讲座
基质金属蛋白酶家族在糖尿病足溃疡愈合中的作用
中华糖尿病杂志, 2020,12(9) : 749-752. DOI: 10.3760/cma.j.cn115791-20200722-00454
摘要

糖尿病足溃疡是非外伤性截肢的首要原因,加快愈合已成为研究热点。调控修复相关因子在促进愈合中起着重要作用。笔者对基质金属蛋白酶家族参与调控糖尿病足溃疡修复及可能的相关机制进行阐述。

引用本文: 芮顺利, 陈天怡, 李伶, 等.  基质金属蛋白酶家族在糖尿病足溃疡愈合中的作用 [J] . 中华糖尿病杂志, 2020, 12(9) : 749-752. DOI: 10.3760/cma.j.cn115791-20200722-00454.
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糖尿病足溃疡(diabetic foot ulcer,DFU)多由周围神经病变、外周微循环障碍和感染所致1。创面愈合是复杂且有序的病理生理学过程,常由炎症期、增殖期和成熟期组成。DFU难愈合与基质无法沉积、胶原过度分解、角质细胞迁移受阻、组织再塑型障碍有关。在高糖情况下,组织往往停留在伤口愈合的炎性阶段,由于伤口中持续存在高水平的炎症细胞因子,从而导致基质金属蛋白酶(matrix metalloproteinase,MMP)家族调控失衡,并随后降解生长因子、受体以及对伤口愈合必不可少的基质蛋白,从而导致DFU难以愈合2。笔者主要对MMP家族参与调控DFU修复及可能的相关机制进行阐述。

一、MMP家族简介

MMP家族是一组与细胞外基质(extracellular matrix,ECM)降解有关的钙依赖性含锌酶,于1960年首次在蝌蚪中发现3。人类有24种不同的MMP,具有广泛的底物和功能。MMP家族成员在结构和序列上具有相似性,均含有一个富含脯氨酸的柔性铰链区和一个类血红素的C末端结构域,其功能是识别底物(通常为ECM),但是MMP-7、MMP-23和MMP-26例外,它们缺少类血红素样结构域4。在脊椎动物中,根据其底物特异性、序列相似性和结构域可分为如下7类,其底物及在创伤愈合中的功能各不相同5, 6, 7

1.胶原酶类:(1)MMP-1(collagenase-1):底物为Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅶ、Ⅹ型胶原。在创伤愈合中的功能包括:促进角质细胞在原纤维胶原上迁移;伤口愈合过程中,在前缘角质细胞中表达;在角质细胞的过表达延迟了再上皮化过程。(2)MMP-8(collagenase-2):底物为Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ型胶原。在伤口愈合中,具有裂解胶原的作用。(3)MMP-13(collagenase-3):底物为Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ、Ⅸ、Ⅹ、ⅪⅤ型胶原。通过影响伤口收缩间接促进上皮再生。

2.明胶酶类:(1)MMP-2(gelatinase A):底物为明胶及Ⅰ、Ⅳ、Ⅴ、Ⅶ、Ⅹ型胶原。具有促进细胞迁移的作用。(2)MMP-9(gelatinase B):底物为明胶及Ⅰ、Ⅲ、Ⅳ、Ⅴ、Ⅶ型胶原。在创伤愈合中的功能包括:由伤口前缘的角质形成细胞表达;促进细胞迁移和再上皮化,角膜除外。

3.基质溶解素:(1)MMP-3(stromelysin-1)和MMP-10(stromelysin-2):底物均为Ⅳ、Ⅴ、Ⅸ、Ⅹ型胶原;纤连蛋白。由伤口前缘增生细胞中的角质形成细胞表达,影响伤口收缩。(2)MMP-11(stromelysin-3):底物为丝氨酸蛋白酶抑制剂以及1-蛋白酶抑制剂,作用不明。

