综述
EB病毒相关淋巴瘤的研究进展
白血病·淋巴瘤, 2018,27(10) : 624-628. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1009-9921.2018.10.014
摘要

多种淋巴瘤的发生、发展过程与EB病毒感染密切相关,包括B细胞淋巴瘤、NK/T细胞淋巴瘤、霍奇金淋巴瘤及移植后淋巴组织增生性疾病等。研究表明EB病毒潜伏性感染相关的基因表达产物在上述淋巴瘤发展过程中起到至关重要的作用。文章就EB病毒的结构与生物学特性、基因表达产物、致瘤机制及其相关淋巴瘤的研究进展作一综述。

引用本文: 付淳曦, 邹立群. EB病毒相关淋巴瘤的研究进展 [J] . 白血病·淋巴瘤, 2018, 27(10) : 624-628. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1009-9921.2018.10.014.
参考文献导出:   Endnote    NoteExpress    RefWorks    NoteFirst    医学文献王
扫  描  看  全  文

正文
作者信息
基金 0  关键词  0
English Abstract
评论
阅读 0  评论  0
相关资源
引用 | 论文 | 视频

版权归中华医学会所有。

未经授权,不得转载、摘编本刊文章,不得使用本刊的版式设计。

除非特别声明,本刊刊出的所有文章不代表中华医学会和本刊编委会的观点。

恶性淋巴瘤种类繁多,发病机制复杂,近年来,淋巴瘤已成为发病率增长速度最快的淋巴造血系统恶性肿瘤[1]。由于其病因和发病机制迄今尚不清楚,且大量研究发现EB病毒(EBV)在伯基特淋巴瘤(BL)、弥漫大B细胞淋巴瘤(DLBCL)、霍奇金淋巴瘤(HL)及NK/T细胞淋巴瘤中的检出率显著高于其他肿瘤,推测EBV可能在肿瘤发病过程中起到重要作用。我国学者通过对淋巴瘤患者血清中EBV的动态变化观察也发现,EBV阳性淋巴瘤患者乳酸脱氢酶(LDH)水平与EBV DNA含量呈正相关,预示着EBV DNA及LDH动态检测可作为EBV阳性淋巴瘤患者治疗效果及随访评估指标[2]。而分子生物等技术的发展与运用进一步推动了对EBV致瘤性基因表达产物及其致瘤机制的深入研究。文章就EBV的生物学特性、致瘤机制及治疗策略的研究进展作一综述。

1 EBV的结构与生物学特性

EBV是第一个被证实与人体肿瘤相关的病毒,也是唯一感染人类的嗜人类B淋巴细胞的双链线性DNA病毒。最初由Epstein等[3]于1964年从非洲儿童BL标本的体外传代细胞中分离出来,故命名为EBV。EBV主要通过唾液、口腔黏膜的接触在人群中传播,也可经输血和性行为传播。据估计全世界约90%以上的成年人曾感染过EBV,但大多数仅表现为自限性潜伏性感染[4]。EBV通过外膜糖蛋白gp350与淋巴细胞膜上EBV受体(主要是CD21或CR2)结合而进入B淋巴细胞、T淋巴细胞、NK细胞,并很快进入潜伏期,潜伏期可维持很长一段时间甚至终身感染,极少数可被激活导致EBV相关性上皮细胞肿瘤或淋巴瘤。在潜伏期,病毒DNA以自身环化形式存在,表达约11种基因,其中包括6种核抗原[EBV核抗原(EBNA)1、EBNA2、EBNA3A、EBNA3B、EBNA3C和EBNA-LP],3种潜伏细胞膜蛋白(LMP1、LMP2A和LMP2B),BamHIA片段转录产物(BART),以及2种非编码非多聚RNA EBER1和EBER2[4],这11种基因并非同时表达,故潜伏感染被分为3种模式:潜伏Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ型[5]。在增殖感染期,病毒DNA以线性分子形式插入宿主DNA,众多可编码基因按序表达,合成EBV早期抗原、EBV壳抗原和EBV膜抗原,并组装成完整颗粒而释放,从而导致受感染细胞溶解死亡。

