综述
聚多巴胺多功能纳米造影剂在肿瘤分子影像中的应用进展
国际生物医学工程杂志, 2022,45(1) : 80-85. DOI: 10.3760/cma.j.cn121382-20210906-00117
摘要

开发具有高灵敏度、高特异性、低毒性的多功能纳米造影剂,使其能精准定位肿瘤,实时反映肿瘤生物学信息,是推动肿瘤分子影像技术发展、实现肿瘤早期及精准诊疗的核心。聚多巴胺(PDA)纳米材料是一种结构与天然真黑素极其相似的仿生材料,其聚合方法简单,可通过金属配位、π-π堆积、静电吸附等多种方式实现造影组件及靶向配体等功能分子的可控组装,具有良好的生物相容性和生物降解性,展现出巨大的临床转化潜力,已被广泛应用于肿瘤分子影像的临床前研究。综述了PDA纳米颗粒的合成方法、功能化修饰和组装策略及其在肿瘤分子影像学中的应用现状和研究进展,并对其发展趋势进行展望,有助于推动其在肿瘤分子影像领域中的应用。

引用本文: 李雪, 吴梦琳, 郭琪, 等.  聚多巴胺多功能纳米造影剂在肿瘤分子影像中的应用进展 [J] . 国际生物医学工程杂志, 2022, 45(1) : 80-85. DOI: 10.3760/cma.j.cn121382-20210906-00117.
参考文献导出:   Endnote    NoteExpress    RefWorks    NoteFirst    医学文献王
扫  描  看  全  文

正文
作者信息
基金 0  关键词  0
English Abstract
评论
阅读 0  评论  0
相关资源
引用 | 论文 | 视频

版权归中华医学会所有。

未经授权,不得转载、摘编本刊文章,不得使用本刊的版式设计。

除非特别声明,本刊刊出的所有文章不代表中华医学会和本刊编委会的观点。

0 引言

美国癌症学会统计结果显示,近年来我国恶性肿瘤的发病率及病死率居全球首位[1]。因此,发展新型现代生物医学技术以实现肿瘤的早期诊断及精准监测是提高其治愈率、改善患者生存质量的关键。肿瘤分子影像技术是近年发展起来的新型诊断技术,能精准定位肿瘤,实现肿瘤特定生理、病理变化的实时、无创、动态在体成像,为肿瘤的早期及精准诊疗提供了新契机[2,3]。纳米技术可从原子、分子及亚微米尺度上精确控制纳米颗粒的组成成分、尺寸及形貌,通过独特的增强渗透滞留效应及特异性靶向作用提高其在肿瘤部位的聚集量,使成像效果显著增强,实现对肿瘤的特异性靶向成像[4]。因此,研发高灵敏度、高特异性、低毒性的多功能纳米造影剂对于肿瘤分子影像技术的发展至关重要。近年来,基于化学合成法制备的纳米造影剂在肿瘤分子成像方面已表现出优越的性能,但合成化合物对生物体存在潜在的致敏性及生物毒性,延缓了其临床转化[5]。而利用天然生物材料制备多功能纳米造影剂被认为具有更高的临床转化潜能,越来越受到医学影像学领域研究者的重视。

真黑素是一种普遍存在于自然界多种生物组织内的天然聚合物[6,7,8]。2007年Lee等[9]受贻贝分泌的足丝蛋白的启发,首次报道了多巴胺单体在碱性条件下可通过氧化聚合形成结构与天然真黑素极其相似的聚多巴胺(polydopamine, PDA)分子。此后PDA分子以生物相容性好、聚合条件简单、表面富含功能化基团等优势被广泛研究报道。近年来随着纳米科技的发展,以PDA分子为基础的纳米颗粒(PDA nanoparticles, PDA NPs)也因其独特的物理化学性质被开发成为具有较高临床转化潜力的多功能纳米造影剂,并应用于肿瘤分子成像[10,11]。本文综述了近年来基于PDA NPs的多功能纳米造影剂的聚合及功能化组装策略,归纳总结了其在肿瘤分子影像领域的最新研究成果,展望了其应用前景和发展趋势,以期为肿瘤的早期和精准诊疗提供新思路。