4.基质溶解因子:MMP-7(matrilysin),底物为弹性蛋白、纤连蛋白、层粘连蛋白。为黏膜创面再上皮化所必需。

5.金属弹性蛋白酶:MMP-12(metalloeslastase),底物为Ⅳ型胶原、明胶、纤连蛋白、层粘连蛋白。巨噬细胞特异性表达(上皮细胞不表达)。

6.膜型MMP(membrane-type MMP,MT-MMP):MMP-14(MT1-MMP)底物为Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ型胶原。促进角质细胞生长,气道再上皮化和细胞迁移。MMP-15(MT2-MMP)、MMP-16(MT3-MMP)、MMP-17(MT4-MMP)、MMP-24(MT5-MMP)、MMP-25(MT6-MMP)均作用不明。

7.其他MMP5:MMP-20底物为釉原蛋白、聚蛋白多糖、软骨寡聚基质蛋白,在发育中的牙齿中表达;MMP-26在皮肤伤口愈合过程中,在迁移的角质细胞表达;MMP-28底物为酪蛋白,伤口愈合过程中,在远端角质细胞群表达。MMP-19、MMP-21、MMP-22、MMP-23、MMP-27均作用不明。

二、MMP家族在DFU中表达和激活调控

MMP家族表达与激活受到机体严密调控,在正常组织中(如果有表达),呈现低水平表达7, 8。当机体需要组织重塑时(如伤口愈合),皮肤内多种细胞[角质形成细胞、成纤维细胞、内皮细胞和炎性细胞(如单核细胞、淋巴细胞和巨噬细胞)]表达MMP,同时响应一系列信号(包括细胞因子、激素以及与其他类型细胞或ECM的接触)来诱导MMP表达9

在糖尿病患者中,高血糖导致长期慢性炎症,伴有MMP家族水平升高10, 11。在DFU组织中,MMP降解生长因子、受体和新形成的ECM,因此,DFU愈合受到损害和延迟12。然而,这一过程还没有被很好地理解,真正引起MMP家族表达和激活的机制还不清楚。

多种细胞因子和生长因子在转录水平激活MMP。表皮生长因子、肝细胞生长因子、成纤维细胞生长因子、血管内皮生长因子、血小板衍生生长因子、肿瘤坏死因子-α、角质形成细胞生长因子、转化生长因子-β以及白介素和干扰素等通过激活NF-κB、MAPK、Wnt或Smad依赖性信号通路表达MMP。部分MMP的调控也发生在染色质的修饰、信使RNA的稳定和酶的分泌过程中5

内源性组织金属蛋白酶抑制剂(tissue inhibitor of matrix metalloproteinase,TIMP)在蛋白水平调控MMP活性。在体外,丝氨酸蛋白酶通过抑制血浆蛋白酶抑制剂激活MMP家族,这些抑制剂包括α1-蛋白酶和α2-巨球蛋白或血小板反应蛋白-113。MMP的活性主要由TIMP调节14。在哺乳动物中,有4种TIMP(TIMP-1、TIMP-2、TIMP-3和TIMP-4)特异性结合抑制MMP家族。MMP家族与TIMP比值失调导致蛋白酶活性上调,ECM受损,伤口愈合受阻11

三、特定MMP在DFU溃疡愈合中作用

MMP家族在维持机体的正常功能中发挥着重要作用。DFU愈合往往无法经历皮肤修复的所有阶段,而停滞在病理炎症状态阶段,导致新生血管受损、胶原合成减少、蛋白水解活性增加和巨噬细胞功能缺陷。DFU主要伴有胶原酶(MMP-1和MMP-8)、明胶酶(MMP-2和MMP-9)、基质溶解素(MMP-10)表达异常及TIMP低水平表达。在DFU愈合过程中,当MMP活性与TIMP抑制作用平衡受到破坏时,ECM降解增加,细胞因子改变和生长因子降解,最终导致伤口闭合延迟或停滞。