2 EBV潜伏性感染基因表达产物及其致瘤机制

在体外实验中,EBV将B细胞转化为类淋巴母细胞,并成为永久细胞,这一特性是其致瘤的生物学基础。而在体内感染中,EBV可逃避机体的免疫监视,可能的机制包括:(1)EBV自身基因突变改变其抗原性从而逃避细胞毒性T淋巴细胞(CTL)的识别和攻击;(2)EBV的蛋白产物改变机体正常免疫系统功能,如产物BCRF1可抑制干扰素(IFN)-γ的合成,另一产物BRAF1作为一种可溶性受体可与体内的某些因子如集落刺激因子1(CSF-1)结合并干扰其正常功能,而IFN-γ与CSF-1可抑制EBV受染细胞的增殖、分化;(3)EBV编码的膜蛋白与机体正常细胞产生的膜蛋白具有同源性;(4)EBNA1可阻止溶解酶的降解作用,从而减少其衍生的肽类被降解后产生的抗原性物质与CTL结合,阻止CTL活化[6]

2.1 EBNA1

EBNA1是一种DNA结合蛋白,与基因组复制起点(oriP)相结合,以维持EBV基因组在宿主细胞中的环化状态,目前认为与EBV基因组的复制及稳定性有关。所有类型的潜伏性感染均可见EBNA1的表达,这意味着EBNA1可能是EBV实现潜伏性感染不可或缺的条件之一。EBV感染细胞中,EBNA1与Sp1蛋白结合形成的复合物结合到凋亡抑制蛋白Survivin基因启动子顺式元件上,可上调其表达[7];另外,EBNA1与EBV基因组Qp下游的启动序列相互作用,下调其自身表达;EBNA1类似反式激活因子,可激活STAT1信号通路,从而抑制TGFβ-1通路[8]。有报道称EBNA1在鼻咽癌中可通过抑制IKKα/β磷酸化而抑制受感染细胞的NF-κB信号通路,导致受感染细胞的生长、分化及凋亡过程出现异常[9]。也有研究证明EBNA1表达与CK18呈负相关,而与Vimentin蛋白呈正相关,EBNA1的表达促进了上皮-间质转换[10]

2.2 EBNA2

EBNA2是一种启动细胞与病毒转录的酸性磷蛋白,是维持B细胞永生状态最重要的病毒产物之一,丢失EBNA2基因的EBV无法转化淋巴细胞为永生细胞,而将EBNA2基因重组到缺陷EBV中可恢复其转化能力[11]。同时,EBNA2还可上调CD21、CD23、LMP的表达,已有研究证明EBNA2协同LMP1上调STAT3的转录与淋巴瘤的发生密切相关[12]

2.3 EBNA3

EBNA3家族包括EBNA3A、EBNA3B、EBNA3C,其中EBNA3A、EBNA3C通过影响细胞周期而促进肿瘤细胞增殖,二者可与LMP1、EBNA2协同作用完成B细胞向永生细胞的转化,而EBNA2则非必须。有研究[13]报道,EBNA3A、EBNA3C通过阻遏细胞周期G1期向G2期和(或)G2期向M期的转换而抑制正常细胞的生长和增殖。在DLBCL中,EBNA3A和EBNA3B是潜在的致癌基因,可抑制促凋亡基因及诱导衰老基因的表达,EBNA3的特异性表达也促进了肿瘤进展。

2.4 EBNA4/EBNA-LP

EBNA4由EBNA mRNA先导链编码,其蛋白表达由BamHIW重复序列控制[14]。EBNA4与pRb、p53存在共区域化,但EBNA4并不能抑制p53的激活。EBNA4与EBNA2相互协同可上调LMP-1、LMP-2的表达,促进恶性肿瘤的发生。

2.5 LMP1

LMP1被公认为EBV致瘤最关键的基因。LMP1是EBV的主要编码蛋白,是一种相对分子质量为63×103的跨膜蛋白,类似肿瘤坏死因子受体超家族的CD40[15],其膜外的氨基端可将LMP1定位于受感染细胞,其膜内羧基端则通过激活诸多信号通路实现信号转导,如LMP1可激活NF-κB信号通路的转导,NF-κB通过抑制p53依赖的细胞凋亡,上调抗凋亡基因bcl-2、Mcl-1以及A20的表达[16];另外,LMP1亦可激活PI3K-PI通路,促进细胞有丝分裂的发生;LMP1还可激活JNK、ERK、JAK-STAT、p38等通路,继而激活MARK通路,从而使受感染细胞走向永生[17]。苏红等[18]针对438例不同类型淋巴瘤EBV的分布特点做出如下分析:在B细胞非霍奇金淋巴瘤(B-NHL)、NK/T细胞淋巴瘤和HL中,EBER阳性率分别为5.4%、16.5%和59.7%,LMP1阳性率分别为5.4%、5.2%和59.7%。在NK/T细胞淋巴瘤中LMP1蛋白表达与EBER表达具有不一致性,但在B-NHL及HL中LMP1蛋白表达与EBER表达具有一致性,因此,出于经济学考虑,LMP1可代替EBER用于EBV的检测。