1 PDA NPs的聚合方法及聚合机理

PDA NPs的聚合方法主要分为3种[8, 12]:①溶液氧化聚合法,即在有氧条件下,多巴胺单体在碱性环境中自发进行聚合形成PDA NPs。②酶催化氧化聚合法,该法与天然真黑素的生物合成类似,即多巴胺单体在酪氨酸酶、脲酶等酶的存在下聚合形成PDA NPs,该法聚合效率高、副产物少,但聚合工艺流程较溶液氧化聚合法更为复杂。③电聚合法,即直接在导电材料表面沉积得到PDA NPs,该法具有沉积率高、可精确控制PDA分子厚度等优势。

PDA NPs的聚合机理复杂,反应机制尚未完全明确,至今仍处于研究阶段[8,12]。目前认为可能的聚合机理有以下几种:一种机理认为在有氧条件下,多巴胺单体中的邻苯二酚基团去质子化生成多巴胺醌,通过分子内的亲和成环反应,氧化重排形成5,6-二羟基吲哚中间体,继而发生分子间及分子内重排,相互交联最终形成聚合物(PDA NPs);另一种机理则认为多巴胺单体中的对乙酰氨基酚及其衍生物先组成超分子聚集体,再通过非共价作用相互结合在一起,从而形成PDA NPs;还有研究认为PDA NPs的形成是通过未聚合的多巴胺残留物与多巴胺醌发生物理自组装,并与多巴胺醌单体进行共价反应来实现的。

2 PDA多功能纳米造影剂的功能化组装策略

PDA NPs含有独特的生化结构及丰富的功能化作用位点,其功能化组装策略包括以下几种[12,13]:①PDA NPs富含氨基、羧基、邻苯醌、半醌及酚羟树脂等金属配位键,能直接与Gd3+、Fe3+、Mn2+64Cu等金属离子配位结合,形成金属配位的PDA NPs复合物,可作为MRI、正电子发射断层成像(positron emission tomography, PET)及单光子发射计算机断层成像(single photon emission computed tomography, SPECT)等技术的造影剂。②PDA分子中的邻苯二酚或邻苯三酚基团可参与形成氢键、π-π堆积、阳离子-π作用等非共价作用力,通过上述结构装载小分子造影剂或药物。③PDA分子中的酚类结构在聚合过程中易被氧化为醌式结构,在此过程中产生的还原力可将Au3+、Ag2+、Pt2+等重金属离子还原,形成PDA NPs与金属的复合物。④PDA分子可与含有氨基或巯基的分子发生Michael加成反应或Schiff碱反应,该特性使PDA分子可在特定位置实现靶向多肽/抗体等生物成分的可控偶联。

3 PDA多功能纳米造影剂在肿瘤分子影像方面的应用
3.1 荧光成像

荧光成像具有成本低、无辐射、灵敏度高、可实时监测生物体内标记的细胞活动和基因行为等优势,对研究肿瘤的发生、发展及转移具有重要价值。与天然真黑素类似,PDA NPs经特殊处理后能显示出激发波长依赖的荧光特性,与无机荧光纳米材料相比,具有更优异的生物相容性及生物降解性[14]。Zhang等[15]首次报道了利用过氧化氢(H2O2)再氧化的方法获得荧光PDA NPs,其原理是利用H2O2的氧化作用降低PDA NPs中π-π堆积的程度,减少以非辐射方式耗散的质子吸收能,从而提高荧光效率。在此基础上,后续研究者又开发出化学氧化、共轭连接、碳化等制备策略[16],但大部分研究所报道的荧光PDA NPs发射波长仅在400~520 nm范围内[17,18],限制了其在活体荧光成像中的应用。Xiao等[19]报道了一种通过水热法使PDA分子层有序生长在碳量子点表面从而制备荧光PDA碳纳米点(MCDs)的方法,该法创新地利用了PDA分子与碳量子点之间由π-π堆积所引发的荧光能量共振转移,使MCDs的发射波长从500 nm红移至650 nm,实现了小鼠三阴乳腺癌模型的荧光/光声双模态高灵敏成像,为制备荧光PDA NPs拓展了新思路。Zhang等[20]将叶酸分子与多巴胺单体混合制备了叶酸修饰的肿瘤靶向PDA NPs,再采用点击化学技术将铕(Ⅲ)元素定向偶联至PDA NPs表面,利用镧系元素的荧光特性成功制备了能发出较强红色荧光的PDA NPs。周韵等[21]利用PDA NPs中的π-π堆积作用力和疏水作用力,将近红外荧光染料IR-780及MRI造影组件钆喷酸葡胺载入PDA NPs中制备了具有近红外荧光及MRI能力的双模态造影剂(DMNCs)。研究结果表明,DMNCs可成功穿过小鼠血-脑屏障,并将高浓度的近红外荧光染料及MRI造影组件输送至小鼠脑胶质瘤部位,实现小鼠原位脑胶质瘤的近红外荧光与MRI双模态成像。