1.胶原酶(MMP-1和MMP-8)在DFU愈合中的作用:在伤口愈合过程中,ECM的丢失会触发MMP-1在基底前端的角质形成细胞中快速表达。创面形成第1天MMP-1在伤口边缘的基底角质形成细胞表达最高,然后逐渐降低直至重新上皮化15。在组织重塑期,角质形成细胞表达层粘连蛋白,为MMP-1下调的信号16。与正常组织创面相比,DFU渗出液中往往存在高水平的MMP-115, 17,MMP-1/TIMP-1升高是DFU愈合的预测指标18, 19。MMP-8主要由中性粒细胞细胞分泌,中性粒细胞不经历快速的细胞凋亡,而是在整个愈合过程中持续存在。在DFU渗出液中,非活性形式的MMP-8含量大约是普通伤口的50倍20。然而相关研究表明,MMP-8有益于糖尿病伤口的愈合17。使用化学抑制剂靶向抑制MMP-8的表达,糖尿病小鼠伤口愈合延迟17。MMP-8基因缺失会导致MMP-9代偿性升高,使用MMP-8基因敲除小鼠,无法确认MMP-8是否对创面有益21。使用重组MMP-8对糖尿病小鼠进行局部治疗,显著提高了伤口的愈合能力17

2.明胶酶(MMP-2和MMP-9)在DFU愈合中的作用:DFU渗出液含有少量或者不含有活性的MMP-211, 22。MMP-2在慢性创面中仅起次要作用。MMP-2主要由成纤维细胞分泌,在增殖阶段发挥作用,但在以炎症阶段占主导的慢性伤口中作用较小11。在创面闭合阶段,MMP-9在迁移的角质形成细胞的前缘表达,促进角质形成细胞的迁移4。与正常伤口相比,DFU患者渗出液和血清中往往含有高水平的MMP-923,且缺血性DFU比神经性DFU含量更高24。MMP-9抑制DFU愈合,通过特异性抑制MMP-9可以促进糖尿病伤口愈合。使用新型且高度选择性的MMP-9抑制剂(ND-336)可以加速db/db鼠的伤口愈合25。通过观察MMP-9基因敲除糖尿病鼠,进一步证实了MMP-9抑制糖尿病伤口愈合,靶向抑制MMP-9活性成为治疗DFU的策略。同时相关研究表明,MMP-9/TIMP1升高预示DFU愈合不良18, 26

3.基质溶解素(MMP-10)在DFU愈合中的作用:MMP-10主要由伤口前缘的角质形成细胞表达,严格调控MMP-10表达是创面控制基质降解的前提,从而控制角质细胞迁移。在DFU中MMP-10转录水平降低,考虑到MMP-10与MMP-1表达共定位9,且MMP-1/TIMP-1升高有助于DFU愈合,MMP-10低水平表达可能是DFU难以愈合的原因之一。

四、MMP抑制剂对DFU愈合的影响

MMP家族分子高度同源且底物共享,使得靶向抑制剂开发变得困难。理想的MMP抑制剂应当针对目标MMP且特异性高于其他MMP至少3个数量级27。MMP-9、MMP-8在DFU愈合中作用相反,且MMP-2在DFU愈合中作用不大28,现在抑制剂开发的策略主要是抑制MMP-9活性,不影响MMP-8表达。

1.传统抑制剂:传统抑制剂主要策略是提高局部生长因子,降低MMP-9活性。富血小板凝胶含有多种生长因子,可显著补充局部生长因子,降低MMP活性,促进伤口愈合29。贝卡普勒明(Becaplermin)作为唯一获得美国食品药品监督管理局批准的DFU治疗药物,可以补充局部血小板衍生生长因子,促进创面愈合30。(R)-ND-336是MMP-9抑制剂中的明星分子,其针对MMP-9的选择性是MMP8的450倍31。(R)-ND-336对MMP-9作用时间远远大于对MMP-8作用时间。动物实验结果表明(R)-ND-336可以明显改善糖尿病鼠创伤愈合31

2.基于抗体的抑制剂:为了解决抑制剂的选择性问题,研究人员开发了多种针对性的抗体。GS-5745是一种双重抑制MMP-9的抗体,既可以中和MMP-9,又可以抑制MMP-3(激活酶原形式的MMP-9)32。研究人员陆续又开发出SDS3、REGA-3G12等抗体抑制剂33。然而这些抗体抑制剂均针对癌症开发,无法用于创面。

