
探讨先天性胫骨假关节(congenital pseudarthrosis of the tibia,CPT)患儿病变骨膜对大鼠胫骨发育的影响,为CPT动物模型的建立提供理论基础。
收集2021年4月至2021年5月在湖南省儿童医院骨科行手术治疗的CPT患儿胫骨病变骨膜和脑瘫患儿胫骨骨膜,分别将CPT患儿胫骨病变骨膜(实验组)与脑瘫患儿胫骨骨膜(对照组)移植包裹至2周龄SD大鼠胫骨周围,记录骨膜移植术后1 d、1周、2周、3周、6周两组SD大鼠胫骨影像学变化情况。获取术后第6周两组SD大鼠胫骨组织标本行Micro-CT扫描,分析骨小梁厚度(Tb.Th)、骨小梁数量(Tb.N)、骨小梁分离度(Tb.Sp)、骨皮质骨矿物质密度(Cort.BMD)、骨小梁骨矿物质密度(Trabe.BMD)、骨表面积体积比(BS/BV)、骨体积分数(BV/TV)、骨孔隙体积(Po.V)、骨孔隙密度(Po.Dn)等参数。
实验组术后1周影像表现为移植区骨皮质周围高密度影形成;术后2~3周移植区胫骨纤细、髓腔狭窄,上下端类骨质生成;术后6周胫骨移植区胫骨纤细、髓腔狭窄情况仍存在,而上下端类骨质吸收硬化。实验组Micro-CT扫描表现为水平轴向可见胫骨骨皮质表面凹凸不平,骨髓腔内存在部分高密度影改变;冠状位及矢状位可见胫骨骨皮质密度不均,髓腔稍狭窄,部分骨皮质不连续;3D重建可见胫骨外观不规整,骨表面存在局部凹陷。对照组术后1周影像表现为移植区骨皮质周围高密度影形成;术后2~3周可见胫骨移植区局部骨膜反应,未见髓腔狭窄;术后6周胫骨移植区未见明显异常。对照组Micro-CT扫描水平轴向、冠状位、矢状位及3D重建未见胫骨异常表现。实验组及对照组Tb.Th分别为(0.21±0.03) μm和(0.20±0.03) μm(P=0.79);Th.Sp分别为(0.33±0.01) μm和(0.38±0.04) μm(P=0.24);Th.N分别为(3.23±0.56) mm-1和(3.99±1.00) mm-1(P=0.54);Cort.BMD分别为(9 507.00±73.67) g/cm3和(9 747.00±130.00) g/cm3(P=0.18);Trabe.BMD分别为(8 357.00±25.66) g/cm3和(8 905.00±209.40) g/cm3(P=0.06);BS/BV分别为(4.01±0.36) mm-1和(2.98±0.12) mm-1(P=0.06),差异无统计学意义。实验组及对照组BV/TV分别为74.35%±0.86%和81.33%±0.82%(P<0.01);Po.V分别为(7.24±1.90) mm3和(2.48±0.97) mm3(P=0.01);Po.Dn分别为(5.52±0.24) mm-3和(0.95±0.23) mm-3(P<0.01),差异有统计学意义。
CPT患儿胫骨病变骨膜移植包裹2周龄SD大鼠胫骨后胫骨表现与CPT患儿胫骨临床特征相似,为CPT动物模型的创建提供了一定的参考和依据。
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先天性胫骨假关节(congenital pseudarthrosis of the tibia,CPT)是一种儿童骨科罕见疾病[1],常表现为胫骨成角畸形、囊肿和髓腔狭窄等,自发或轻微外伤后发生骨折,在常规治疗下骨折愈合不良或不愈合,最终形成假关节。治疗上主要以外科手术为主[2,3],但仍存在难度大、成本高、长期反复植骨甚至截肢等问题[4,5]。目前,CPT的病因及发病机制尚不明确[6],通过建立CPT动物模型开展相关研究有望在治疗方法和疗效上取得突破。
