论著
儿童金黄色葡萄球菌皮肤软组织感染临床分离株的分子及耐药特征研究
中华实用儿科临床杂志, 2018,33(7) : 513-518. DOI: 10.3760/cma.j.issn.2095-428X.2018.07.008
摘要
目的

了解北京地区儿童金黄色葡萄球菌皮肤软组织感染(skin and soft tissue infections,SSTIs)临床分离株的分子学分型、相关毒力基因携带和耐药情况。

方法

收集2016年1月至12月首都医科大学附属北京儿童医院金黄色葡萄球菌SSTIs病例52例,并进行临床资料采集分析。采用头孢西丁纸片法和mecA基因检测鉴定耐甲氧西林金黄色葡萄球菌(methicillin-resistant Staphylococcus aureus,MRSA)或甲氧西林敏感金黄色葡萄球菌(methicillin-susceptible Staphylococcus aureus,MSSA);对所有菌株进行多位点序列分型(multilocus sequence typing,MLST)及葡萄球菌A蛋白(spa)序列分型,并对MRSA菌株进行葡萄球菌盒氏染色体(staphylococcal cassette chromosome mec,SCCmec)分型;采用PCR方法检测pvl、eta、etb、tsst-1及hlg基因;采用琼脂倍比稀释法检测菌株对16种抗生素药物敏感性。

结果

52例金黄色葡萄球菌SSTIs患儿中(其中MRSA SSTIs患儿30例,MSSA 22例),0~1岁23例(44.2%),最常见的疾病为新生儿脐炎12例(12/52株,23.1%),其次为皮肤及软组织脓肿11例(11/52株,21.2%)。MRSA分离株的流行克隆是ST59-MRSA-SCCmecⅣa-t437(14/30株,46.7%),MSSA分离株并未发现明显的流行克隆。共检测出10种序列型(ST型别),以ST22为主(6/22株,27.3%);14种spa型别,其中t309型5株(5/22株,22.7%)。MRSA及MSSA分离株多重耐药率均>85%。对红霉素、青霉素、氯霉素及克林霉素的耐药率分别为100.0%、94.2%、69.2%、63.5%,但均对复方磺胺甲唑、莫匹罗星、夫西地酸、替加环素、利奈唑胺及万古霉素敏感。pvl基因阳性率为40.4%,MRSA和MSSA分离株pvl基因的携带率差异无统计学意义(P>0.05)。2例葡萄球菌性烫伤样皮肤综合征患儿的临床分离株中均检测到etaetb基因。

结论

北京地区儿童金黄色葡萄球菌SSTIs临床分离株多见于新生儿脐炎及脓肿,多重耐药率高,经验性治疗不宜首选红霉素和克林霉素。ST59-MRSA-SCCmecⅣa-t437是MRSA分离株最常见流行克隆,而MSSA分离株的遗传背景更多样化。

引用本文: 刘颖超, 杨鑫, 王丽娟, 等.  儿童金黄色葡萄球菌皮肤软组织感染临床分离株的分子及耐药特征研究 [J] . 中华实用儿科临床杂志, 2018, 33(7) : 513-518. DOI: 10.3760/cma.j.issn.2095-428X.2018.07.008.
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皮肤软组织感染(skin and soft tissue infections,SSTIs)是儿童常见疾病之一,其病情变化程度大,可以是轻度浅表局限性感染,如毛囊炎;也可以是威胁生命的坏死性软组织感染,如坏死性筋膜炎。金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)是引起儿童SSTIs最常见的病原菌,特别是20世纪60年代耐甲氧西林金黄色葡萄球菌(methicillin-resistant Staphylococcus aureus,MRSA)出现以来,在美国、中国台湾等地金黄色葡萄球菌所致SSTIs均呈逐年升高的趋势[1,2]。为了解北京地区儿童金黄色葡萄球菌SSTIs临床分离株的分子特征,本研究对2016年1月至12月首都医科大学附属北京儿童医院收集的金黄色葡萄球菌SSTIs临床分离株进行分子学分型、相关毒力基因携带和抗生素耐药性分析,为预防和治疗金黄色葡萄球菌SSTIs感染提供理论依据。

1 材料与方法
1.1 菌株的来源和鉴定

对2016年1月至12月首都医科大学附属北京儿童医院门诊及病房收集的52例临床及实验室诊断为金黄色葡萄球菌SSTIs病例进行临床资料采集分析,对分离株进行分子生物学、毒力基因及耐药性研究。同一病例检测出的相同菌株作为1株。通过菌落形态学、凝固酶试验和PCR法检测nuc基因进行金黄色葡萄球菌鉴定。采用头孢西丁纸片(英国Oxoid公司)法及PCR方法检测mecA基因进行MRSA菌株的筛选。以金黄色葡萄球菌标准株ATCC25923作为对照质控菌株。本研究通过首都医科大学附属北京儿童医院医学伦理委员会的批准(批准文号2016-93)。

