综述
阿司匹林预防结直肠癌的研究进展
肿瘤研究与临床, 2018,30(2) : 141-144. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1006-9801.2018.02.018
摘要

结直肠癌作为全球范围内最常见的恶性肿瘤之一,有着较高发病率及死亡率,且近年来我国结直肠癌发病率还有上升的趋势。阿司匹林是一种广泛运用于心血管系统疾病的经济型药物,近年来越来越多的研究提示,阿司匹林在结直肠癌的预防方面可能也是一种很有希望的药物。文章就阿司匹林对结直肠癌的预防及其机制的研究进展进行综述。

引用本文: 陈鹏, 夏冬. 阿司匹林预防结直肠癌的研究进展 [J] . 肿瘤研究与临床, 2018, 30(2) : 141-144. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1006-9801.2018.02.018.
参考文献导出:   Endnote    NoteExpress    RefWorks    NoteFirst    医学文献王
扫  描  看  全  文

正文
作者信息
基金 0  关键词  0
English Abstract
评论
阅读 0  评论  0
相关资源
引用 | 论文 | 视频

版权归中华医学会所有。

未经授权,不得转载、摘编本刊文章,不得使用本刊的版式设计。

除非特别声明,本刊刊出的所有文章不代表中华医学会和本刊编委会的观点。

全球每年有近100万人罹患结直肠癌,且有近60万确诊患者死于结直肠癌[1]。结直肠癌所导致的严重社会负担使寻找有效的结直肠癌预防策略刻不容缓。阿司匹林作为经典的抗血小板药物,已广泛应用于心血管疾病的治疗中。1988年,Kune等[2]发现阿司匹林可以降低人群的结直肠癌患病率。此后,关于阿司匹林对结直肠癌的预防及作用机制的研究逐渐增多。2016年,美国国家综合癌症网络(NCCN)在线发布了2017年结直肠癌临床实践指南,推荐将阿司匹林用于结直肠癌根治术后预防肿瘤复发。

1 阿司匹林对结直肠息肉的影响

结直肠息肉可分为腺瘤性息肉、增生性息肉、炎性息肉及错构瘤性息肉等4种,其中腺瘤性息肉发生癌变的概率最大,故被称为癌前病变。

Murff等[3]进行了一项关于阿司匹林对息肉影响的研究,该研究包括2 028例息肉病例(1 529例为腺瘤性息肉,499例为增生性息肉)及3 431例无息肉对照病例进行对照研究。追溯既往15年的阿司匹林使用情况,结果发现使用低剂量阿司匹林、常规剂量阿司匹林均可降低腺瘤性息肉的风险(OR=0.79,95% CI 0.66~0.93;OR=0.73,95% CI 0.58~0.90)。Gao等[4]的荟萃分析筛选出了包含3项共计2 338例已行腺瘤切除术患者的大型随机双盲安慰剂对照研究,发现不同剂量的阿司匹林均能使腺瘤的复发率下降(RR=0.84,95% CI 0.75~0.94)。上述研究提示阿司匹林可降低结直肠腺瘤性息肉的发病率及切除后复发率。

家族性腺瘤性息肉病(FAP)为常染色体显性遗传病,多见于青少年,若不加干预,几乎100%会进展为结直肠癌。Burn等[5]进行的一项病例对照研究分析了FAP患者在随机予以阿司匹林(600 mg/d)或安慰剂治疗后结直肠息肉的大小及数量。结果发现阿司匹林可缩小FAP息肉的体积,但对息肉数量影响不明显。但由于该研究为多中心研究,且内镜检查的结直肠长度存在差异,结果可能存在偏倚。