3.2 MRI

MRI具有软组织对比度良好、空间分辨率高、无辐射等优势,是目前临床使用最广泛的结构成像技术之一。但MRI灵敏度低,在实际应用中需大剂量造影剂才能获取足够的成像信号,易引发肝、肾功能损伤和过敏反应等不良反应。因此,提高成像灵敏度是目前构建MRI造影剂的主要挑战及发展方向。PDA NPs具有强金属配位作用,能配位螯合高浓度的Gd3+、Fe3+、Mn2+等MRI造影组件,是极具优势和潜力的MRI造影剂装载和运输平台[13]。Addisu等[22]将多巴胺单体接枝海藻酸,利用仿生矿化策略在碱性条件下将其与Mn2+反应,制备了海藻酸-PDA纳米凝胶[AlgPDA/DA(Ca/Mn)NGs],并将其用于小鼠宫颈癌模型T1加权成像。该项研究结果发现,AlgPDA/DA(Ca/Mn)NGs具有较高的驰豫效率(r1=12.54 L·mmol-1·s-1),且驰豫效率高低与PDA聚合程度呈正相关,即聚合程度越高,驰豫效率越高,成像灵敏度也越高。Hu等[23]通过调控PDA聚合过程中Fe3+的配位反应,巧妙获得了同时具有Fe3+及Fe2+两种价态的Fe3+/Fe2+-PDA NPs。体内外实验结果表明,Fe3+/Fe2+-PDA NPs具有较高的细胞摄取效率和良好的生物相容性,可在小鼠体内实现肿瘤的T1/T2双重增强MRI,克服了T1加权成像在获取肿瘤病变信息方面及T2加权成像在获取肿瘤解剖信息中的不足。

3.3 PET与SPECT

PET与SPECT是目前临床应用最为广泛的核素分子成像技术,具有出色的成像灵敏度,也是体内评估药物生物分布和代谢最有效的手段之一[24]。PDA NPs表面富含多种官能团,为放射性核素的标记提供了天然锚定位点。夏雷等[25]利用PDA的此种特性,通过原位标记法将长半衰期核素124I标记于聚乙二醇(polyethylene glycol, PEG)修饰的PDA NPs中,制备了124I-PEG-MNP,其124I标记率可达99%以上,稳定性良好。人胰腺癌小鼠模型成像结果显示,124I-PEG-MNP在肿瘤部位的富集量明显高于游离124I,PET成像效果更为显著。Suárez-García等[26]采用仿生合成策略将PDA分子作为保护层包覆于标记有放射性元素111In及64Cu的酚醛金属纳米粒子(In-MPN及Cu-MPN)表面,通过PET/SPECT成像的定量特性揭示了主动靶向策略的递送优势,为提高纳米造影剂的生物利用率提供了重要参考依据。