1.2 方法
1.2.1 DNA提取

溶葡萄球菌素(加拿大BBI公司),1 200 U/mg;硅胶模型TM基因组DNA提取试剂盒(北京赛百盛公司),严格按照试剂盒说明书操作。所提DNA作为所有PCR的模板。

1.2.2 多位点序列(multilocus sequence typing,MLST)分型

使用PCR扩增金黄色葡萄球菌的7个管家基因:arcCaroEglpFgmkptatpiyqil。扩增引物参考Enright等[3]的设计,目的片段由北京天一辉远生物技术有限责任公司进行测序。在MLST数据网站(http://www.mlst.net/)进行比对,首先确定每个位点的等位基因编号,然后将该菌株的等位基因编号按照指定的顺序排列得到等位基因谱,即序列型(sequence type,ST),从而判定本株菌的ST类型。

1.2.3 葡萄球菌盒氏染色体(staphylococcal cassette chromosome mec,SCCmec)及其亚型分型

采用Milheiriço等[4,5]提出的多重PCR的方法对MRSA分离株进行SCCmec分型及亚型检测。PCR产物在含溴化乙啶的15 g/L琼脂凝胶中电泳,用凝胶成像仪观察和保存扩增结果。SCCmec分型的标准菌株由日本顺天堂大学Teruyo Ito教授馈赠。

1.2.4 葡萄球菌A蛋白(spa)序列分型

扩增的目的片段测序结果通过spa分型数据库(http://spaserver.ridom.de/)进行分型。spa分型的PCR扩增引物:上游引物:5′-GACGATCCTTCAGTGAGCAAAG-3′;下游引物:5′-GCAGCAATTTTGTCAGCAGTAG-3′。

1.2.5 毒力基因检测

采用PCR方法检测毒力基因pvl、eta、etb、tsst-1、hlg,引物分别参照Jarraud等[6]、Holtfreter等[7]及Lina等[8]的设计。PCR产物在含溴乙啶的15 g/L琼脂凝胶中电泳,用凝胶成像仪观察和保存扩增结果。

1.2.6 药物敏感性试验

根据2017年美国临床实验室标准化研究所制定的标准[9],采用琼脂倍比稀释法检测菌株对青霉素(PEN)、苯唑西林(OXA)、头孢呋辛(CXM)、红霉素(ERY)、克林霉素(CLI)、庆大霉素(GEN)、复方磺胺甲唑(SXT)、环丙沙星(CIP)、氯霉素(CHL)、四环素(TCY)、利福平(RIF)、万古霉素(VAN)、利奈唑胺(LNZ)、夫西地酸(FUS)、莫匹罗星(MUP)、替加环素(TGE)的敏感性,抗生素标准品购自中国药品生物制品鉴定所,以金黄色葡萄球菌ATCC29213作为对照质控菌株。其中FUS和TGE根据2017年欧洲抗生素敏感性委员会(EUCAST,version7.1,2017)的规定界定敏感性(TGE≤0.5 mg/L为敏感,>0.5 mg/L为耐药,FUS≤1 mg/L为敏感,>1 mg/L为耐药)[10]。同时对3类或3类以上抗生素耐药的金黄色葡萄球菌菌株为多重耐药菌株[11]

1.3 统计学处理

使用SPSS 19.0软件进行统计分析。计数资料用例数或菌株数表示,组间比较采用χ2检验或Fishers确切概率法。P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果
2.1 一般资料

52例SSTI患儿中,男26例(50.0%),女26例(50.0%);28例(53.8%)来自城市,24例(46.2%)来自农村;年龄0~15岁,其中0~1岁23例(44.2%),>1~3岁10例(19.2%),>3~6岁9例(17.3%),>6~12岁8例(15.4%),>12~15岁2例(3.8%)。最常见的疾病为新生儿脐炎12例(23.1%),其次为脓肿11例(21.2%),表浅皮肤感染7例(13.5%),颈淋巴结炎5例(9.6%),术后伤口处皮肤感染4例(7.7%),蜂窝织炎3例(5.8%),葡萄球菌性烫伤样皮肤综合征2例(3.8%),烧伤、烫伤及骨折后皮肤感染各1例(各占1.9%),中毒样表皮坏死松解症、甲沟炎、脓疱疮、左足趾感染及坏死性筋膜炎各1例(各占1.9%)。52株金黄色葡萄球菌临床分离株中,30株为MRSA,22株为甲氧西林敏感金黄色葡萄球菌(MSSA);MRSA和MSSA分离株在患儿性别、居住地、不同年龄组及病种方面的差异均无统计学意义(均P>0.05)。