2.6 LMP2

LMP2也是一种跨膜蛋白,包括LMP2A和LMP2B,且LMP2并非EBV转化B淋巴细胞所必需。有研究证明,LMP2A通过磷酸化信号转导及STAT3上调受感染细胞中DNA甲基转移酶1(DNMT1),进而使某些抑癌基因CpG岛发生甲基化,阻断抑癌基因的表达,从而促进受感染B淋巴细胞发生增殖、分化[19]

2.7 EBER

EBER是EBV自身基因组表达的核糖核蛋白分子,由自身抗原La、核糖体蛋白L22、双链RNA激活蛋白激酶(PKR)组装而成。其PKR经dsRNA激活后可磷酸化eIF2α,从而抑制病毒转录,并且可协同干扰素抗病毒效应。而EBER的主要作用是抑制PKR激活,下调eIF2α的磷酸化,从而起始转录,以维持EBV在宿主细胞中的持续性感染。其次,EBER还可上调抗凋亡蛋白bcl-2的表达起到抗凋亡作用。

3 EBV相关淋巴瘤的研究进展
3.1 HL

EBV与HL的相关性早已被证实,尤其与经典型霍奇金淋巴瘤(cHL)的组织学亚型密切相关。大量的数据提示,混合细胞型(MC)的EBV检出率为80%~100%,淋巴细胞消减型(LD)和结节硬化型(NS)约为30%,而淋巴细胞为主型(LP)几乎没有EBV检出。有研究表明,EBV阳性的、分期较早的特定cHL亚型生存率明显较EBV阴性者低,且EBV阳性应当作为cHL预后不良因素之一[19]。我国学者应用组织芯片探讨凋亡及EB病毒与cHL的关系,认为凋亡是cHL的一个发病因素,bcl-2的过表达可阻断细胞凋亡,促进肿瘤的生长,但凋亡与临床分期及分型均无相关性;且EBV与临床分期、分型及凋亡亦无相关性,其发病机制仍尚未清楚[20]。HL主要表现为潜伏Ⅱ型,在受感染的RS细胞中LMP1高表达,可能与类似CD40受体的蛋白激活NF-κB通路有关,有学者利用针对LMP1表位抗原的病毒疫苗成功抑制了HL小鼠的肿瘤生长。

3.2 BL

BL是最早被证实与EBV感染相关的B细胞淋巴瘤。散发性BL见于世界各地,其EBV检出率为5%~15%。但在巴西东北部,BL可检出超过80%与EBV相关[21];免疫缺陷相关性BL常与人类免疫缺陷病毒(HIV)感染有关,多见于发达国家,此类BL常出现在HIV感染早期,其EBV检出率为30%~40%。

近年微RNA(miRNA)在BL发生、发展中的作用逐渐受到重视。不同生发中心来源的BL具有不同的发病机制,如生发中心亮区来源的EBV+的Raji高表达hsa-miR-9,而生发中心暗区来源的EBV-的Ramos低表达hsa-miR-9,且相关实验证实,hsa-miR-9可正向调控bcl-6的表达[22]。miR-127在EBV+的BL中存在高表达,而在EBV-的散发性和地方性BL中类似于淋巴结反应性增生[23]。另外,转录因子LEF/TCF家族成员中的淋巴增强因子1(LEF1)是Wnt信号通路重要的核内转录因子,而Wnt信号通路与BL的发生、发展密切相关。有关实验表明LEF1的靶基因功能与细胞信号转导、细胞增殖、细胞周期调节、代谢调节和细胞分化有关,且LEF1表达与c-myc基因无关,故LEF1有望成为BL的治疗靶点之一[24]。目前对于儿童BL的治疗,常采用BMF-90方案化疗,该方案强度大,治愈率高,对于成年患者,R-EPOCH方案化疗也可达到较好的疗效。