3.4 光声成像

光声成像(photoacoustic imaging, PAI)兼具光学成像高对比度和超声成像高穿透深度的优势,通过采集组织功能分子信号实现高特异性的组织成像[27]。PDA NPs在紫外-可见光-近红外区全域具有光吸收,非常适合作为外源PAI造影剂。Longo等[28]通过酪氨酸酶叠加H2O2的组合催化方式合成了超小PDA NPs(MFA-PEG),并在乳腺癌小鼠模型上首次实现了动态增强的肿瘤微血管PAI。该研究成果可用于实时评估乳腺癌抗血管生成治疗的效果,对肿瘤远处转移预测、治疗预后评估及辅助性治疗方案选择均有重要意义。Gujrati等[29]通过基因工程改造策略合成了细胞外膜包裹的仿生真黑素生物聚合物(OMVMel)。真黑素的融合赋予了OMVMel光热转换功能,使OMVMel不仅可作为一种新型PAI造影剂,还可实现PAI引导的光热治疗。结合多光谱光声层析成像技术,该研究结果证明了OMVMel能高效聚集于肿瘤部位,提高肿瘤诊疗效能,且不会激活小鼠炎症或免疫反应,具有巨大的临床转化潜力。

3.5 多模态成像

肿瘤的高度异质性及复杂性导致单一成像模式无法获取肿瘤的完整信息,难以动态追踪治疗过程中肿瘤的变化。多模态成像指利用两种及以上不同影像技术对同一病变部位进行成像,通过融合不同成像模式的优势,获取更加全面的诊断信息,具有重要的应用价值[30]。然而,多模态纳米造影剂通常需将不同成像组件进行组装,合成条件要求高,且步骤繁琐耗时,一些难以降解的成分也存在潜在的生物毒性[5]。PDA NPs的生物相容性及生物降解性良好,表面富含功能化基团,尤其适合作为多模态纳米造影剂的构建平台。Ha等[31]利用PDA分子对金属离子的强配位作用,将Bi3+、Fe3+和I+掺杂入PDA NPs中,通过共价偶联方式在PDA NPs表面修饰表皮生长因子抗体,制备可对肝细胞癌进行MRI/CT/PET多模态成像的纳米探针(iMNPs)。其充分利用MRI优异的软组织分辨率、CT的高成像时间分辨率以及PET出色的成像灵敏度,对肝细胞癌进行了无创、动态地表皮生长因子密度定量分析,为弥补单一成像的不足提供了新思路。Liu等[5]利用Mn2+配位的PDA NPs标记PET造影组件124I,并在其表面修饰PEG分子及生长抑素类似物奥曲肽,以实现对小细胞肺癌的多模态精准靶向成像。该研究综合了PAI的高灵敏度、MRI的高空间分辨率以及PET在定量成像方面的优势,全面评估了小鼠小细胞肺癌中生长抑素受体的分布及表达水平,为实现小细胞肺癌的精准定位、诊断和分期提供了实验依据。