2.2 分子分型

30株MRSA分离株中,共检测出9种ST分型,ST59是最主要的分型(22株,73.3%),ST1、ST30、ST88、ST121、ST338、ST896、ST1224、ST1821各1株(各占3.3%)。SCCmec分型共检测出3种型别,主要为Ⅳa型(24/30株,80.0%),其次为Ⅴ型(4/30株,13.3%),Ⅳg型1株(3.3%),1株无法分型。共检测出10种spa型别,以t437为主(18/30株,60.0%),其次为t441(3/30株,10%),t012、t114、t172、t309、t3515、t3590、t4549及t8660各1株(各占3.3%),1株spa无法分型。MRSA SSTIs临床分离株的流行克隆是ST59-MRSA-SCCmecⅣa-t437,共14株,占46.7%。

22株MSSA分离株中,共检出10种ST分型,以ST22为主(6/22株,27.3%),其次为ST15、ST25各3株(各占13.6%),ST59、ST121、ST188各2株(各占9.1%),ST5、ST6、ST95、ST398各1株(各占4.5%)。ST59型在MRSA及MSSA分离株中均存在。spa分型共14种,其中t309型5株(22.7%),t078、t189型各2株(各占9.1%),t084、t163、t2092、t279、t310、t346、t437、t571、t701、t7065、t954各1株(各占4.5%),2株spa无法分型。MSSA临床分离株并未发现明显的流行克隆。

2.3 药物敏感性比较

抗生素敏感性测定结果见表1。所有菌株对SXT、MUP、FUS、TGE、LNZ及VAN敏感,此外MSSA分离株还对OXA、CXM及RIF敏感。所有菌株对ERY耐药率为100.0%,其次为PEN、CHL及CLI,耐药率分别为94.2%、69.2%、63.5%。MRSA及MSSA分离株多重耐药率均>85%。最常见的耐药表型为ERY-CHL-PEN及ERY-CLI-CHL-PEN,各7株(7/52株,各占13.5%),其次为OXA-ERY-CLI-CHL-CMX-PEN-TCY,5株(5/52株,9.6%)。除OXA及CXM外,MRSA对CLI及TCY的耐药率高于MSSA,且差异有统计学意义(P<0.05)。MRSA有2株分离株同时对8种抗生素耐药,且均属于ST59克隆。

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表1

儿童金黄色葡萄球菌SSTIs临床分离株抗生素敏感性结果

Table 1

Results of the antimicrobial non-susceptibility of Staphylococcus aureus strains isolated from children with SSTIs

表1

儿童金黄色葡萄球菌SSTIs临床分离株抗生素敏感性结果

Table 1

Results of the antimicrobial non-susceptibility of Staphylococcus aureus strains isolated from children with SSTIs

抗生素总数(52株)MRSA耐药率(%)(30株)MSSA耐药率(%)(22株)χ2P
MIC50(mg/L)MIC范围(mg/L)耐药率(%)
青霉素8.0000.023~64.00094.296.790.90.7740.379 0
苯唑西林2.0000.125~64.00040.470.0025.832<0.000 1
头孢呋辛2.0000.190~>256.00021.236.7010.2310.001 4
红霉素>256.0000.750~>256.000100.0100.0100.0
克林霉素>256.0000.125~>256.00063.580.040.98.3640.003 8
庆大霉素1.5000.750~64.0009.63.318.23.2200.072 7
复方磺胺甲0.0470.016~1.500000
环丙沙星0.5000.250~>32.00019.216.722.70.3000.583 8
氯霉素12.0006.000~>256.00069.266.772.70.2190.639 9
四环素0.3800.125~64.00030.843.313.65.2550.021 9
利福平0.0060.004~>32.0001.93.30 1.000 0a
夫西地酸0.1250.031~0.500000
莫匹罗星0.0620.031~1.000000
替加环素0.5000.125~0.500000
万古霉素0.7500.500~1.500000
利奈唑胺2.0002.000~4.000000
多重耐药86.686.786.40.0010.974 8