2 阿司匹林对结直肠癌的预防
2.1 阿司匹林对结直肠癌的一级预防

多项研究表明,长期规律口服阿司匹林可明显降低结直肠癌的发病率。Flossmann等[6]分析了两个大型随机对照研究发现阿司匹林组均可降低结直肠癌的发生率(HR=0.74,95% CI 0.56~0.97),且阿司匹林使用5年以上者收益更明显(HR=0.74,95% CI 0.56~0.97)。Cao等[7]在美国护士健康队列研究(NHS)中发现,规律应用阿司匹林(325 mg/次,>2次/周)者,在其后20年的随访时间内,其结直肠癌患病率下降23%(RR=0.77,95% CI 0.67~0.88)。Din等[8]进行的一项病例对照研究发现,阿司匹林组的结直肠癌患病风险较对照组约低30%,且这种收益与阿司匹林的剂量及持续时间相关,阿司匹林≥75 mg/d收益更好(OR=0.66,95% CI 0.41~1.05)。进一步分析发现,阿司匹林75 mg/d在使用1年时收益开始显现(OR=0.87,95% CI 0.59~1.28),5年后收益明显增高(OR=0.75,95% CI 0.52~1.08)。以上研究提示,长期规律应用阿司匹林可以降低结直肠癌的患病率。且这些研究的共同之处表明,阿司匹林≥75 mg/d、持续使用5年及以上者可能会获得更明显的收益。但获得最佳收益的阿司匹林持续使用时间、剂量及频次等方面在各研究中不尽相同。

2.2 阿司匹林对结直肠癌的二级预防

阿司匹林不仅可以降低个体罹患结直肠癌的风险,还可以降低结直肠癌的死亡率。Chan等[9]通过对1 279例Ⅰ~Ⅲ期结直肠癌症患者的随访发现,确诊后规律应用阿司匹林者其结直肠癌死亡率下降29%(HR=0.71,95% CI 0.53~0.95)。Li等[10]发现,诊断后使用阿司匹林可以提高结直肠癌患者的总体生存率(HR=0.84,95% CI 0.75~0.94),尤其是对环氧合酶2(COX-2)高表达和突变型PIK3CA的结直肠癌患者。Hua等[11]研究发现,确诊后使用阿司匹林比未使用者有更好的总体生存率(HR=0.75,95% CI 0.59~0.95)和结直肠癌特异性生存率(HR=0.44,95% CI 0.25~0.71)。Elwood等[12]的最新荟萃分析结果提供了目前关于阿司匹林与结直肠癌研究的较为完整的概述性结论,这项荟萃分析共确定了16项研究(5项随机试验报告和11项观察性报告),结果表明结直肠癌死亡率降低了25%,并证明全因死亡率减少了约20%,结直肠癌特异性死亡率的合并HR为0.71,95% CI 0.58~0.87,总死亡率的合并HR为0.80,95% CI 0.70~0.92。也有研究表明,使用阿司匹林可以降低结直肠癌的复发率及远处转移的风险[13,14]

2.3 阿司匹林防治结直肠癌疗效的预测标志物

结直肠癌患者使用阿司匹林获得的收益除了与阿司匹林的剂量、使用频次相关外,也和受试者本身有关。研究表明,结直肠癌是一组异质性疾病[15,16]。从个体化治疗的角度来讲,使用阿司匹林预防结直肠癌时应当选定靶向人群以获得最佳收益。所以,选定阿司匹林预防结直肠癌的疗效预测标志物是治疗中必不可少的环节。目前关于此方面的研究已有不少,且已发现了几种很有前途的疗效预测标志物,如突变型PIK3CA基因、COX-2高表达[10]、野生型KRAS基因[11]、CD274(PD-L1)低表达[17]、表皮生长因子受体(EGFR)高表达[18]

3 阿司匹林防治结直肠肿瘤的机制
3.1 COX-PGE2-PI3K机制

COX是人体内前列腺素(PG)合成的关键酶,阿司匹林可非选择性抑制体内COX-1和COX-2的活性。以往研究认为阿司匹林主要是通过抑制COX-1起作用。但上述研究[9,10]证实,阿司匹林降低结直肠癌死亡率的收益在COX-2过表达者中更明显。国内也有多项研究[19,20]证实,COX-2的阳性表达和大肠癌的局部浸润深度、淋巴结及肝转移、Dukes分期及肿瘤微血管密度(MVD)等具有显著相关性,提示COX-2可能也是阿司匹林发挥抗肿瘤作用的一条重要途径。

