综述
体外培养调节性树突状细胞的研究进展
中华器官移植杂志, 2019,40(9) : 573-576. DOI: 10.3760/cma.j.issn.0254-1785.2019.09.015
摘要

树突状细胞(DC)是体内作用最强的专职抗原递呈细胞,其中一部分树突状细胞具有负向调节免疫反应的功能,被称为调节性树突状细胞(DCreg)。DCreg在抑制器官移植排斥反应和防治自身免疫性疾病上的广泛临床应用前景受到越来越多的重视。因此关于DCreg获得途径的研究成为该领域的重要研究方向之一。本文就近几年体外诱导DCreg的最新研究作一综述。

引用本文: 刘亚婷, 张琦, 徐金华. 体外培养调节性树突状细胞的研究进展 [J] . 中华器官移植杂志, 2019, 40(9) : 573-576. DOI: 10.3760/cma.j.issn.0254-1785.2019.09.015.
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树突状细胞(dendritic cell,DC)是体内作用最强的专职抗原递呈细胞,是连接先天性免疫与适应性免疫的重要桥梁。其中一部分树突状细胞具有负向调节免疫反应的功能,能够诱导免疫耐受,这部分细胞被称为调节性树突状细胞(regulatory dendriti cell,DCreg))也被叫作耐受性树突状细胞(tolerant dendritic cell,DCtol)[1]。DCreg可以通过降低细胞表面共刺激分子表达来降低激活T淋巴细胞的能力,诱导T淋巴细胞无能以及诱导调节性T淋巴细胞的产生,也可以通过分泌抗炎因子如白细胞介素10(interleukin 10;IL-10)和转化生长因子-β(TGF-β)来促进免疫耐受。DCregs以其在抑制器官移植排斥和防治自身免疫性疾病上的广泛应用前景受到越来越多学者的重视。因此关于DCregs获得途径的研究成为该领域的重要研究方向之一。

一、细胞因子

IL-10具有调节细胞的生长与分化,参与炎性反应的作用,是最早被用来诱导DCreg的细胞因子之一[2,3]。IL-10能够诱导人外周血单个核细胞(peripheral blood mononuclear cell,PBMC)以及小鼠骨髓细胞(bone marrow,BM)分化的DCreg表面的II型主要组织相容性抗原(MHC-II)、协同共刺激分子等分子的表达降低,继而诱导T淋巴细胞无能;IL-10诱导的DCreg也可以诱导两种调节性T淋巴细胞(regulatory T cells, Tregs)生成:CD4CD25Foxp3Treg细胞以及以分泌IL-10为特征的Tr1细胞;IL-10诱导的DCreg能够抵抗脂多糖(LPS)等促进DC成熟的刺激因子,使DCreg保持未成熟的状态[4]。利用慢病毒质粒向BM导入IL-10基因的研究显示其所诱导的DCreg具有增高IL-10分泌、降低促炎因子产生的作用[5]

TGF-β是一种具有免疫抑制活性的细胞因子,TGF-β诱导的小鼠BMDCreg低表达CD40、CD80等共刺激分子,抑制IL-12、肿瘤坏死因子-α(TNF-α)生成,促进IL-10的生成[6]。BMDC中转入TGF-β的基因可以降低实验性自身免疫性脑脊髓炎(EAE)小鼠体内产生细胞因子IL-17的Th17细胞和产生IFN-γ的Th1细胞比例[7]。将TGF-β与自杀相关因子配体(Fasl)基因联合转入BMDC中发现这些DC能够降低表面分子CD80、CD83的表达,提高IL-10的分泌水平,延长大鼠肝脏移植存活时间[8]

IL-10与TGF-β联合诱导DCreg是很多研究选择的细胞因子组合。IL-10与TGF-β联合诱导的人PBMC来源的DCreg低表达CD40等共刺激分子,高分泌IL-10、IL-6、前列腺素E2(PGE2),低分泌IL-12、IL-23,可以诱导记忆T淋巴细胞对强抗原特异性无反应[9]。大鼠骨髓细胞导入IL-10与TGF-β基因诱导的DCreg低表达CD80、CD86及MHCII分子,降低效应性T淋巴细胞(Teff)增殖并对能够抑制移植免疫排斥[10]。小鼠诱导性多能干细胞(iPS)在双因子IL-10与TGF-β的联合作用下诱导的DCreg能够促进Treg细胞生成,抑制Teff增殖,并抑制同种异体小鼠心脏移植免疫排斥反应[11,12]。干扰素-γ(IFN-γ)通常被认为是促炎因子,能够促进DC介导初始T淋巴细胞活化,启动抗原特异性免疫应答。然而,近来发现大剂量的(5 000 U/ml)IFN-γ可以诱导人PBMC来源的DC成为DCreg,ILT-4等负向分子的表达升高,IL-10/IL-12p70的生成比率也升高[13,14]。这些研究表明在一定条件下原本处在免疫平衡相反一端的因素也会发挥与另一端相似的作用。

IL-35是最新被发现的IL-12家族的细胞因子。在BMDC培养体系中加入IL-35后发现可以抑制DC成熟,抑制IFN-γ、IL-23的分泌,抑制Th17细胞增殖,促进Treg细胞生成并延长小鼠心脏移植存活时间[15]。同样,通过慢病毒转录IL-35进入BMDC后,发现此类DC表面高表达CD11b分子,低表达MHCII分子,并且促进IL-10产生,抑制IL-12产生,可以显著抑制EAE小鼠炎症反应[16]