注:SSTIs:皮肤软组织感染;MRSA:耐甲氧西林金黄色葡萄球菌;MSSA:甲氧西林敏感金黄色葡萄球菌;MIC:最低抑菌浓度;aFishers确切概率法 SSTIs:skin and soft tissue infections;MRSA:methicillin-resistant Staphylococcus aureus;MSSA:methicillin-susceptible Staphylococcus aureus;MIC:minimum inhibitory concentration;aFishers exact test

2.4 毒力基因携带情况

共检测到21株pvl基因阳性金黄色葡萄球菌分离株(21/52株,40.4%)。MRSA和MSSA分离株pvl基因携带率的差异无统计学意义(P>0.05)。此外,还检测到2株eta基因阳性菌株(MRSA、MSSA各1株)、6株etb基因阳性菌株(MRSA、MSSA各3株)及5株tsst-1基因阳性菌株(MRSA 2株,MSSA 3株),52株分离株中均检测到hlg基因。结果见表2。2例葡萄球菌性烫伤样皮肤综合征患儿的临床分离株中均检测到etaetb基因。

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表2

儿童金黄色葡萄球菌SSTIs临床分离株毒力基因携带情况[株(%)]

Table 2

Prevalence of toxin genes among Staphylococcus aureus strains isolated from children with SSTIs[strain(%)]

表2

儿童金黄色葡萄球菌SSTIs临床分离株毒力基因携带情况[株(%)]

Table 2

Prevalence of toxin genes among Staphylococcus aureus strains isolated from children with SSTIs[strain(%)]

毒力基因总数MRSAMSSAχ2P
pvl21(40.1)11(36.7)10(45.5)0.4070.523 4
eta2(3.8)1(3.3)1(4.5) 1.000 0a
etb6(11.5)3(10.0)3(13.6)0.1640.685 1
tsst-15(9.6)2(6.7)3(13.6)0.7090.399 6
hlg100(100.0)30(100.0)30(100.0)

注:SSTIs:皮肤软组织感染;MRSA:耐甲氧西林金黄色葡萄球菌;MSSA:甲氧西林敏感金黄色葡萄球菌;aFishers确切概率法 SSTIs:skin and soft tissue infections;MRSA:methicillin-resistant Staphylococcus aureus;MSSA:methicillin-susceptible Staphylococcus aureus;aFishers exact test

3 讨论

新生儿及婴儿免疫功能尚未发育完善,包括皮肤黏膜等在内的非特异性免疫屏障功能差,易造成SSTIs。美国一项研究显示,1岁以下婴幼儿是金黄色葡萄球菌SSTIs的高发人群,发病率达41.4%[12],这与本研究报道一致。在美国,引起儿童金黄色葡萄球菌SSTIs最常见的疾病为脓肿和蜂窝织炎[13];我国一项多中心调查中显示,我国儿童最常见社区获得性(community-associated,CA)金黄色葡萄球菌SSTIs为脓疱疮和葡萄球菌性烫伤样皮肤综合征[14],而本研究金黄色葡萄球菌SSTIs病种多样化,主要为新生儿脐炎和脓肿,此外还有坏死性筋膜炎等深部的SSTIs,这在临床中需引起重视。本研究结果显示,MRSA与MSSA分离株在不同年龄组及病种方面的差异无统计学意义,这可能与本研究菌株数目相对较少,而疾病种类多有关。

分子生物学分型主要包括MLST、SCCmecspa分型,它对监测菌株遗传背景、同源性,确定爆发流行菌株的基因型及扩散趋势具有重要意义。在世界不同地区,MRSA SSTIs临床分离株的分子生物学分型不同。美国主要以ST8(USA300)为主,欧洲以ST80为主,中国台湾地区以ST59为主,而上海地区则以ST338为主[2,15,16,17]。本研究中主要的ST流行型别为ST59,占73.3%,而2017年刘盈等[18]的多中心研究则报道ST121为最主要流行型别,且多分布在东北、华北、华南和西南4个地区的6家儿童医院,与本研究不一致。这说明在我国不同地区其流行型别亦不同。因此未来需要开展更多相关的多中心研究,以了解我国不同地区儿童MRSA SSTIs临床分离株的分布情况。