3.3 EBV+ DLBCL

EBV+ DLBCL是EBV相关性B细胞淋巴瘤中较常见的一种,且EBV+是DLBCL的独立危险因素之一。该病少见于儿童及青少年,常见于50岁以上无免疫缺陷者,在2008年世界卫生组织(WHO)分类中被命名为"老年人EBV+弥漫大B细胞淋巴瘤"。但是在目前治疗经验中,由于该类患者大多年龄较高,常出现结外器官受累、B症状、体能条件较差等,常规R-CHOP方案后,往往无法再耐受更高强度的足量足疗程化疗,因此在老年患者中除化疗外针对EBV潜伏抗原的免疫治疗尚为可行的探索方向。但该病在年轻患者中的研究价值值得关注,Lu等[7]针对46例年龄≤45岁(4~45岁)的年轻患者进行临床及病理特征分析,发现其男女比例为3.6∶1,中位发病年龄为23岁;发生于年轻患者的形态学表现常为富于T细胞/组织细胞大B细胞淋巴瘤形态;其中,11%的患者出现结外器官受累,所有的患者均伴有淋巴结肿大;93%的患者表现为EBV潜伏性感染Ⅱ期,7%为Ⅲ期;58%的患者常规采用CHOP方案化疗,21%的患者局部病灶联合放疗。这项研究的结果是82%的患者达到临床缓解,8%的患者死亡,说明在EBV+的DLBCL中,年轻患者比老年患者具有更好的预后,该类型也在2016年的WHO淋巴造血组织肿瘤分类中被更名为"EB+ DLBCL,非特殊型"。此外,基因修饰的T细胞治疗也在DLBCL中得到充分发展,嵌合抗原受体T细胞(CAR-T)可在体内增殖并具有持续的细胞毒活性,CD19表达阳性的复发难治B细胞淋巴瘤在CAR-T治疗中也获得了显著的效果。

3.4 原发中枢神经系统DLBCL(PCNS-DLBCL)

PCNS-DLBCL是一种少见的仅累及中枢神经系统的结外侵袭性B细胞淋巴瘤。患者大多为男性,免疫表型多为非GC来源,通常情况下,EBV+ PCNS-DLBCL预后很差,5年生存率为20%~30%,而HIV+且合并EBV感染者则生存期更短。PCNS-DLBCL患者脑脊液白细胞介素10(IL-10)升高,可能由肿瘤细胞及肿瘤微环境中CD68+巨噬细胞共同参与,MYD88参与了IL-10的调控机制,而NF-κB信号通路可能不是影响IL-10合成分泌的主要机制[25]。目前,PCNS-DLBCL的治疗大多采用可以跨越血脑屏障的药物(如高剂量的甲氨蝶呤和阿糖胞苷)化疗,联合全脑放疗的巩固治疗,同时利妥昔单抗的使用可提高生存率。

3.5 NK/T细胞淋巴瘤

NK/T细胞淋巴瘤占NHL 5%~15%,与B细胞淋巴瘤相比预后更差。鼻腔或鼻咽部是该病最常见的发病部位,少数患者可见于皮肤、消化道、肾、睾丸[26]。Suzuki等[27]发现EBV在NK/T细胞淋巴瘤中的阳性检出率可达90%以上,EBV-DNA定量检测可用于肿瘤负荷的评估,也可用于指导早期鼻型NK/T细胞淋巴瘤的分期及预后,DNA拷贝数越高,其临床分期更晚,预后更差。在中线T细胞淋巴瘤(MTL)中,我国学者运用原位杂交和免疫组织化学技术检测20例MTL,观察其EBV的存在情况,发现20例MTL患者中EBER1阳性率达70%,LMP1检出率50%,表明EBV感染与MTL存在密切关系[28]。另外,Ramakrishnan等[29]发现,EBV BamHIA编码区(BART)9 miRNA的表达与LMP1的表达呈正相关,当BART9 miRNA的表达降低时,LMP1表达同样降低,NK/T淋巴瘤细胞增殖受到抑制,反之肿瘤细胞增殖增加。目前的临床研究已证实P-GEMOX等方案化疗联合放疗取得了显著的疗效,相关化疗方案的探索也在不断进行中。另一方面,Murata等[30]发现热休克蛋白90(HSP90)抑制剂可以抑制EBV+ NK/T细胞淋巴瘤中LMP1的表达和增殖,这种调节与细胞信号通路JAK-STST、NF-κB中的IL-2相关。在潜伏Ⅱ型感染中,C/EBP也可促进LMP1表达,而HSP90抑制剂亦可作用于C/EBP。这一研究使HSP90抑制剂有望成为治疗EBV+ NK/T细胞淋巴瘤的有效药物之一。