3.6 成像介导的肿瘤协同治疗

开发兼具成像及治疗功能的诊疗一体化纳米探针是目前纳米药物工程化改造的主要方向。然而,不同成像模态的灵敏度和分辨率差异巨大,且肿瘤对不同治疗模式的敏感性也各有差异,因此,如何调控各成像组件及治疗药物之间的比例,实现各组分的协同增效是研究的重点及难点。PDA分子的聚合程度受离子浓度、pH值、温度等环境因素的影响,且聚合后的PDA NPs在近红外光区具有较强的光吸收及光热转化特性,经808 nm近红外光照射后可产生高效的热能,从而实现对肿瘤的光热治疗。借助反应条件的变化调整PDA NPs中氢键、邻苯二酚或邻苯三酚基团等关键官能团的含量,可对金属离子、荧光素及小分子治疗药物等组分进行可控装载,从而实现成像引导的肿瘤化学药物治疗(化疗)、光动力治疗及光热治疗等多种治疗方式的高效协同。Li等[32]将化疗药物Pt(Ⅳ)及上皮细胞黏附分子抗体修饰于PDA分子包载的碳量子点中,制备了纳米诊疗系统[anti-EpCAM@PDA-CDs@Pt(Ⅳ)]。利用PDA NPs高效的光热转换效率,实现了肝癌的化疗/光热协同治疗。同时,上皮细胞黏附分子抗体提高了纳米诊疗系统对肝癌靶向的精准度,有利于通过荧光成像准确评估肿瘤位置及大小,实时反映治疗效果。Feng等[33]巧妙利用PDA分子的光吸收及热转化性能,将光敏剂(亚甲基蓝)载入经L-精氨酸靶向修饰的PDA NPs中,得到具有光热/光动力联合治疗功能的纳米药物(PML)。其不仅能通过L-精氨酸精准定位肿瘤,还能通过光声/近红外荧光成像引导光热/光动力联合治疗。该研究还指出肿瘤在光动力治疗过程中能通过上调内环境中的谷胱甘肽启动自我保护机制,以降低光动力治疗对肿瘤细胞的杀伤作用;而PDA分子能大量消耗肿瘤内环境中的谷胱甘肽,从而消除肿瘤对光动力治疗的抵御,提高治疗效果。Dai等[34]以相似的合成策略将超声造影剂全氟正戊烷(PFP)、光敏剂(Ce6)及前列腺特异性膜抗原(prostate-specific membrane antigen, PSMA)抑制剂N-{N-[(S)-1,3-二羧丙基]氨甲酰}-(S)-l-赖氨酸(DCL)分别载入PDA NPs中,所研发的Ce6@PDA-DCL-PFP在小鼠体内能精准靶向PSMA高表达的肿瘤组织,并可结合超声成像评估光热/光声协同治疗效果,反映肿瘤PSMA的表达量,判断肿瘤是否具有侵袭性,为临床评估前列腺癌的恶性程度及预后提供了新思路。Zhan等[35]以腺嘌呤(A)修饰的PDA NPs(A-PDA)为多功能纳米平台,巧妙利用碱基互补配对原理,将胸腺嘧啶(T)修饰的光敏剂酞菁锌(T-ZnPc)与A-PDA结合,并配位螯合Gd3+获得了纳米诊疗系统(PATA NPs)。由于互补配对的碱基在较高温度下会相互解离,故PATA NPs可通过光热转换实现光敏剂T-ZnPc的定点释放。PATA NPs的MRI/荧光双模态成像可精准定位肿瘤,同时也为激光的介入时间及照射区域提供了有效指引。

4 PDA纳米材料的生物相容性及生物降解性

PDA分子与天然真黑素的化学成分和结构类似,具有良好的生物安全性及生物降解性。将神经胶质细胞、神经元细胞等细胞分别与PDA分子共培养后,其生长及分化均未受到影响[36];而在羟基自由基、H2O2及谷胱甘肽等天然成分存在条件下,PDA分子会由聚合物状态分解成小分子[37,38,39]。PDA优异的生物相容性及生物降解性也被应用于肿瘤精准诊疗中,Luo等[40]以多巴胺单体及其修饰的海藻酸盐为原料,以Mn2+为交联剂,利用3D打印技术制备了多功能海藻酸-PDA(Alg-PDA)支架,并将其用于小鼠乳腺癌切除手术后的光热治疗及组织修复。结果显示,Alg-PDA支架优异的生物相容性使正常乳腺上皮细胞可于支架上黏附和增殖,促进了乳腺组织的修复;MRI/光声双模成像功能可实时反映支架在体内的具体状况。该研究创新性地利用了PDA分子的多种特性,为乳腺癌术后局部复发的治疗及术后组织修复提供了思路。

5 结语与展望

由于肿瘤高度的异质性和复杂性,如何实现肿瘤的早期及精准诊疗,实时反映治疗效果仍是肿瘤分子影像学亟待解决的挑战性难题。基于PDA NPs的多功能纳米造影剂不仅能通过金属配位、π-π非共价键堆积、静电吸附等方式实现造影组件及治疗组分的可控组装,还可通过Michael加成反应或Schiff碱反应完成靶向修饰,提高其对肿瘤的特异性识别。此外,PDA NPs与天然真黑素结构极其相似,具有良好的生物相容性及生物降解性,具有巨大的临床转化潜力[41]。然而,发展基于PDA NPs的多功能纳米造影剂仍需综合考虑各功能组件间的比例及其在肿瘤中的序列控释。同时,还应考虑肿瘤微环境对各功能组件的影响。PDA NPs及其降解产物在体内的代谢也是需要持续关注的问题。随着医学影像、纳米医学等学科的不断革新与交叉融合,基于PDA NPs的多功能造影剂将会在肿瘤分子影像中越来越显示出广阔的应用前景。