本研究中MSSA SSTIs临床分离株共发现10种ST型别,与MRSA相比,表现出更多样化的遗传背景。在俄罗斯、德国及新加坡等地,ST22是MRSA,特别是院内获得性(hospital-associated,HA)-MRSA分离株的主要流行克隆[19,20,21]。而Masiuk等[22]报道,pvl(+)-ST22型是疖患者分离出的MSSA菌株中最常见的ST型别。本研究结果显示,ST22型仅在MSSA SSTIs临床分离株中发现,且为其主要ST型别,占27.3%。同时值得注意的是,ST59通常被认为是我国儿童CA-MRSA的主要流行克隆[23]。本研究在MRSA与MSSA SSTIs临床分离株中均检测到了ST59型。在中国台湾地区,ST59-MSSA菌株约占ST59型金黄色葡萄球菌的8.8%[24];在我国上海地区肺炎儿童中分离的MRSA与MSSA菌株中也均发现了ST59型[25]。Hung等[24]研究发现克隆复合体(CC)59 MSSA通过获得不同的可移动基因元件,从而进化为CC59 MRSA并获得不同耐药性及毒力。这可能也揭示了MSSA ST22/ST59作为MRSA ST22/ST59菌株出现的"储蓄池"作用。

SCCmec是一种携带mecA基因的可移动基因元件,是MRSA的特征性分子结构。目前根据mec复合体及ccr复合体的不同,可将MRSA分为11种SCCmec型别(Ⅰ~Ⅺ型)。通常SCCmec分型被认为是区分HA-MRSA和CA-MRSA的一项重要分子标志,HA-MRSA携带SCCmec Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ型,而CA-MRSA则携带SCCmec Ⅳ、Ⅴ和Ⅶ型。本研究中,儿童SSTIs MRSA临床分离株最主要流行克隆是ST59-MRSA-SCCmecⅣa-t437,这与本课题组前期报道一致[26],这说明该MRSA分离株可能是社区来源。但近年来不断报道HA-MRSA和CA-MRSA之间的界限不明确,Song等[27]在亚洲多国的CA-MRSA菌株中检测到SCCmec Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ型菌株;而Orendi等[28]则发现HA-MRSA菌株携带Ⅳ型SCCmec。因此不能仅通过分子分型,而应通过临床特征来确定菌株来源。

目前外科干预及抗生素仍是治疗SSTIs最主要的措施。Ruhe等[29]研究发现,及时、有效的抗生素治疗可提高MRSA SSTIs的治愈率。因此加强对金黄色葡萄球菌SSTIs临床分离株药物敏感性的监测,合理选择抗生素十分必要。本研究中,儿童金黄色葡萄球菌SSTIs临床分离株的多重耐药率达86.6%,对ERY、PEN、CHL及CLI的耐药率均>60%。这与Yu等[30]报道的我国温州地区金黄色葡萄球菌SSTIs临床分离株多重耐药率达72.7%一致,但高于美国的31.0%[31]。在美国和欧洲地区,由于CLI在皮肤和伤口渗出液中分布良好,所以常被用来治疗葡萄球菌SSTIs[32]。本研究中,MRSA和MSSA分离株对ERY和CLI的耐药率均高,因此在临床治疗金黄色葡萄球菌SSTIs时应根据药敏试验结果选择合适的抗生素。本研究中菌株均对SXT、MUP、FUS、TGE、LNZ及VAN敏感,提示上述药物可作为金黄色葡萄球菌SSTIs初始经验治疗的首选药物。值得注意的是,本研究发现2株ST59型MRSA分离株同时对8种抗生素耐药。上海地区也报道了多重耐药的ST59-MRSA菌株[33]。这提示,ST59型分离株耐药性比其他克隆型高,临床对ST59型菌株用药须提高警惕,为阻止其传播,需进一步监测其耐药性及流行情况。

自20世纪60年代MRSA出现以来,万古霉素被认为是治疗MRSA感染"最后的防线"。但万古霉素对MRSA的MIC逐年上升,形成MIC"漂移"现象,导致临床治疗失败率增加[34]。本研究中,所有菌株对万古霉素敏感,MIC50为0.75 mg/L,较本课题组2013年的报道升高[35]。因此需要监测菌株万古霉素MIC变化,及时调整药物剂量,提高MRSA感染治愈率。

金黄色葡萄球菌所致SSTIs的表现与其产生的多种外毒素相关。如中毒休克综合征毒素-1(toxic shock syndrome toxin-1,TSST-1),与葡萄球菌中毒性休克综合征密切相关,可引起皮肤脱皮及多器官衰竭[36]。表皮剥脱素A和B(exfoliatin A and exfoliatin B,ETA和ETB)则与葡萄球菌烫伤样皮肤综合征有关,可引起局部和全身的水疱形成[37]。本研究中,2例葡萄球菌性烫伤样皮肤综合征患儿的临床分离株均检测到etaetb基因。杀白细胞素(Panton-Valentine leukocidin,PVL)和γ-溶血素(γ-hemolysin,Hlg)主要破坏免疫细胞,如多核细胞和巨噬细胞,从而引起皮肤软组织脓肿形成[38]。既往报道pvl基因在CA-MRSA中的携带率明显高于MSSA[39],但近期在法国出现了pvl(+)-MSSA SSTIs的暴发[40]。本研究中,儿童金黄色葡萄球菌SSTIs分离株pvl基因携带率为40.4%,与我国武汉地区报道一致[41]。并且MRSA和MSSA SSTIs临床分离株的pvl基因携带率差异无统计学意义,因此,除pvl(+)MRSA菌株外,还需加强对我国pvl(+)-MSSA菌株的监测。