3.6 EBV相关的移植后淋巴组织增生性疾病(EBV-PTLD)

器官移植后需要行免疫抑制治疗,而PTLD正是移植早期致命的并发症之一,其发生率为0~30%,且有研究证明PTLD与EBV感染相关,大多数属于B细胞淋巴瘤[31]。一旦确诊PTLD,其首要目标是治愈,其次是保留移植物功能。移植时年龄较小、使用较强的免疫抑制剂、人类白细胞抗原(HLA)不符合、移植物中去除T细胞等因素可能与EBV感染的PTLD相关,由于机体免疫力低下、T细胞反应缺陷等导致EBV初次感染或潜伏感染激活,B细胞无限增殖,最终形成恶性肿瘤。PTLD进展速度快,恶性程度高,因此预防及早期识别PTLD尤为重要,对于已确诊的EBV-PTLD可通过外周血EBV负荷监测并根据其负荷来调整免疫抑制剂的用量,降低受者机体免疫抑制程度,恢复受者的CTL免疫力作为初始治疗。在此基础上,给予受者抗巨细胞病毒免疫球蛋白也可有效降低早期PTLD的发生率。利妥昔单抗联合标准化疗方案亦可用于治疗PTLD,输注EBV特异性T细胞的过继免疫治疗也是一种有效方式。

4 小结与展望

EBV在发展中国家人群中感染率较高,相关因素诸如EBV-DNA拷贝数阳性、PD-L1高表达、EBV-LMP1表达等均预示着EBV+患者具有更差的预后,且越来越多的研究证明EBV+可作为淋巴瘤患者预后的独立危险因素。但现阶段针对EBV感染相关淋巴瘤的致瘤机制仍不十分明确,临床工作中也更应当重视EBV-DNA拷贝数对疾病预后的指导意义,针对EBV的病毒疫苗是否具有临床价值也值得思考。相信在不久的未来,EBV的致瘤机制可以得到充分挖掘,其相关淋巴瘤的诊治亦将得到长足发展。