利益冲突
利益冲突

所有作者均声明不存在利益冲突

参考文献
[1]
BrayF, FerlayJ, SoerjomataramI, et al. Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries[J]. CA Cancer J Clin, 2018, 68(6): 394-424. DOI: 10.3322/caac.21492.
[2]
ZhouZX, QutaishM, HanZ, et al. MRI detection of breast cancer micrometastases with a fibronectin-targeting contrast agent[J]. Nat Commun, 2015, 6: 7984. DOI: 10.1038/ncomms8984.
[3]
LiuMY, JiJZ, ZhangXY, et al. Self-polymerization of dopamine and polyethyleneimine: novel fluorescent organic nanoprobes for biological imaging applications[J]. J Mater Chem B, 2015, 3(17): 3476-3482. DOI: 10.1039/c4tb02067g.
[4]
ZhangBB, YangWT, YuJN, et al. Green synthesis of sub-10 nm gadolinium-based nanoparticles for sparkling kidneys, tumor, and angiogenesis of tumor-bearing mice in magnetic resonance imaging[J]. Adv Healthc Mater, 2017, 6(4): 1600865. DOI: 10.1002/adhm.201600865.
[5]
LiuH, YangYY, LiuY, et al. Melanin-like nanomaterials for advanced biomedical applications: a versatile platform with extra-ordinary promise[J]. Adv Sci (Weinh), 2020, 7(7): 1903129. DOI: 10.1002/advs.201903129.
[6]
ParkJ, MoonH, HongS. Recent advances in melanin-like nano-materials in biomedical applications: a mini review[J]. Biomater Res, 2019, 23: 24. DOI: 10.1186/s40824-019-0175-9.
[7]
Mavridi-PrinteziA, GuernelliM, MenichettiA, et al. Bio-applications of multifunctional melanin nanoparticles: from nanomedicine to nanocosmetics[J]. Nanomaterials (Basel), 2020, 10(11): 2276. DOI: 10.3390/nano10112276.
[8]
QiC, FuLH, XuH, et al. Melanin/polydopamine-based nanomaterials for biomedical applications[J]. Sci China Chem, 2019, 62(2): 162-188. DOI: 10.1007/s11426-018-9392-6.
[9]
LeeH, DellatoreSM, MillerWM, et al. Mussel-inspired surface chemistry for multifunctional coatings[J]. Science, 2007, 318(5849): 426-430. DOI: 10.1126/science.1147241.
[10]
MrówczyńskiR. Polydopamine-based multifunctional (nano) materials for cancer therapy[J]. ACS Appl Mater Interfaces, 2018, 10(9): 7541-7561. DOI: 10.1021/acsami.7b08392.
[11]
ChengW, ZengXW, ChenHZ, et al. Versatile polydopamine platforms: synthesis and promising applications for surface modification and advanced nanomedicine[J]. ACS Nano, 2019, 13(8): 8537-8565. DOI: 10.1021/acsnano.9b04436.
[12]
LiuYL, AiKL, LuLH. Polydopamine and its derivative materials: synthesis and promising applications in energy, environmental, and biomedical fields[J]. Chem Rev, 2014, 114(9): 5057-5115. DOI: 10.1021/cr400407a.
[13]
SalomäkiM, OuvinenT, MarttilaL, et al. Polydopamine nanoparticles prepared using redox-active transition metals[J]. J Phys Chem B, 2019, 123(11): 2513-2524. DOI: 10.1021/acs.jpcb.8b11994.
[14]
ZhaoCX, ZuoF, LiaoZJ, et al. Mussel-inspired one-pot synthesis of a fluorescent and water-soluble polydopamine-polyethyleneimine copolymer[J]. Macromol Rapid Commun, 2015, 36(10): 909-915. DOI: 10.1002/marc.201500021.
[15]
ZhangXY, WangSQ, XuLX, et al. Biocompatible polydopamine fluorescent organic nanoparticles: facile preparation and cell imaging[J]. Nanoscale, 2012, 4(18): 5581-5584. DOI: 10.1039/c2nr31281f.
[16]