综上,本研究中儿童金黄色葡萄球菌SSTIs常见于新生儿脐炎及脓肿,其多重耐药率高,经验性治疗中不宜首选红霉素和克林霉素。MRSA和MSSA SSTIs临床分离株pvl基因携带率均较高。ST59-MRSA-SCCmecⅣa-t437是MRSA分离株最常见流行克隆,而MSSA分离株的遗传背景更多样化。

参考文献
[1]
RayGT, SuayaJA, BaxterR. Microbiology of skin and soft tissue infections in the age of community-acquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus[J]. Diagn Microbiol Infect Dis, 2013, 76(1): 24-30.DOI: 10.1016/j.diagmicrobio.2013.02.020.
[2]
ChenFJ, LauderdaleTL, HuangIW, et al.Methicillin-resistant Staphylococcus aureus in Taiwan[J]. Emerg Infect Dis, 2005, 11(11): 1760-1763.
[3]
EnrightMC, DayNP, DaviesCE, et al.Multilocus sequence typing for characterization of methicillin-resistant and methicillin-susceptible clones of Staphylococcus aureus[J]. J Clin Microbiol, 2000, 38(3): 1008-1015.
[4]
MilheiriçoC, OliveiraDC, de LencastreH. Multiplex PCR strategy for subtyping the staphylococcal cassette chromosome mec type Ⅳ in methicillin-resistant Staphylococcus aureus: " SCC mec Ⅳ multiplex" [J]. J Antimicrob Chemother, 2007, 60(1): 42-48.
[5]
MilheiriçoC, OliveiraDC, de LencastreH. Update to the multiplex PCR strategy for assignment of mec element types in Staphylococcus aureus[J]. Antimicrob Agents Chemother, 2007, 51(9): 3374-3377.DOI: 10.1128/AAC.00275-07.
[6]
JarraudS, MougelC, ThioulouseJ, et al.Relationships between Staphylococcus aureus genetic background, virulence factors, agr groups (alleles), and human disease[J]. Infect Immun, 2002, 70(2): 631-641.
[7]
HoltfreterS, GrumannD, SchmuddeM, et al.Clonal distribution of superantigen genes in clinical Staphylococcus aureus isolates[J]. J Clin Microbiol, 2007, 45(8): 2669-2680.DOI: 10.1128/JCM.00204-07.
[8]
LinaG, PiemontY, Godail-GamotF, et al.Involvement of Panton-Valentine leukocidin-producing staphylococcus aureus in primary skin infections and pneumonia[J]. Clin Infect Dis, 1999, 29(5): 1128-1132.DOI: 10.1086/313461.
[9]
Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). Performance Stan-dards for Antimicrobial Susceptibility Testing, 28th ed[EB/OL]. (2018-01-11)[2018-01-30]. https://clsi.org/standards/products/microbio-logy/documents/m100/.
[10]
The European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing.Breakpoint tables for interpretation of MICs and zone diameters[EB/OL]. (2017-03-12)[2017-07-01]. http://www.eucast.org/.
[11]
MagiorakosAP, SrinivasanA, CareyRB, et al.Multidrug-resistant, extensively drug-resistant and pandrug-resistant bacteria: an international expert proposal for interim standard definitions for acquired resistance[J]. Clin Microbiol Infect, 2012, 18(3): 268-281.DOI: 10.1111/j.1469-0691.2011.03570.x.
[12]
SalazarL, QuicenoJNJ.High frequency of S. aureus (MSSA-MRSA) in children under 1 year old with skin and soft tissue infections[J]. J Pediatr (Rio J), 2017, [Epub ahead of Print]. DOI: 10.1016/j.jped.2017.06.020.
[13]
MillerLG, EisenbergDF, LiuH, et al.Incidence of skin and soft tissue infections in ambulatory and inpatient settings, 2005-2010[J]. BMC Infect Dis, 2015, 15: 362.DOI: 10.1186/s12879-015-1071-0.
[14]
LiuY, XuZ, YangZ, et al.Characterization of community-associated Staphylococcus aureus from skin and soft-tissue infections: a multicenter study in China[J]. Emerg Microbes Infect, 2016, 5(12): e127.DOI: 10.1038/emi.2016.128.
[15]
GuFF, HouQ, YangHH, et al.Characterization of staphylococcus aureus isolated from non-native patients with skin and soft tissue infections in Shanghai[J]. PLoS One, 2015, 10(4): e0123557.DOI: 10.1371/journal.pone.0123557.
