens Pregnancy, 2013, 32(1): 83-93. DOI: 10.3109/10641955.2012.751993.
[8]
杜景云杨新颖龚波. 血浆同型半胱氨酸和叶酸及MTHFR基因多态性与早产的相关性[J]. 中山大学学报(医学科学版), 2013, 34(6): 894-899.
DuJY, YangXY, GongB, et al. Relationship of plasma homocysteine levels, folate levels and MTHFR gene polymorphisms with premature delivery [J]. J Sun Yat-sen Univ (Med Sci), 2013, 34(6): 894-899.
[9]
孙曼宋薇薇. 同型半胱氨酸与妊娠相关疾病关系研究进展[J]. 中国实用妇科与产科杂志2016, 32(8): 814-816. DOI: 10.7504/fk2016070125.
SunM, SongWW. Research progress of relation between homocysteine and diseases related with pregnancy [J]. Chin J Pract Gynecol Obstet, 2016, 32(8): 814-816. DOI: 10.7504/fk2016070125.
[10]
ChakrabonyP, GoswamiSK, RajaniS, et al. Recurrent pregnancy loss in polycystic ovary syndrome: role of hyperhomocysteinemia and insulin resistance [J]. PLoS One, 2013, 8(5): e64446. DOI: 10.1371/journal.pone.0064446.
[11]
李海川候李俞谭胡. 孕前、孕中及产后同型半胱氨酸水平变化及临床意义[J]. 国际检验医学杂志2011, 32(19): 2295-2296. DOI: 10.3969/j.issn.1673-4130.2011.19.069.
LiHC, HouLY, TanH, et al. Changes and clinical significance of homocysteine levels before, during and after pregnancy [J]. Int J Lab Med, 2011, 32(19): 2295-2296. DOI: 10.3969/j.issn.1673-4130.2011.19.069.
[12]
HuangT, HuX, KhanN, et al. Effect of polyunsaturated fatty acids on homocysteine metabolism through regulating the gene expressions involved in methionine metabolism [J]. Sci World J, 2013, 2013: 931626. DOI: 10.1155/2013/931626.
[13]
MurphyMM, ScottJM, ArijaV, et al. Maternal homocysteine before conception and throughout pregnancy predicts fetal homocysteine and birth weight [J]. Clin Chem, 2004, 50(8): 1406-1412. DOI: 10.1373/clinchem.2004.032904.
[14]
MurphyMM, ScottJM, MolloyAM, et al. Association between estradiol and homocysteine fluctuations during pregnancy [J]. J Inherit Metab Dis, 2003, 26(Supp1): 34.
[15]
骆婵珍万波吴瑕正常妊娠妇女血清同型半胱氨酸水平调查[J].检验医学2014, 29(7): 723-726. DOI: 10.3969/j.issn.1673-8640.2014.07.007.
LuoCZ, WanB, WuX, et al. The serum homocysteine concentrations among women with normal pregnancy [J]. Laborat Med, 2014, 29(7): 723-726. DOI: 10.3969/j.issn.1673-8640.2014.07.007.
[16]
从玉英鲁衍强芮欣忆. 淄博市汉族女性亚甲基四氢叶酸还原酶和甲硫氨酸合成酶还原酶基因多态性分布研究[J]. 现代妇产科进展2012, 21(10): 779-781.
CongYY, LuYQ, RuiXY, et al. Study on the methylenetetrahydrofolate reductase and methionine synthase reductase polymorphism among the Han women in Zibo City [J]. Prog Obstet Gynecol, 2012, 21(10): 779-781.
[17]
顾小红鲁衍强路广平. 河北省廊坊市区汉族女性MTHFRMTRR基因多态性调查[J]. 中国妇幼保健2018, 33(18): 4221-4223. DOI: 10.7620/zgfybj.j.issn.1001-4411.2018.18.45.
GuXH, LuYQ, LuGP, et al. Survey of MTHFR and MTRR gene polymorphisms of Han women in Langfang City, Hebei Province [J]. Matern Child Health Care Chin, 2018, 33 (18): 4221-4223. DOI: 10.7620/zgfybj.j.issn.1001-4411.2018.18.45.
[18]
庞静鲁衍强付敏. 沈阳市汉族与满族女性5,10-亚甲基四氢叶酸还原酶、甲硫氨酸合成酶还原酶基因的单核苷酸多态性分布特征[J]. 中国妇幼保健2019, 34(5): 1092-1095. DOI: 10.7620/zgfybj.j.issn.1001-4411.2019.05.41.
PangJ, LuYQ, FuM, et al. Distribution characteristics of single nucleotide polymorphisms of 5,10-methylenetetrahydrofolate reductase and methionine synthase reductase genes in Han and Manchu women in Shenyang [J]. Matern Child Health Care Chin, 2019, 34 (5): 1092-1095. DOI: 10.7620/zgfybj.j.issn.1001-4411.2019.05.41.
[19]
沈寅琛鲁衍强李瑛. 南宁地区汉族女性MTHFRMTRR基因多态性研究[J]. 中国优生与遗传杂志2015, 23(7): 18-19.
ShenYC, LuYQ, LiY, et al. Polymorphisms of MTHFR and MTRR genes in Han women in Nanning area [J]. Chin J Birth Health Hered, 2015, 23 (7): 18-19.
[20]
郭晓玲鲁衍强杨兴坤. 佛山市汉族人群叶酸代谢通路关键酶基因MTHFR C677T多态性分布特征调查[J]. 实用预防医学2019, 26(3): 290-292. DOI: 10.3969/j.issn.1006-3110.2019.03.010.
GuoXL, LuYQ, YangXK, et al. Distribution characteristics of single nucleotide polymorphisms of folic acid metabolism pathway key enzyme gene MTHFR C677T among the Han population in Foshan City [J]. Pract Prev Med, 2019, 26 (3): 290-292. DOI: 10.3969/j.issn.1006-3110.2019.03.010.
 
 
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