PG尤其是前列腺素E2(PGE2)具有的促进细胞增殖、肿瘤新生血管形成、上皮间质转化、抑制肿瘤细胞凋亡及调节局部细胞和体液免疫功能等可促进肿瘤的形成[21,22]。体内PGE2与细胞表面前列腺素受体结合后,主要通过上调磷脂酰肌醇3-激酶(PI3K)信号激活Tef/Lef信号通路发挥作用[23]。PI3K信号通路在癌的发生中起重要作用,PI3K上调可反馈性增强COX-2活性和PGE2的合成[24,25],使该通路出现放大效应。同时实验证据表明,PGE2过量合成导致的局部炎症反应可使肿瘤细胞通过聚集骨髓来源性抑制细胞(MDSC)、抑制树突细胞及逃离T细胞介导的免疫攻击来逃避宿主免疫监视[26,27,28,29],从而促进肿瘤的形成。阿司匹林可通过抑制COX活性而下调PGE2,不仅可抑制上述COX-PGE2-PI3K信号通路的激活,还可逆转PGE2对调节性T细胞和树突状细胞的抑制作用,并恢复炎症因子的平衡,增强T细胞介导的免疫应答[30],从而预防肿瘤形成。在阿司匹林与COX的相互作用上,研究表明[31,32]阿司匹林与COX的结合是通过与形成COX活性位点的疏水性通道口附近的精氨酸相结合而完成的。与精氨酸结合后,阿司匹林通过乙酰化COX通道中的丝氨酸残基来共价修饰COX。COX-1的乙酰化阻止花生四烯酸(AA)的代谢,继而抑制PGE2的产生。而乙酰化的COX-2仍可继续催化AA代谢,但其产物变为15(R)-羟基二十碳四烯酸(HETE)[32]。15(R)-HETE可以在白细胞中通过5-脂氧合酶(5-LO)途径转化成15(R)-epi-lipoxin A4(LXA4,即脂氧素A4)和脂氧素B4[33],而脂氧素本身具有抗增生和抗感染作用[34,35]

上述研究中均将COX-2作为阿司匹林首位且唯一的作用位点。实际上,阿司匹林也可作用于该机制的其他位点。Din等[36]研究发现,阿司匹林还可通过抑制Akt及mTOR(PI3K的两种下游效应器)而发挥其抗肿瘤作用。

3.2 其他机制

Reimers等[37]认为,阿司匹林降低制结直肠癌转移风险可能是通过抑制血液中血小板-肿瘤细胞间的信号转导和循环肿瘤细胞的上皮间质转化来完成的。这种信号转导可使肿瘤细胞获得具有转移潜能的侵袭性间质表型,降低细胞毒性T淋巴细胞介导的肿瘤细胞裂解[38,39]。但是关于阿司匹林通过何种机制影响血小板-循环肿瘤细胞复合体有待进一步研究。

Li等[18]实验发现,EGFR在肿瘤形成过程中起着与PGE2类似的作用,且结直肠癌中存在着EGFR的高表达。同时,COX-2与EGFR在促进肿瘤发生中也有着紧密的联系。COX-2不仅可通过激活子蛋白-1(AP-1,EGFR的一种转录因子)调节EGFR的转录,还可直接增强EGFR的信号表达,这都有利于肿瘤细胞的转化。在此机制中,阿司匹林是通过作用于COX-2使EGFR的表达正常化,从而起到预防结直肠癌的作用。

程序性死亡受体1(PD-1)及其配体(PD-L1)在肿瘤学中的研究是近年来的一个热点。两者在肿瘤微环境中存在着高表达,二者结合后,启动PD-1/PD-L1免疫检查点通路,使T细胞处于失活状态,诱导肿瘤细胞的免疫逃逸。Hamada等[17]试验表明,使用阿司匹林和提高结直肠癌生存率之间的关系在低表达CD274(即PD-L1)患者中要强于高表达CD274患者。且有证据显示,使用阿司匹林和阻滞免疫检查点通路在激活T细胞介导的抗肿瘤免疫上具有协同效应[26],这提示阿司匹林可能对免疫检查点通路具有一定的抑制作用。所以目前认为阿司匹林与PD-1/PD-L1免疫检查点通路间的相互作用也可能是其抗肿瘤作用的一个机制。