骨膜是一种独特而复杂的成骨器官,它在骨骼生长塑形、损伤修复等方面具有重要作用[7,8]。CPT的病理学研究发现,胫骨病变部位正常骨膜减少甚至消失,取而代之的是异常增厚的骨膜[9],病理检查提示为一种纤维错构瘤组织,大部分细胞为成纤维细胞,其成骨能力低下,导致胫骨发育不良或骨折后不愈合[10]。因此,有研究者认为胫骨骨膜病变是引起局部骨骼成骨能力受限继而导致CPT形成的重要病理因素之一[11]。
多年来,国内外关于CPT的研究大多局限于对患者病理标本的剖析,缺乏相关重复可靠的动物模型开展病理生理及发病机制的研究[12]。本实验通过将CPT患儿胫骨病变骨膜与脑瘫儿童胫骨骨膜移植到SD大鼠胫骨周围,应用X线及Micro-CT对两组大鼠胫骨进行扫描,观察比较两组大鼠胫骨发育情况,初步探索建立CPT动物模型,为开展病理机制研究提供参考。
实验组骨膜取自于2021年4月至2021年5月在湖南省儿童医院骨科行手术治疗的CPT患儿胫骨术后病理标本。CPT患儿入选标准:①诊断为Crawford Ⅳ型CPT并合并Ⅰ型神经纤维瘤病(neurofibromatosis type 1,NF1);②无合并其他骨病。排除标准:①手术前使用过药物增加骨量治疗;②既往有过手术史。
对照组骨膜取自于2021年4月至2021年5月在湖南省儿童医院骨科行手术治疗的脑瘫患儿术后胫骨病理标本。脑瘫患儿入选标准:①需行手术治疗的脑瘫患儿;②无骨或骨膜病变。排除标准:胫骨曾有过手术史。
本研究通过湖南省儿童医院伦理委员会审核批准(HCHLL-2021-105)。入选者均取得患儿及其家属知情同意,且签署知情同意书。
选择2周龄SD雄性大鼠9只(实验组、对照组和假手术组各3只),每只老鼠体重约150 g,均购自湖南省斯莱克景达实验动物有限公司,动物质量符合国家《实验动物管理条例》相关要求。实验过程严格按照湖南省儿童医院实验动物操作指南的相关规定,尽量降低实验动物使用数量,减少实验动物伤害和减轻其实验过程中的痛苦。
无菌操作台、显微外科手术器械、R500通用型小动物麻醉机(中国深圳瑞沃德生命科技公司);200Ma型X线机(上海先威光电科技有限公司);TOSCANER-30000μhb型号Micro-CT(日本东芝公司)。
双抗溶液(美国Gibco公司);a-MEM培养基(美国Gibco公司);2.0%异氟烷麻醉剂(中国深圳瑞沃德生命科技公司)。
在超净工作台上将双抗溶液和a-MEM培养基按液体容积1∶99的比例配制成培养基,5 ml/瓶分装于10 ml离心管置于4℃冰箱中备用。
取患儿手术送病理检查后剩余无污染的CPT病变骨膜/脑瘫患儿胫骨骨膜,放入含培养基的10 ml离心管中,置入4℃冰盒内送至实验室,随即进行SD大鼠骨膜移植手术。
所有SD大鼠术前均禁食禁饮6 h,在2.0%异氟烷吸入麻醉下,使用10%聚维酮碘溶液消毒左侧胫骨,用手术刀在其左侧小腿前纵行切开胫骨前方皮肤和皮下筋膜,分离并牵拉开胫骨前肌,充分暴露胫骨。自胫腓骨连接处下方向胫骨远端(范围为0.2 cm)环形剥离骨膜,实验组取CPT患儿病变骨膜(长0.5 cm×宽0.2 cm×厚0.05 cm)包裹于骨膜剥离处,对照组取脑瘫患儿胫骨骨膜(长0.5 cm×宽0.2 cm×厚0.05 cm)包裹于骨膜剥离处,缝合肌肉固定骨膜,避免其发生移位,缝合皮肤,切口定期消毒。假手术组如上述方法暴露胫骨后,不做其他处理,依次缝合肌肉、筋膜和皮肤,切口定期消毒。(图1)


所有SD大鼠均予以颈椎脱臼处死法处死,置于清洁操作台上仔细解剖,取出左侧胫骨,置入盛有体积分数400 g/L甲醛溶液的离心管,存放于4℃冰箱中。