利益冲突
利益冲突

参考文献
[1]
JemalA, SiegelR, WardEet al. Cancer statistics,2008[J]. CA Cancer J Clin2008582):71-96. DOI:10.3322/CA.2007.0010.
[2]
杨迎雪丁凯阳胡茂贵. EB病毒动态变化与淋巴瘤疗效的关系[J].白血病·淋巴瘤2018276):336-339. DOI:10.3760/cma.j.issn.1009-9921.2018.06.004.
YangYX, DingKY, HuMG. Relationship between dynamic changes of Epstein-Barr virus and efficacy of lymphoma[J]. Journal of Leukemia & Lymphoma2018276):336-339. DOI:10.3760/cma.j.issn.1009-9921.2018.06.004.
[3]
EpsteinMA, AchongBG, BarrYM. Virus particles in cultured lymphoblasts from Burkitt's lymphoma[J]. Lancet196417335):702-703.
[4]
YoungLS, RickinsonAB. Epstein-Barr virus:40 years on[J]. Nat Rev Cancer2004410):757-768. DOI:10.1038/nrc1452.
[5]
PallesenG, Hamilton-DutoitSJ, ZhouX. The association of Epstein-Barr virus(EBV)with T cell lymphoproliferations and Hodgkin's disease:two new developments in the EBV field[J]. Adv Cancer Res199362179-239. DOI:10.1016/S0065-230X(08)60319-X.
[6]
吴志懂彭涛黎乐群. EB病毒及其相关肿瘤的研究进展[J].临床和实验医学杂志200984):134-137. DOI:10.3969/j.issn.1671-4695.2009.04.095.
WuZD, PengT, LiLQ. Progress of Epstein-Barr virus and its related tumors[J]. Journal of Clinical and Experimental Medicine200984):134-137. DOI:10.3969/j.issn.1671-4695.2009.04.095.
[7]
LuJ, MurakamiM, VermaSCet al. Epstein-Barr virus nuclear antigen 1(EBNA1)confers resistance to apoptosis in EBV-positive B-lymphoma cells through up-regulation of survivin[J]. Virology20114101):64-75. DOI:10.1016/j.virol.2010.10.029.
[8]
黄小银. EB病毒与淋巴瘤相关性的研究进展[J].临床肿瘤学杂志20121710):951-954. DOI:10.3969/j.issn.1009-0460.2012.10.019.
HuangXY. Research progress on EB virus and its associated lymphoma[J]. Chin Clin Oncol20121710):951-954. DOI:10.3969/j.issn.1009-0460.2012.10.019.
[9]
WangL, TianWD, XuXet al. Epstein-Barr virus nuclear antigen 1(EBNA1)protein induction of epithelial-mesenchymal transition in nasopharyngeal carcinoma cells[J]. Cancer20141203):363-372. DOI:10.1002/cncr.28418.
[10]
周小鸽.霍奇金淋巴瘤与EB病毒相关性研究进展[J].临床和实验医学杂志200321):23-28. DOI:10.3969/j.issn.1671-4695.2003.01.010.
ZhouXG. Progress of the association of Hodgkin lymphoma and EB virus[J]. Journal of Clinical and Experimental Medicine200321):23-28. DOI:10.3969/j.issn.1671-4695.2003.01.010.
[11]
MuromotoR, IkedaO, OkabeKet al. Epstein-Barr virus-derived EBNA2 regulates STAT3 activation[J]. Biochem Biophys Res Commun20093783):439-443. DOI:10.1016/j.bbrc.2008.11.053.
[12]
WhiteRE, GrovesIJ, TurroEet al. Extensive co-operation between the Epstein-Barr virus EBNA3 proteins in the manipulation of host gene expression and epigenetic chromatin modification[J]. PLoS One2010511):e13979. DOI:10.1371/journal.pone.0013979.
[13]
TierneyRJ, KaoKY, NagraJKet al. Epstein-Barr virus BamHI W repeat number limits EBNA2/EBNA-LP coexpression in newly infected B cells and the efficiency of B-cell transformation:a rationale for the multiple W repeats in wild-type virus strains[J]. J Virol20118523):12362-12375. DOI:10.1128/JVI.06059-11.
[14]
GrahamJP, ArcipowskiKM, BishopGA. Differential B-lymphocyte regulation by CD40 and its viral mimic,latent membrane protein 1[J]. Immunol Rev20102371):226-248. DOI:10.1111/j.1600-065X.2010.00932.x.
[15]
DawsonCW, PortRJ, YoungLS. The role of the EBV-encoded latent membrane proteins LMP1 and LMP2 in the pathogenesis of nasopharyngeal carcinoma(NPC)[J]. Semin Cancer Biol2012222):144-153. DOI:10.1016/j.semcancer.2012.01.004.
[16]
WuZZ, ChowKP, KuoTCet al. Latent membrane protein 1 of Epstein-Barr virus sensitizes cancer cells to cisplatin by enhancing NF-κB p50 homodimer formation and downregulating NAPA expression[J]. Biochem Pharmacol20118212):1860-1872. DOI:10.1016/j.bcp.2011.09.010.
[17]