4 结语

目前看来,阿司匹林在结直肠癌的防治方面可能是一个很有希望的药物,诸多研究也正在逐步证实这一点。但是,当前阿司匹林与结直肠癌之间关系的研究仍有某些局限性:(1)长期使用阿司匹林会导致消化道出血、消化道溃疡等不良反应。遗憾的是,当前的大多数研究都未涉及到阿司匹林不良反应这一问题。(2)在当前的诸多可能机制中,究竟是哪一种或是哪几种机制起主导作用还存在很多争议。(3)基于个体化治疗的要求,明确的阿司匹林疗效预测标志物是必不可少的,有待深入研究。(4)获得最佳收益的阿司匹林持续使用时间、剂量及频次等仍不清楚。(5)当前的多数临床研究均来源于国外,研究人群也以欧美人群为主,我国在该领域的临床研究还很少。上述临床研究结果是否完全适用于我国还需要大型流行病学资料支持。总之,要系统认识阿司匹林在结直肠癌防治中的作用及其机制,还需学者们的不断探索。

利益冲突
利益冲突

参考文献
[1]
JemalA, CenterMM, DesantisC, et al. Global patterns of cancer incidence and mortality rates and trends[J]. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev, 2010, 19(8):1893-1907. DOI:10.1158/1055-9965.
[2]
KuneGA, KuneS, WatsonLF. Colorectal cancer risk, chronic illnesses, operations, and medications:case control results from the Melbourne Colorectal Cancer Study[J]. Cancer Res, 1988, 48(15):4399-4404.
[3]
MurffHJ, ShrubsoleMJ, ChenZ, et al. Non steroidal anti-inflammatory drug use and risk of adenomatous and hyperplastic polyps[J]. Cancer Prev Res(Phila), 2011, 4(11):1799-1807. DOI:10.1158/1940-6207.
[4]
GaoF, LiaoC, LiuL, et al. The effect of aspirin in the recurrence of colorectal adenomas:a meta-analysis of randomized controlled trials[J]. Colorectal Dis, 2009, 11(9):893-901. DOI:10.1111/j.1463-1318.2008.01746.x.
[5]
BurnJ, BishopDT, ChapmanPD, et al. A randomized placebo-controlled prevention trial of aspirin and/or resistant starch in young people with familial adenomatous polyposis[J]. Cancer Prev Res(Phila), 2011, 4(5):655-665. DOI:10.1158/1940-6207.CAPR-11-0106.
[6]
Flossmann E, Rothwell PM, British Doctors Aspirin Trial and the UK-TIA Aspirin Trial. Effect of aspirin on long-term risk of colorectal cancer:consistent evidence from randomised and observational studies[J]. Lancet, 2007, 369(9573):1603-1613. DOI:10.1016/S0140-6736(07)60747-8.
[7]
CaoY, NishiharaR, WuK, et al. Population-wide impact of long-term use of aspirin and the risk for cancer[J]. JAMA Oncol, 2016, 2(6):762-769. DOI:10.1001/jamaoncol.2015.6396.
[8]
DinFV, TheodoratouE, FarringtonSM, et al. Effect of aspirin and NSAIDs on risk and survival from colorectal cancer[J]. Gut, 2010, 59(12):1670-1679. DOI:10.1136/gut.2009.203000.
[9]
ChanAT, OginoS, FuchsCS. Aspirin use and survival after diagnosis of colorectal cancer[J]. JAMA, 2009, 302(6):649-658. DOI:10.1001/jama.2009.1112.
[10]
LiP, WuH, ZhangH, et al. Aspirin use after diagnosis but not prediagnosis improves established colorectal cancer survival:a meta-analysis[J]. Gut, 2015, 64(9):1419-1425. DOI:10.1136/gutjnl-2014-308260.
[11]
HuaX, PhippsAI, Burnett-HartmanAN, et al. Timing of aspirin and other nonsteroidal anti-inflammatory drug use among patients with colorectal cancer in relation to tumor markers and survival[J]. J Clin Oncol, 2017, 35(24):2806-2813. DOI:10.1200/JCO.2017.72.3569.
[12]
ElwoodPC, MorganG, PickeringJE, et al. Aspirin in the treatment of cancer:reductions in metastatic spread and in mortality:a systematic review and meta-analyses of published studies[J]. PLoS One, 2016, 11(4):e0152402. DOI:10.1371/journal.pone.0152402.