所有SD大鼠分别于术后1 d、1周、2周、3周和6周在2.0%异氟烷吸入麻醉下按照同一条件(俯卧位,曝光条件:45 kV,1 kV,间隔0.08 s,70 mA)进行X线检查。观察胫骨移植区的发育情况。
使用Micro-CT对术后6周SD大鼠胫骨标本进行扫描。
(1)图像采集 机器预热完成后先行空扫,暗电流处理。扫描时标本冠状位竖直摆放,前位正对X射线光管,后位正对探测器,骨膜移植区置于扫描中心。扫描条件:内触发,电压60 kV,功率40 W,探测器拼合B1,2帧叠加,转台角度采样间隔0.72 °/转,大视野扫描。
(2)图像重建 将ini文件导入系统自带Reconstruction重建软件中,重建大小为:X256,Y256,Z256,重建完成后直接保存IMO及raw两种文件
(3)骨分析 以med Project软件进行骨分析,将IMO文件导入体数据。待系统弹出X、Y、Z的像素间距后记录下来,再将加载数据导入单文件raw文件,具体参数为:宽度256,高度256,切片数256,X、Y、Z的像素即为之前记录的数据,点击重建;重建之后放大冠状位图像,观察骨小梁分布和结构:选择骨仿体,进行映射;手动选择兴趣区及切片数进行图像分割,兴趣区选择于骨皮质和骨骺之间,取中心5个切层切割,切割阈值为100~700;切割完成后显示结果。最终选取骨小梁厚度(Tb.Th)、骨小梁数量(Tb.N)、骨小梁分离度(Tb.Sp)、骨皮质骨矿物质密度(Cort.BMD)、骨小梁骨矿物质密度(Trabe.BMD)、骨体积分数(BV/TV)、骨表面积体积比(BS/BV)、骨孔隙体积(Po.V)、骨孔隙密度(Po.Dn)9项指标进行统计分析。
实验结果数据均使用SPSS 26.0版进行统计学分析,计量资料以
±s表示,服从正态分布的资料采用t检验,不服从正态分布的资料使用秩和检验。P<0.05表示有统计学意义。
实验组、对照组、假手术组各3只2周龄雄性SD大鼠行相应手术过程取得成功,麻醉苏醒后,母鼠与幼崽同笼喂养,术后观察所有大鼠伤口愈合良好,4周龄时与母鼠分开喂养。行X线检查未出现麻醉意外。
术后1 d小腿未见软组织肿胀,胫骨未见明显异常显影;术后1周未见软组织肿胀,胫骨移植区可见骨皮质周围高密度影形成;术后2~3周移植区胫骨纤细、髓腔狭窄,上下端类骨质生成(图2红色箭头所指部位);术后6周胫骨移植区胫骨纤细、髓腔狭窄情况仍存在,而上下端类骨质吸收硬化(图2)。


术后1 d小腿未见软组织肿胀,胫骨未见明显异常显影;术后1周小腿软组织稍肿胀,胫骨移植区可见骨皮质周围高密度影形成;术后2~3周可见胫骨移植区局部骨膜反应,未见髓腔狭窄;术后6周胫骨移植区未见明显异常(图2)。
术后所有X线片未见小腿周围软组织肿胀,未见胫骨骨质异常表现(图2)。
水平轴向可见胫骨骨皮质表面凹凸不平,骨髓腔内存在部分高密度影改变;冠状位及矢状位可见胫骨骨皮质密度不均,髓腔稍狭窄,部分骨皮质不连续(图3红色箭头所指部位);3D重建可见胫骨外观不规整,存在局部凹陷(图3)。


水平轴向、冠状位、矢状位及3D重建未见胫骨异常表现(图3)。
术后6周SD大鼠胫骨标本行Micro-CT扫描结果见表1。

两周SD大鼠骨膜移植手术后6周胫骨标本行Micro-CT扫描结果比较(
±s)
两周SD大鼠骨膜移植手术后6周胫骨标本行Micro-CT扫描结果比较(
±s)