YangP, ZhangS, ChenXF, et al. Recent developments in polydopamine fluorescent nanomaterials[J]. Mater Horiz, 2020, 7(3): 746-761. DOI: 10.1039/C9MH01197H.
[17]
KimSH, InI, ParkSY. pH-Responsive NIR-absorbing fluorescent polydopamine with hyaluronic acid for dual targeting and synergistic effects of photothermal and chemotherapy[J]. Biomacromolecules, 2017, 18(6): 1825-1835. DOI: 10.1021/acs.biomac.7b00267.
[18]
ShiYG, XuDZ, LiuMY, et al. Room temperature preparation of fluorescent starch nanoparticles from starch-dopamine conjugates and their biological applications[J]. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl, 2018, 82: 204-209. DOI: 10.1016/j.msec.2017.08.070.
[19]
XiaoW, LiY, HuC, et al. Melanin-originated carbonaceous dots for triple negative breast cancer diagnosis by fluorescence and photoacoustic dual-mode imaging[J]. J Colloid Interface Sci, 2017, 497: 226-232. DOI: 10.1016/j.jcis.2017.02.068.
[20]
ZhangMJ, ZouYB, ZhongYP, et al. Polydopamine-based tumor-targeted multifunctional reagents for computer tomography/fluorescence dual-mode bioimaging-guided photothermal therapy[J]. ACS Appl Bio Mater, 2019, 2(2): 630-637. DOI: 10.1021/acsabm.8b00797.
[21]
周韵,杜尚亭,冯波,.脑胶质瘤通过MRI@NIRF双模态靶向纳米造影剂的成像研究[J].神经解剖学杂志, 2018, 34(5): 555-560. DOI: 10.16557/j.cnki.1000-7547.2018.05.005.
ZhouY, DuST, FengB, et al. Research of MRI@NIRF dual modality nano-contrast agents for brain gliomas imaging[J]. Chin J Neuroanat, 2018, 34(5): 555-560. DOI: 10.16557/j.cnki.1000-7547.2018.05.005.
[22]
AddisuKD, HailemeskelBZ, MekuriaSL, et al. Bioinspired, manganese-chelated alginate-polydopamine nanomaterials for efficient in vivo T1-weighted magnetic resonance imaging[J]. ACS Appl Mater Interfaces, 2018, 10(6): 5147-5160. DOI: 10.1021/acsami.7b13396.
[23]
HuDH, LiuCB, SongL, et al. Indocyanine green-loaded polydopamine-iron ions coordination nanoparticles for photoacoustic/magnetic resonance dual-modal imaging-guided cancer photothermal therapy[J]. Nanoscale, 2016, 8(39): 17150-17158. DOI: 10.1039/c6nr05502h.
[24]
Macauley-RambachS, DamukaN, WhitlowCT, et al. [11C]MPC-6827: a microtubule-based pet imaging tracer for AD and related dementias[J]. Alzheimers Dement, 2020, 16(S4): e037780. DOI: 10.1002/alz.037780.
[25]
夏雷,程震,朱华,. 124I原位标记有机黑色素纳米粒子的制备及初步分子影像研究[J].化学学报, 2019, 77(2): 172-178. DOI: 10.6023/A18090410.
XiaL, ChengZ, ZhuH, et al. Preparation and preliminary molecular imaging study of 124I in-situ labeled organic melanin nano-particles[J]. Acta Chim Sinica, 2019, 77(2): 172-178. DOI: 10.6023/A18090410.
[26]
Suárez-GarcíaS, EspositoTVF, Neufeld-PetersJ, et al. Hybrid metal-phenol nanoparticles with polydopamine-like coating for PET/SPECT/CT imaging[J]. ACS Appl Mater Interfaces, 2021, 13(9): 10705-10718. DOI: 10.1021/acsami.0c20612.
[27]
YangWT, GuoWS, LeWJ, et al. Albumin-bioinspired Gd:CuS nanotheranostic agent for in vivo photoacoustic/magnetic resonance imaging-guided tumor-targeted photothermal therapy[J]. ACS Nano, 2016, 10(11): 10245-10257. DOI: 10.1021/acsnano.6b05760.
[28]