[16]
DrougkaE, FokaA, LiakopoulosA, et al.A 12-year survey of methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections in Greece: ST80-Ⅳ epidemic?[J]. Clin Microbiol Infect, 2014, 20(11): O796-803.DOI: 10.1111/1469-0691.12624.
[17]
MoranGJ, KrishnadasanA, GorwitzRJ, et al.Methicillin-resistant S-aureus infections among patients in the emergency department[J]. N Engl J Med, 2006, 355(7): 666-674.DOI: 10.1056/NEJMoa055356.
[18]
刘盈孙娟杨舟儿童皮肤软组织感染社区相关性耐甲氧西林金黄色葡萄球菌分子特征多中心研究[J].中华实用儿科临床杂志201732(10): 752-755.DOI:10.3760/cma.j.issn.2095-428X.2017.10.009.
LiuY, SunJ, YangZ, et al.Multicenter study on the molecular characteristics of community-associated methicillin-resistant Staphylococcus aureus in children with skin and soft tissue infection[J]. Chin J Appl Clin Pediatr, 2017, 32(10): 752-755.DOI: 10.3760/cma.j.issn.2095-428X.2017.10.009.
[19]
GostevV, KruglovA, KalinogorskayaO, et al.Molecular epidemiology and antibiotic resistance of methicillin-resistant Staphylococcus aureus circulating in the Russian Federation[J]. Infect Genet Evol, 2017, 53: 189-194.DOI: 10.1016/j.meegid.2017.06.006.
[20]
ChowA, LimVW, KhanA, et al.MRSA transmission dynamics among interconnected acute, Intermediate-term, and long-term healthcare facilities in Singapore[J]. Clin Infect Dis, 2017, 64(Suppl 2): S76-81.DOI: 10.1093/cid/cix072.
[21]
HoltfreterS, GrumannD, BalauV, et al.Molecular epidemiology of staphylococcus aureus in the general population in Northeast Germany: results of the study of health in pomerania (SHIP-TREND-0)[J]. J Clin Microbiol, 2016, 54(11): 2774-2785.DOI: 10.1128/JCM.00312-16.
[22]
MasiukH, KopronK, GrumannD, et al.Association of recurrent furunculosis with Panton-Valentine leukocidin and the genetic background of Staphylococcus aureus[J]. J Clin Microbiol, 2010, 48(5): 1527-1535.DOI: 10.1128/JCM.02094-09.
[23]
GengW, YangY, WuD, et al.Molecular characteristics of community-acquired, methicillin-resistant Staphylococcus aureus isolated from Chinese children[J]. FEMS Immunol Med Microbiol, 2010, 58(3): 356-362.DOI: 10.1111/j.1574-695X.2010.00648.x.
[24]
HungWC, WanTW, KuoYC, et al.Molecular evolutionary pathways toward two successful community-associated but multidrug-resistant ST59 methicillin-resistant staphylococcus aureus lineages in Taiwan: dynamic modes of mobile genetic element salvages[J]. PLoS One, 2016, 11(9): e0162526.DOI: 10.1371/journal.pone.0162526.
[25]
SongZ, GuFF, GuoXK, et al.Antimicrobial resistance and molecular characterization of Staphylococcus aureus causing childhood pneumonia in Shanghai[J]. Front Microbiol, 2017, 8: 455.DOI: 10.3389/fmicb.2017.00455.
[26]
GengW, YangY, WangC, et al.Skin and soft tissue infections caused by community-associated methicillin-resistant staphylococcus aureus among children in China[J]. Acta Paediatr, 2010, 99(4): 575-580.DOI: 10.1111/j.1651-2227.2009.01645.x.
[27]
SongJH, HsuehPR, ChungDR, et al.Spread of methicillin-resistant Staphylococcus aureus between the community and the hospitals in Asian countries: an ANSORP study[J]. J Antimicrob Chemother, 2011, 66(5): 1061-1069.DOI: 10.1093/jac/dkr024.
[28]
OrendiJM, CoetzeeN, EllingtonMJ, et al.Community and nosocomial transmission of Panton-Valentine leucocidin-positive community-associated meticillin-resistant Staphylococcus aureus: implications for healthcare[J]. J Hosp Infect, 2010, 75(4): 258-264.DOI: 10.1016/j.jhin.2010.03.023.
[29]