3.高级伤口敷料:临床上通常使用敷料来帮助伤口愈合,既可以控制伤口环境,又可以控制渗出液。通过使用高级敷料降低MMP家族活性成为研究的热点,目前敷料中MMP抑制剂多为广谱MMP抑制剂。考虑到使用广谱MMP抑制剂GM 6001观察到伤口愈合不良的情况,使用广谱抑制剂值得关注。含有4-乙烯基苄基氯功能化的Ⅰ型胶原蛋白的伤口敷料,可以与伤口渗出液中的活性MMP形成复合物,抑制MMP活性。动物实验表明,与标准的敷料相比,其降低了MMP-9的活性,改善了糖尿病鼠伤口愈合34

4.基于RNA干扰的疗法:在基因水平上干扰MMP-9表达成为当今研究的热点。RNA干扰技术可用于多种疾病的治疗。研究报道,在糖尿病溃疡大鼠中使用MMP-9-siRNA,可被成纤维细胞有效吸收,降低MMP-9基因的表达,显著改善伤口愈合35。最近,相关研究表明在糖尿病小鼠模型中,使用miR-129和miR-335作为MMP-9表达的抑制剂,可显著促进伤口愈合36

综上,MMP家族在DFU愈合中起着重要作用。MMP家族表达具有时间性和空间性,且其分子结构相似性高。MMP/TIMP反映创面愈合情况,可成为DFU创面愈合的预测指标。MMP-1/TIMP-1比值升高有助于DFU创面愈合,MMP-9/TIMP-1则相反。通过靶向抑制或增加某种MMP蛋白活性,使治疗DFU成为可能。如靶向抑制MMP-9的表达有助于DFU创面愈合;抑制MMP的敷料具有促进创面愈合的优越性,但在DFU的疗效仍需更多研究去证实37

利益冲突
利益冲突

所有作者均声明不存在利益冲突

选择题:

1.脊椎动物中,MMP家族有多少成员?

A.22

B.23

C.24

D.25

2.下面关于MMP家族哪种说法是错误的?

A.MMP-1主要在角质形成细胞表达

B.MMP-2主要有成纤维细胞分泌

C.MMP-3主要降解Ⅳ、Ⅴ、Ⅸ、Ⅹ型胶原

D.MMP-9在DFU渗出液中表达不高

3.下面哪种MMP主要由炎症细胞分泌?

A.MMP-1

B.MMP-2

C.MMP-8

D.MMP-9

4.下面哪一种药物是唯一获得FDA批准的DFU治疗药物?

A.贝卡普勒明(Becaplermin)

B.(R)-ND-336

C.GS-5745

D.GM 6001

5.下面哪种MMP不利于DFU愈合?

A.MMP-10

B.MMP-2

C.MMP-8

D.MMP-9

第8期讲座参考答案:

胰高糖素样肽-1类药物的心血管保护作用

1.C

2.D

3.C

4.A

5.B

参考文献
1
张会峰, 许樟荣, 冉兴无. 糖尿病足的相关定义和标准[J]. 中华糖尿病杂志, 2020, 12(6):363-368. DOI:10.3760/cma.j.cn115791-20200430-00258.
2
朱平, 严励. 基质金属蛋白酶及其组织抑制剂与创面愈合研究进展[J].国外医学(内科学分册), 2006, 33(6):249-252.
3
GrossJ, LapiereCM. Collagenolytic activity in amphibian tissues: a tissue culture assay[J].Proc Natl Acad Sci U S A, 1962, 48(6):1014-1022. DOI:10.1073/pnas.48.6.1014.
4
NguyenTT, MobasheryS, ChangM.Roles of matrix metalloproteinases in cutaneous wound healing[M].InTech, 2016.
5
CaleyMP, MartinsVL, O′TooleEA. Metalloproteinases and wound healing[J]. Adv Wound Care (New Rochelle), 2015, 4(4):225-234. DOI:10.1089/wound.2014.0581.
6
LombardiA, MakievaS, RinaldiSF, et al. Expression of Matrix Metalloproteinases in the Mouse Uterus and Human Myometrium During Pregnancy, Labor, and Preterm Labor[J]. Reprod Sci, 2018, 25(6):938-949. DOI: 10.1177/1933719117732158.
7
AbasM, Masry MEI, ElgharablyH.Collagen in diabetic wound healing//Wound, repair tissue, and regeneration in diabetes[M]. Academic Press, 2020:393-401.
8
auf dem KellerU, SabinoF. Matrix metalloproteinases in impaired wound healing[J]. Metalloproteinases In Medicine, 2015, 1:1-8. DOI:10.2147/mnm.s68420.
9
YanC, BoydDD. Regulation of matrix metalloproteinase gene expression[J]. J Cell Physiol, 2007, 211(1):19-26. DOI:10.1002/jcp.20948.
10
TorisevaM, KähäriVM. Proteinases in cutaneous wound healing[J]. Cell Mol Life Sci, 2009, 66(2):203-224. DOI:10.1007/s00018-008-8388-4.
11
LobmannR, AmbroschA, SchultzG, et al. Expression of matrix-metalloproteinases and their inhibitors in the wounds of diabetic and non-diabetic patients[J]. Diabetologia, 2002, 45(7):1011-1016. DOI:10.1007/s00125-002-0868-8.
12
WilgusTA. Growth factor-extracellular matrix interactions regulate wound repair[J]. Adv Wound Care (New Rochelle), 2012, 1(6):249-254. DOI:10.1089/wound.2011.0344.
13
MartinsVL, CaleyM, O′TooleEA. Matrix metalloproteinases and epidermal wound repair[J]. Cell Tissue Res, 2013, 351(2):255-268. DOI: 10.1007/s00441-012-1410-z.
14
NguyenTT, JonesJI, WolterWR, et al. Hyperbaric oxygen therapy accelerates wound healing in diabetic mice by decreasing active matrix metalloproteinase-9[J]. Wound Repair Regen, 2020, 28(2):194-201. DOI:10.1111/wrr.12782.
15
ZengW, TahraniA, ShakherJ, et al. Effects of a synthetic retinoid on skin structure, matrix metalloproteinases, and procollagen in healthy and high-risk subjects with diabetes[J]. J Diabetes Complications, 2011, 25(6):398-404. DOI: 10.1016/j.jdiacomp.2011.10.002.
16
Page-McCawA, EwaldAJ, WerbZ. Matrix metalloproteinases and the regulation of tissue remodelling[J]. Nat Rev Mol Cell Biol, 2007, 8(3):221-233. DOI: 10.1038/nrm2125.
17
EmingSA, KochM, KriegerA, et al. Differential proteomic analysis distinguishes tissue repair biomarker signatures in wound exudates obtained from normal healing and chronic wounds[J]. J Proteome Res, 2010, 9(9):4758-4766. DOI:10.1021/pr100456d.
18
LuanraksaS, JindatanmanusanP, BoonsiriT, et al. An MMP/TIMP ratio scoring system as a potential predictive marker of diabetic foot ulcer healing[J]. J Wound Care, 2018, 27(12):849-855. DOI:10.12968/jowc.2018.27.12.849.
19
MullerM, TrocmeC, LardyB, et al. Matrix metalloproteinases and diabetic foot ulcers: the ratio of MMP-1 to TIMP-1 is a predictor of wound healing[J]. Diabet Med, 2008, 25(4):419-426. DOI:10.1111/j.1464-5491.2008.02414.x.
20
NwomehBC, LiangHX, CohenIK, et al. MMP-8 is the predominant collagenase in healing wounds and nonhealing ulcers[J]. J Surg Res, 1999, 81(2):189-195. DOI:10.1006/jsre.1998.5495.
21
Gutiérrez-FernándezA, InadaM, BalbínM, et al. Increased inflammation delays wound healing in mice deficient in collagenase-2 (MMP-8) [J]. FASEB J, 2007, 21(10):2580-2591. DOI:10.1096/fj.06-7860com.
22