| 分组 | 例数 | Tb.Th(μm) | Th.Sp(μm) | Th.N(mm) | Cort.BMD(g/cm3) | Trabe.BMD(g/cm3) | BV/TV(%) | BS/BV(mm-1) | Po.V(mm-3) | Po.Dn(mm-3) |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| 实验组 | 3 | 0.21±0.03 | 0.33±0.01 | 3.23±0.56 | 9507.00±73.67 | 8357.00±25.66 | 74.35±0.86 | 4.01±0.36 | 7.24±1.90 | 5.52±0.24 |
| 对照组 | 3 | 0.20±0.03 | 0.38±0.04 | 3.99±1.00 | 9747.00±130.00 | 8905.00±209.40 | 81.33±0.82 | 2.98±0.12 | 2.48±0.97 | 0.95±0.23 |
| t值 | - | 0.29 | 1.35 | 0.67 | 1.60 | 2.60 | 5.89 | 2.67 | 4.19 | 13.57 |
| P值 | - | 0.79 | 0.24 | 0.54 | 0.18 | 0.06 | <0.01 | 0.06 | 0.01 | <0.01 |
注:Tb.Th,骨小梁厚度;Th.Sp,骨小梁分离度;Th.N,骨小梁数量;Cort.BMD,骨皮质骨矿物质密度;Trabe.BMD,骨小梁骨矿物质密度;BV/TV,骨体积分数;BS/BV,骨表面积体积比;Po.V,骨孔隙体积;Po.Dn,骨孔隙密度
本研究组首次对CPT动物模型制备的可行性进行探讨,分别将临床获取的CPT胫骨病变骨膜与脑瘫患儿胫骨骨膜移植于2周龄SD大鼠胫骨进行包裹,观察SD大鼠胫骨发育情况。与对照组相比,病变骨膜包裹胫骨的SD大鼠成年后其胫骨包裹处发育不良,即在X线片上产生包裹处骨皮质凹陷,Micro-CT轴向扫描发现骨皮质连续性中断,SD大鼠胫骨形态上表现为弯曲畸形,上述实验结果与CPT患儿临床特征较为吻合[13,14]。
临床研究发现有50%~60%CPT患儿合并NF1[2,15,16],目前虽未发现两者之间的确切关系,但有研究表明NF1基因缺失与骨折愈合能力降低有关。El-Hoss等[12]运用敲除小鼠NF1基因的方式制备了一种骨折模型来研究CPT与NF1的相关机制,该研究表明小鼠骨折骨痂中的局部NF1缺失能破坏骨折愈合,其形成的小鼠胫骨假关节模型与临床患儿表现相似,并描述了相关组织学特征。本研究中实验组选取的CPT病变骨膜为合并NF1患儿胫骨骨膜,从而使动物模型更真实地反映临床特点。然而,有研究表明约半数CPT患儿未合并NF1,其发病机制也尚不清楚,因此还需进一步开展相关动物实验进行研究。
CPT是一种罕见且治疗极为棘手的疾病,其病因和发病机制目前仍然未知。胫骨前外侧弯曲畸形是大部分CPT患儿的早期主要临床症状,且国内外研究者认为,这一弯曲的胫骨被称作是CPT的骨折前病变[17,18,19]。胫骨畸形造成胫骨机械轴与解剖轴发生改变,加之病变局部骨皮质萎缩骨强度丢失,致使胫骨骨质脆弱易损,最终骨折后形成CPT[3]。在本次CPT动物模型制备中,笔者通过连续观察骨膜移植包裹后的SD大鼠胫骨发育状态,发现病变骨膜包裹后的胫骨出现弯曲畸形,包裹处骨骼细长,两端出现反应性类骨质增生。使用Micro-CT检测进一步发现,病变骨膜包裹胫骨有裂隙骨折线产生,三维重建发现病变骨膜包裹处骨皮质凹陷,局部骨皮质形成"沟壑",而对照组包裹的SD大鼠胫骨并未出现任何骨骼形态改变。上述结果提示CPT来源的病变骨膜可在SD大鼠胫骨上复制出CPT临床表现。