RuheJJ, SmithN, BradsherRW, et al.Community-onset methicillin-resistant Staphylococcus aureus skin and soft-tissue infections: impact of antimicrobial therapy on outcome[J]. Clin Infect Dis, 2007, 44(6): 777-784.DOI: 10.1086/511872.
[30]
YuF, LiuY, LvJ, et al.Antimicrobial susceptibility, virulence determinant carriage and molecular characteristics of Staphylococcus aureus isolates associated with skin and soft tissue infections[J]. Braz J Infect Dis, 2015, 19(6): 614-622.DOI: 10.1016/j.bjid.2015.08.006.
[31]
LeeGC, DallasSD, WangY, et al.Emerging multidrug resistance in community-associated Staphylococcus aureus involved in skin and soft tissue infections and nasal colonization[J]. J Antimicrob Chemother, 2017, 72(9): 2461-2468.DOI: 10.1093/jac/dkx200.
[32]
StevensDL, BisnoAL, ChambersHF, et al.Practice guidelines for the diagnosis and management of skin and soft-tissue infections[J]. Clin Infect Dis, 2005, 41(10): 1373-1406.DOI: 10.1086/497143.
[33]
WangX, LiX, LiuW, et al.Molecular characteristic and virulence gene profiles of community-associated methicillin-resistant staphylococcus aureusIsolates from pediatric patients in Shanghai, China[J]. Front Microbiol, 2016, 7: 1818.DOI: 10.3389/fmicb.2016.01818.
[34]
BrittNS, PatelN, ShiremanTI, et al.Relationship between vancomycin tolerance and clinical outcomes in Staphylococcus aureus bacteraemia[J]. J Antimicrob Chemother, 2017, 72(2): 535-542.DOI: 10.1093/jac/dkw453.
[35]
孙明姣王丽娟刘颖超儿童社区获得性耐甲氧西林金黄色葡萄球菌皮肤软组织感染临床分离株的分子特征及耐药性研究[J].中国感染与化疗杂志201313(1): 19-24.DOI:10.3969/j.issn.1009-7708.2013.01.004.
SunMJ, WangLJ, LiuYC, et al.Molecular characterization and antimicrobial resistance of community-associated methicillin-resistant Staphylococcus aureus strains isolated from children with skin and soft tissue infections[J]. Chin J Infect Chemother, 2013, 13(1): 19-24.DOI: 10.3969/j.issn.1009-7708.2013.01.004.
[36]
WarnerJE, OnderdonkAB.Diversity of toxic shock syndrome toxin 1-positive Staphylococcus aureus isolates[J]. Appl Environ Microbiol, 2004, 70(11): 6931-6935.DOI: 10.1128/AEM.70.11.6931-6935.2004.
[37]
HanakawaY, SchechterNM, LinC, et al.Molecular mechanisms of blister formation in bullous impetigo and staphylococcal scalded skin syndrome[J]. J Clin Invest, 2002, 110(1): 53-60.DOI: 10.1172/JCI15766.
[38]
DiepBA, SensabaughGF, SomboonnaN, et al.Widespread skin and soft-tissue infections due to two methicillin-resistant Staphylococcus aureus strains harboring the genes for Panton-Valentine leucocidin[J]. J Clin Microbiol, 2004, 42(5): 2080-2084.
[39]
MoneckeS, SlickersP, EllingtonMJ, et al.High diversity of Panton-Valentine leukocidin-positive, methicillin-susceptible isolates of Staphy-lococcus aureus and implications for the evolution of community-associated methicillin-resistant S. aureus[J]. Clin Microbiol Infect, 2007, 13(12): 1157-1164.DOI: 10.1111/j.1469-0691.2007.01833.x.
[40]
BourigaultC, CorvecS, BruletV, et al.Outbreak of skin infections due to Panton-Valentine Leukocidin-Positive Methicillin-Susceptible staphy-lococcus aureus in a French prison in 2010-2011[J]. PLoS Curr, 2014, 6: 10.DOI: 10.1371/currents.outbreaks.e4df88f057fc49e25-60a235e0f8f9fea.
[41]
LiuX, LiangJ, JiangY, et al.Molecular characteristics of community-acquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus strains isolated from outpatients with skin and soft tissue infections in Wuhan, China[J]. Pathog Dis, 2016, 74(4): ftw026.DOI: 10.1093/femspd/ftw026.
 
 
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