[13]
FuchsC, MeyerhardtJA, HeseltineDL, et al. Influence of regular aspirin use on survival for patients with stage Ⅲ colon cancer:findings from intergroup trial CALGB 89803[J]. J Clin Oncol, 2005, 23(16):253S. DOI:10.1200/jco.2005.23.16_suppl.3530.
[14]
RothwellPM, WilsonM, PriceJF, et al. Effect of daily aspirin on risk of cancer metastasis:a study of incident cancers during randomised controlled trials[J]. Lancet, 2012, 379(9826):1591-1601. DOI:10.1016/S0140-6736(12)60209-8.
[15]
Cancer Genome Atlas Network. Comprehensive molecular characterization of human colon and rectal cancer[J]. Nature, 2012, 487(7407):330-337. DOI:10.1038/nature11252.
[16]
YamauchiM, MorikawaT, KuchibaA, et al. Assessment of colorectal cancer molecular features along bowel subsites challenges the conception of distinct dichotomy of proximal versus distal colorectum[J]. Gut, 2012, 61(6):847-854. DOI:10.1136/gutjnl-2011-300865.
[17]
HamadaT, CaoY, QianZR, et al. Aspirin use and colorectal cancer survival according to tumor CD274(programmed cell death 1 ligand 1)expression status[J]. J Clin Oncol, 2017, 35(16):1836-1844. DOI:10.1200/JCO.2016.70.7547.
[18]
LiH, ZhuF, BoardmanLA, et al. Aspirin prevents colorectal cancer by normalizing EGFR expression[J]. EBioMedicine, 2015, 2(5):447-455. DOI:10.1016/j.ebiom.2015.03.019.
[19]
马海青苏峥嵘朱玉萍.环氧合酶-2在结直肠癌中的表达及其与微血管密度的关系[J].肿瘤研究与临床200820(4):264-265. DOI:10.3760/cma.j.issn.1006-9801.2008.04.016.
MaHQ, SuZR, ZhuYPet al. Detection of COX-2 and its relationship with MVD in colorectal carcinoma tissue[J]. Cancer Research and Clinic200820(4):264-265. DOI:10.3760/cma.j.issn.1006-9801.2008.04.016.
[20]
朱惠明王立生黄勋.大肠癌核因子-κB和环氧合酶2的表达及其与肿瘤血管形成的关系[J].肿瘤研究与临床200416(6):367-369. DOI:10.3760/cma.j.issn.1006-9801.2004.06.003.
ZhuHM, WangLS, HuangXet al. The expression of nuclear factor-κB and cyclooxygenase 2 in large bowel carcinoma and their reaction to angiogenesis[J]. Cancer Research and Clinic200416(6):367-369. DOI:10.3760/cma.j.issn.1006-9801.2004.06.003.
[21]
LemoineL, SugarbakerP, van der SpeetenK. Pathophysiology of colorectal peritoneal carcinomatosis:role of the peritoneum[J]. World J Gastroenterol, 2016, 22(34):7692-7707. DOI:10.3748/wjg.v22.i34.7692.
[22]
GreenhoughA, SmarttHJ, MooreAE, et al. The COX-2/PGE2 pathway:key roles in the hallmarks of cancer and adaptation to the tumour microenvironment[J]. Carcinogenesis, 2009, 30(3):377-386. DOI:10.1093/carcin/bgp014.
[23]
KimSO, DuffyDM. Mapping PTGERs to the ovulatory follicle:regional responses to the ovulatory PGE2 signal[J]. Biol Reprod, 2016, 95(2):33. DOI:10.1095/biolreprod.116.140574.
[24]
SamuelsY, WangZ, BardelliA, et al. High frequency of mutations of the PIK3CA gene in human cancers[J]. Science, 2004, 304(5670):554. DOI:10.1126/science.1096502.
[25]
KaurJ, SanyalSN. PI3-kinase/Wnt association mediates COX-2/PGE(2)pathway to inhibit apoptosis in early stages of colon carcinogenesis:chemoprevention by diclofenac[J]. Tumour Biol, 2010, 31(6):623-631. DOI:10.1007/s13277-010-0078-9.
[26]