既往研究发现,与由Ⅰ型胶原构成的正常骨膜明显不同,CPT病变骨膜成分以强度坚韧的Ⅲ型胶原为主,其增殖能力较骨折断端强。本实验使用的骨膜为合并NF1患儿病变骨膜,其成分也是Ⅲ型胶原为主[20]。因此推测坚韧的CPT病变骨膜易导致骨质周围压力增高形成张力带的方式造成局部骨骼发育异常,并且本研究的结果与Kullmann等[21]使用玻璃纸捆扎小鼠胫骨形成张力带的方式制造假关节的模型互为印证。
CPT中病变骨膜血管异常可能是假关节骨愈合不良或不愈合的重要因素之一。Al-Hadidy等[22]病理研究发现,CPT病变骨膜中存在静脉血管畸形,主要表现为管腔呈囊状扩张,管壁变薄;Kuorilehto等[23]发现CPT胫骨病变周围纤维化组织内动静脉壁增厚,管腔狭窄,部分血管阻塞;Hermanns-Sachweh等[24]发现CPT骨膜组织中小骨膜动脉周围形成了一种致密的鞘,导致小骨膜血管狭窄或闭塞,骨组织血液循环减少,进而导致成骨能力下降。临床手术治疗CPT时,通常会切除假关节周围病变的骨膜,以试图重建新的血运关系。本实验中剥离原SD大鼠胫骨骨膜,将移植的骨膜包裹至胫骨周围,一定程度上切断了大鼠胫骨局部区域的血液供应,结果发现实验组和对照组表现出骨发育不良的差异。分析原因可能是CPT病变骨膜含纤维成分高,排斥反应持续时间长,吸收慢,长时间形成胫骨局部"缺血",进而导致胫骨发育不良。对照组正常骨膜吸收快,大鼠胫骨周围形成新的血供,使胫骨发育未受到明显影响。
CPT病灶处成骨破骨失衡导致局部骨质强度降低是形成假关节的重要病理机制[25]。本研究中使用Micro-CT对骨膜包裹处的胫骨微结构进行检测,分别评价了局部骨皮质、骨小梁与骨骼孔隙程度。结果发现,和对照组相比,CPT病变骨膜包裹的SD大鼠胫骨骨体积分数(BV/TV)降低,骨孔隙体积(Po.V)和骨孔隙密度(Po.Dn)增高,其差异有统计学意义,而两组间Th.Th、Th.Sp、Th.N及BMD差异无统计学意义。上述结果表明CPT病变骨膜包裹的SD大鼠胫骨骨量减少、骨孔隙程度增高,进一步反映出该动物模型胫骨骨质发生破坏。有趣的是,本研究前期通过超声骨密度探索CPT患儿与正常儿童骨强度指标时发现前者BMD估计值较正常儿童降低[26],而本次动物模型建立过程中直接对骨骼进行检测,结果提示骨小梁特性和BMD在两组间并无差异。这可能与动物模型建立的局限性有关,即临床上CPT可能涉及全身各器官,如CPT与NF1的高相关性往往引起较多的器官或骨代谢异常[27,28],而本次模型制备仅从骨膜移植和局部包裹后产生的动物骨骼表现情况上进行研究,缺乏CPT发病的整体性探讨。
本研究使用了异种异体骨膜移植的方法初步探讨了CPT病变骨膜对骨发育的影响,这是一种尝试性的探索。在异种组织移植研究方面,目前运用最多的是将人源肿瘤细胞或组织移植到裸鼠的指定区域,从而建立相关研究方向的动物模型[29]。因裸鼠的饲养条件及实验环境要求比较高,本研究为探索性实验,故使用了SD大鼠进行探索。虽通过对比实验组与对照组胫骨发育的差异得到了阳性结果,但还需更加详细的进一步实验说明排斥反应对该结果是否具有决定性的影响。
本研究存在以下不足:①异种异体骨膜移植产生排斥反应是否影响实验结果问题,本研究通过设置对照组来解决这一问题,但仍不是最好的方法,还需进一步更详细的实验分析;②本研究在局部上复制了CPT相似的临床症状,但CPT不是一个单一的局部疾病,往往与其他许多疾病伴随或可能是一种全身性的疾病,这使本研究管窥蠡测缺乏全局性;③本研究每组选用3只动物,样本量取值为最小值,虽得到了具有统计学意义的结果,但小样本仍是本研究的一个弱点。
所有作者均声明不存在利益冲突





