LadwigGP, RobsonMC, LiuR, et al. Ratios of activated matrix metalloproteinase-9 to tissue inhibitor of matrix metalloproteinase-1 in wound fluids are inversely correlated with healing of pressure ulcers[J]. Wound Repair Regen, 2002, 10(1):26-37. DOI:10.1046/j.1524-475x.2002.10903.x.
23
KatoJ, KamiyaH, HimenoT, et al. Mesenchymal stem cells ameliorate impaired wound healing through enhancing keratinocyte functions in diabetic foot ulcerations on the plantar skin of rats[J]. J Diabetes Complications, 2014, 28(5):588-595. DOI: 10.1016/j.jdiacomp.2014.05.003.
24
LiN, YangL, PanC, et al. Naturally-occurring bacterial cellulose-hyperbranched cationic polysaccharide derivative/MMP-9 siRNA composite dressing for wound healing enhancement in diabetic rats[J]. Acta Biomater, 2020, 102:298-314. DOI: 10.1016/j.actbio.2019.11.005.
25
GaoM, NguyenTT, SuckowMA, et al. Acceleration of diabetic wound healing using a novel protease-anti-protease combination therapy[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2015, 112(49):15226-15231. DOI:10.1073/pnas.1517847112.
26
LiZ, GuoS, YaoF, et al. Increased ratio of serum matrix metalloproteinase-9 against TIMP-1 predicts poor wound healing in diabetic foot ulcers[J]. J Diabetes Complications, 2013, 27(4):380-382. DOI:10.1016/j.jdiacomp.2012.12.007.
27
JacobsenJA, Major JourdenJL, MillerMT, et al. To bind zinc or not to bind zinc: an examination of innovative approaches to improved metalloproteinase inhibition[J]. Biochim Biophys Acta, 2010, 1803(1):72-94. DOI:10.1016/j.bbamcr.2009.08.006.
28
GooyitM, PengZ, WolterWR, et al. A chemical biological strategy to facilitate diabetic wound healing[J].ACS Chem Biol, 2014, 9(1):105-110. DOI:10.1021/cb4005468.
29
LiT, MaY, WangM, et al. Platelet-rich plasma plays an antibacterial, anti-inflammatory and cell proliferation-promoting role in an in vitro model for diabetic infected wounds[J]. Infect Drug Resist, 2019, 12:297-309. DOI:10.2147/IDR.S186651.
30
SinghS, Varun RajagopalS, KourN, et al. Platelet-rich-plasma injection and becaplermin gel as effective dressing adjuvants for treating chronic non-healing ulcers in patients with junctional epidermolysis bullosa[J]. J Am Acad Dermatol, 2020, S0190-9622(20)30844-6. DOI:10.1016/j.jaad.2020.05.016.
31
NguyenTT, DingD, WolterWR, et al. Validation of matrix metalloproteinase-9 (MMP-9) as a novel target for treatment of diabetic foot ulcers in humans and discovery of a potent and selective small-molecule MMP-9 inhibitor that accelerates healing[J]. J Med Chem, 2018, 61(19):8825-8837. DOI:10.1021/acs.jmedchem.8b01005.
32
ApplebyTC, GreensteinAE, HungM, et al. Biochemical characterization and structure determination of a potent, selective antibody inhibitor of human MMP9[J]. J Biol Chem, 2017, 292(16):6810-6820. DOI:10.1074/jbc.M116.760579.
33
JonesJI, NguyenTT, PengZ, et al. Targeting MMP-9 in diabetic foot ulcers[J]. Pharmaceuticals (Basel), 2019, 12(2):79. DOI:10.3390/ph12020079.
34
TronciG, YinJ, HolmesRA, et al. Protease-sensitive atelocollagen hydrogels promote healing in a diabetic wound model[J]. J Mater Chem B, 2016, 4(45):7249-7258. DOI:10.1039/c6tb02268e.
35
LiN, LuoHC, YangC, et al. Cationic star-shaped polymer as an siRNA carrier for reducing MMP-9 expression in skin fibroblast cells and promoting wound healing in diabetic rats[J]. Int J Nanomedicine, 2014, 9:3377-3387. DOI:10.2147/IJN.S66368.
36
WangW, YangC, WangXY, et al. MicroRNA-129 and -335 promote diabetic wound healing by inhibiting Sp1-mediated MMP-9 expression[J]. Diabetes, 2018, 67(8):1627-1638. DOI:10.2337/db17-1238.
37
DissemondJ, AugustinM, DietleinM, et al. Efficacy of MMP-inhibiting wound dressings in the treatment of chronic wounds: a systematic review[J]. J Wound Care, 2020, 29(2):102-118. DOI:10.12968/jowc.2020.29.2.102.
 
 
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