ZelenayS, van der VeenAG, BöttcherJP, et al. Cyclooxygenase-dependent tumor growth through evasion of immunity[J]. Cell, 2015, 162(6):1257-1270. DOI:10.1016/j.cell.2015.08.015.
[27]
WuAA, DrakeV, HuangHS, et al. Reprogramming the tumor microenvironment:tumor-induced immunosuppressive factors paralyze T cells[J]. Oncoimmunology, 2015, 4(7):e1016700. DOI:10.1080/2162402X.2015.1016700.
[28]
MarkosyanN, ChenEP, EvansRA, et al. Mammary carcinoma cell derived cyclooxygenase 2 suppresses tumor immune surveillance by enhancing intratumoral immune checkpoint activity[J]. Breast Cancer Res, 2013, 15(5):R75. DOI:10.1186/bcr3469.
[29]
GöbelC, BreitenbuecherF, KalkavanH, et al. Functional expression cloning identifies COX-2 as a suppressor of antigen-specific cancer immunity[J]. Cell Death Dis, 2014, 5(12):e1568. DOI:10.1038/cddis.2014.531.
[30]
StolinaM, SharmaS, LinY, et al. Specific inhibition of cyclooxygenase 2 restores antitumor reactivity by altering the balance of IL-10 and IL-12 synthesis[J]. J Immunol, 2000, 164(1):361-370. DOI:10.4049/jimmunol.164.1.361.
[31]
LollPJ, PicotD, GaravitoRM. The structural basis of aspirin activity inferred from the crystal structure of inactivated prostaglandin H2 synthase[J]. Nat Struct Biol, 1995, 2(8):637-643.
[32]
LecomteM, LaneuvilleO, JiC, et al. Acetylation of human prostaglandin endoperoxide synthase-2(cyclooxygenase-2)by aspirin[J]. J Biol Chem, 1994, 269(18):13207-13215.
[33]
SerhanCN. Lipoxins and aspirin-triggered 15-epi-lipoxins are the first lipid mediators of endogenous anti-inflammation and resolution[J]. Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids, 2005, 73(3-4):141-162. DOI:10.1016/j.plefa.2005.05.002.
[34]
FierroIM, KutokJL, SerhanCN. Novel lipid mediator regulators of endothelial cell proliferation and migration:aspirin-triggered-15R-lipoxin A(4)and lipoxin A(4)[J]. J Pharmacol Exp Ther, 2002, 300(2):385-392. DOI:10.1124/jpet.300.2.385.
[35]
RomanoM. Lipoxin and aspirin-triggered lipoxins[J]. Scientific World Journal, 2010, 10(2010):1048-1064. DOI:10.1100/tsw.2010.113.
[36]
DinFV, ValanciuteA, HoudeVP, et al. Aspirin inhibits mTOR signaling, activates AMP-activated protein kinase, and induces autophagy in colorectal cancer cells[J]. Gastroenterology, 2012, 142(7):1504-1515. DOI:10.1053/j.gastro.2012.02.050.
[37]
ReimersMS, BastiaannetE, LangleyRE, et al. Expression of HLA class I antigen, aspirin use, and survival after a diagnosis of colon cancer[J]. Jama Intern Med, 2014, 174(5):732-739. DOI:10.1001/jamainternmed.2014.511.
[38]
LabelleM, BegumS, HynesRO. Direct signaling between platelets and cancer cells induces an epithelial-mesenchymal-like transition and promotes metastasis[J]. Cancer Cell, 2011, 20(5):576-590. DOI:10.1016/j.ccr.2011.09.009.
[39]
AkalayI, JanjiB, HasmimM, et al. Epithelial-to-mesenchymal transition and autophagy induction in breast carcinoma promote escape from T-cell-mediated lysis[J]. Cancer Res, 2013, 73(8):2418-2427. DOI:10.1158/0008-5472.CAN-12-2432.
 
 
展开/关闭提纲
查看图表详情
回到顶部
放大字体
缩小字体
标签
关键词