LongoDL, StefaniaR, CallariC, et al. Water soluble melanin derivatives for dynamic contrast enhanced photoacoustic imaging of tumor vasculature and response to antiangiogenic therapy[J]. Adv Healthc Mater, 2017, 6(1): 1600550. DOI: 10.1002/adhm.201600550.
[29]
GujratiV, PrakashJ, Malekzadeh-NajafabadiJ, et al. Bioengineered bacterial vesicles as biological nano-heaters for optoacoustic imaging[J]. Nat Commun, 2019, 10(1): 1114. DOI: 10.1038/s41467-019-09034-y.
[30]
LiX, WuML, WangJH, et al. Ultrasmall bimodal nanomolecules enhanced tumor angiogenesis contrast with endothelial cell targeting and molecular pharmacokinetics[J]. Nanomedicine, 2019, 15(1): 252-263. DOI: 10.1016/j.nano.2018.10.004.
[31]
HaSW, ChoHS, YoonYI, et al. Ions doped melanin nanoparticle as a multiple imaging agent[J]. J Nanobiotechnology, 2017, 15(1): 73. DOI: 10.1186/s12951-017-0304-3.
[32]
LiZY, NiJT, LiuLP, et al. Imaging-guided chemo-photothermal polydopamine carbon dots for EpCAM-targeted delivery toward liver tumor[J]. ACS Appl Mater Interfaces, 2021, 13(25): 29340-29348. DOI: 10.1021/acsami.1c05079.
[33]
FengJ, GaoJL, ZhangRY, et al. Polydopamine-based multifunctional antitumor nanoagent for phototherapy and photodiagnosis by regulating redox balance[J]. ACS Appl Bio Mater, 2020, 3(12): 8667-8675. DOI: 10.1021/acsabm.0c01057.
[34]
DaiLQ, ShenGH, WangYY, et al. PSMA-targeted melanin-like nanoparticles as a multifunctional nanoplatform for prostate cancer theranostics[J]. J Mater Chem B, 2021, 9(4): 1151-1161. DOI: 10.1039/d0tb02576c.
[35]
ZhanQC, ShiXQ, ZhouJH, et al. Drug-controlled release based on complementary base pairing rules for photodynamic-photothermal synergistic tumor treatment[J]. Small, 2019, 15(3): e1803926. DOI: 10.1002/smll.201803926.
[36]
BettingerCJ, BruggemanJP, MisraA, et al. Biocompatibility of biodegradable semiconducting melanin films for nerve tissue engineering[J]. Biomaterials, 2009, 30(17): 3050-3057. DOI: 10.1016/j.biomaterials.2009.02.018.
[37]
Di MauroE, RhoD, SantatoC. Biodegradation of bio-sourced and synthetic organic electronic materials towards green organic electronics[J]. Nat Commun, 2021, 12(1): 3167. DOI: 10.1038/s41467-021-23227-4.
[38]
LiuYL, AiKL, JiXY, et al. Comprehensive insights into the multi-antioxidative mechanisms of melanin nanoparticles and their application to protect brain from injury in ischemic stroke[J]. J Am Chem Soc, 2017, 139(2): 856-862. DOI: 10.1021/jacs.6b11013.
[39]
ZhouT, YanLW, XieCM, et al. A mussel-inspired persistent ROS-scavenging, electroactive, and osteoinductive scaffold based on electrochemical-driven in situ nanoassembly[J]. Small, 2019, 15(25): e1805440. DOI: 10.1002/smll.201805440.
[40]
LuoYX, WeiXY, WanYL, et al. 3D printing of hydrogel scaffolds for future application in photothermal therapy of breast cancer and tissue repair[J]. Acta Biomater, 2019, 92: 37-47. DOI: 10.1016/j.actbio.2019.05.039.
[41]
RahimMA, KristufekSL, PanSJ, et al. Phenolic building blocks for the assembly of functional materials[J]. Angew Chem Int Ed Engl, 2019, 58(7): 1904-1927. DOI: 10.1002/anie.201807804.
 
 
展开/关闭提纲
查看图表详情
回到顶部
放大字体
缩小字体
标签
关键词