SharmaS, KellyTK, JonesPA. Epigenetics in cancer[J]. Carcinogenesis2010311):27-36. DOI:10.1093/carcin/bgp220.
[18]
苏红徐梦微李建国.不同类型淋巴瘤438例EB病毒分布特点[J].白血病·淋巴瘤2015243):173-177. DOI:10.3760/cma.j.issn.1009-9921.2015.03.012.
SuH, XuMW, LiJGet al. The distribution characteristics of Epstein-Barr virus in 438 lymphoma patients[J]. Journal of Leukemia & Lymphoma2015243):173-177. DOI:10.3760/cma.j.issn.1009-9921.2015.03.012.
[19]
MyriamBD, SoniaZ, HaneneSet al. Prognostic significance of Epstein-Barr virus(EBV)infection in Hodgkin lymphoma patients[J]. J Infect Chemother2017233):121-130. DOI:10.1016/j.jiac.2016.09.004.
[20]
郗彦凤王晋芬王全红.应用组织芯片探讨凋亡及EB病毒与经典型Hodgkin淋巴瘤的关系[J].肿瘤研究与临床2004165):300-302. DOI:10.3760/cma.j.issn.1006-9801.2004.05.005.
XiYF, WangJF, WangQHet al. To study the relationship between apoptosis,EBV and classical Hodgkin lymphoma by using tissue-chip[J]. Cancer Research and Clinic2004165):300-302. DOI:10.3760/cma.j.issn.1006-9801.2004.05.005.
[21]
QueirogaEM, GualcoG, WeissLMet al. Burkitt lymphoma in Brazil is characterized by geographically distinct clinicopathologic features[J]. Am J Clin Pathol20081306):946-956. DOI:10.1309/AJCP64YOHAWLUMPK.
[22]
代新珍陈少红葛娟. Hsa-miR9在伯基特淋巴瘤EBV+/-细胞中的差异表达及其与BCL-6调控的关系[J].南方医科大学学报2013335):661-666. DOI:10.3969/j.issn.1673-4254.2013.05.08.
DaiXZ, ChenSH, GeJet al. Expression pattern of hsa-miR-9 and its association with BCL6 in EBV-positive and EBV-negative Burkitt lymphoma cell lines[J]. Journal of Southern Medical University2013335):661-666. DOI:10.3969/j.issn.1673-4254.2013.05.08.
[23]
LeucciE, OnnisA, CoccoMet al. B-cell differentiation in EBV-positive Burkitt lymphoma is impaired at posttranscriptional level by miRNA-altered expression[J]. Int J Cancer20101266):1316-1326. DOI:10.1002/ijc.24655.
[24]
黄慧曾华杨文萍.伯基特淋巴瘤发病机制的研究进展[J].临床与实验病理学杂志2015311):72-74. DOI:10.13315/j.cnki.cjcep.2015.01.019.
HuangH, ZengH, YangWP. Progress of pathogenesis in Burkitt lymphoma[J]. J Clin Exp Pathol2015311):72-74. DOI:10.13315/j.cnki.cjcep.2015.01.019.
[25]
裴强.脑脊液IL10在原发中枢弥漫大B细胞淋巴瘤中的临床价值及调控机制初步探索[D].北京北京协和医学院2017.
PeiQ. The preliminary exploration of clinical value and regulatory mechanism of IL10 in PCNS-DLBCL[D]. BeijingPeking Union Medical College Hospital2017.
[26]
AsanoN, KatoS, NakamuraS. Epstein-Barr virus-associated natural killer/T-cell lymphomas[J]. Best Pract Res Clin Haematol2013261):15-21. DOI:10.1016/j.beha.2013.04.002.
[27]
SuzukiR, YamaguchiM, IzutsuKet al. Prospective measurement of Epstein-Barr virus-DNA in plasma and peripheral blood mononuclear cells of extranodal NK/T-cell lymphoma,nasal type[J]. Blood201111823):6018-6022. DOI:10.1182/blood-2011-05-354142.
[28]
万榕高美钦.中线T细胞淋巴瘤与EB病毒关系的观察[J].肿瘤研究与临床1998104):231-233.
WanR, GaoMQ. Observation of the relationship between middle line T cell lymphoma and EB virus[J]. Cancer Research and Clinic1998104):231-233.
[29]
RamakrishnanR, DonahueH, GarciaDet al. Epstein-Barr virus BART9 miRNA modulates LMP1 levels and affects growth rate of nasal NK T cell lymphomas[J]. PLoS One2011611):e27271. DOI:10.1371/journal.pone.0027271.
[30]
MurataT, IwataS, SiddiqueyMNet al. Heat shock protein 90 inhibitors repress latent membrane protein 1(LMP1)expression and proliferation of Epstein-Barr virus-positive natural killer cell lymphoma[J]. PLoS One201385):e63566. DOI:10.1371/journal.pone.0063566.
[31]
OmarH, HägglundH, Gustafsson-JernbergAet al. Targeted monitoring of patients at high risk of post-transplant lymphoproliferative disease by quantitative Epstein-Barr virus polymerase chain reaction[J]. Transpl Infect Dis2009115):393-399. DOI:10.1111/j.1399-3062.2009.00410.x.
 
 
展开/关闭提纲
查看图表详情
回到顶部
放大字体
缩小字体
标签
关键词