近来也有文献报道IL-1家族中的IL-1与IL-37对于DC的影响:经IL-1处理的未成熟DC高表达了PD-L1这一免疫负调控分子,并且表达程度与IL-1的浓度呈正相关性[17]。向小鼠转入人的IL-37基因发现经LPS刺激后IL-37转基因小鼠DC与对照组小鼠DC相比表面MHCII和CD40分子的表达比率降低,显著降低CD8Teff增殖比率,增加Treg细胞生成比率,增加IL-10生成[18]

二、化学药物

糖皮质激素被证实能够显著地抑制炎症反应,促进体内Foxp3 Treg数量增长,是研究中最常用的诱导DCreg的药物之一。地塞米松诱导的DCreg具有低表达MHCII分子和共刺激分子,高分泌IL-10、低分泌IL-12的特征,并促进Foxp3Treg增殖[19]。地塞米松联合单磷酰脂质A (monophosphoryl lipid A)诱导的DCreg能够降低Th1和Th17细胞分化水平[20]

维生素D3是另外一种被广泛认知的具有免疫耐受作用的药剂,在人PBMC或小鼠BM细胞培养DC的系统里加入维生素D3后,DC表面的CD80、CD86和MHCII分子表达降低,IL-10产生增多,而IL-6、IL-12等炎症因子的产生减少。维生素D3通过降低Th1、Th17细胞分化,提高Treg生成等机制抑制了EAE及GVHD疾病小鼠的炎症反应[21]。另有文章深入探讨了维生素D3诱导人单核细胞向DCreg分化的作用机制,并发现葡萄糖代谢以及溶酶体相关膜蛋白3可能是影响维生素D3诱导人单核细胞向DCreg分化的重要因素[22]

雷帕霉素(Rapamycin)可以通过结合雷帕霉素靶蛋白(mTOR)抑制树突状细胞成熟。雷帕霉素可以降低小鼠DC的共刺激分子的表达、炎性细胞因子的分泌、以及对于同种异体免疫细胞的激活能力,可以诱导CD25Foxp3Treg,并且可以诱导CD8T淋巴细胞凋亡,延长小鼠移植器官存活时间[23]

前列腺素与维A酸也是研究较多的化学药物,近期研究主要集中于探讨其诱导DCreg发挥免疫调节的作用通路[24,25]。另有一些研究发现很多种药物包括BET蛋白抑制剂[26]、蛋白激酶C抑制剂[27]、5-酮戊二酸[28]等具有诱导DCreg的作用。

三、内生性蛋白

除了IL-10等细胞因子外,近年来也发现许多其他的内生性生物大分子具有诱导DCreg的作用。这其中包括凝集素类[半乳凝素(Galetin-1)、C型凝集素(C-type lectins)、唾液酸乳蛋白凝集素(siglecs)]、补体类(C1q、C4结合蛋白、Factor H)、生长素类[血管内皮生长因子(VEGF)、胎盘生长因子(PIGF)、肝细胞生长因子(HGF)]、神经递质[五羟色胺(serotonin)、组胺(histamine)、肾上腺素(adrenaline)、血管活性肠肽(VIP))等[29]。这些分子诱导的DCreg也具备了低表达细胞表面共刺激分子、高分泌IL-10、诱导Treg生成等特点。

四、微生物

近年来众多研究也发现包括分枝乳酸杆菌、金黄色葡萄球菌、尘螨等微生物的成分也展现出了诱导DCreg生成的倾向,并且多数研究发现了微生物成分诱导的DCreg也具有高分泌IL-10、诱导Treg生成等特点[30,31,32]。由于DCreg的主要作用为机体的负向免疫调控,因此推测诱导DC向DCreg转化可能是微生物对抗机体免疫清除的手段之一。

五、干细胞及其他细胞

干细胞与DCreg的关系,除了利用干细胞的多能性特点,还利用干细胞作为诱导源细胞:如利用小鼠和人iPS细胞诱导DCreg生成,可以解决未来利用DCreg治疗疾病所面临的细胞来源不足的问题[11,33]。也有一些本身具有免疫调节功能的干细胞如脂肪干细胞(ASC)、间充质干细胞(MSC)等。ASC与未成熟DC共培养后发现ASC抑制DC成熟,高表达TGF-β1、IL-10和IDO,诱导Treg细胞生成[34]。MSC与未成熟DC共培养后得到的DCreg低表达CD86、MHCII分子,不能激活Teff,能够诱导Foxp3Treg生成,Notch-1信号通路中的Jagged-1分子是实现这一作用的关键分子[35]

另外一些研究显示其他细胞如神经瘤细胞、肥大细胞、肝细胞等,这些研究显示了不同组织器官所形成的微环境可以影响DC细胞成熟以及其功能[36,37,38]

六、基因工程与新型材料

RNA干扰是有效沉默或抑制目标基因表达的过程,可以由小干扰RNA(siRNA)或者短发夹RNA(shRNA)诱导靶mRNA的降解,实现目标基因沉默。最近的两项分别利用siRNA和shRNA针对DC表面的共刺激分子CD40的研究显示:沉默CD40基因后的DC显示出了DCreg的特性,并且对于小鼠心脏移植及小鼠糖尿病模型都显示出了治疗作用[39,40]。另外一篇利用siRNA沉默排斥性导向分子a(RGMa)的研究结果显示经过处理后的DC表面CD80、CD86、MHCII等分子表达降低,低分泌IL-12和TNF-α,激活Teff的能力降低[41]。而通过长链非编码RNA(lncRNA)技术导入MALAT1基因的BMDC显示出了DCreg的功能,诱导了Treg生成并有效抑制了小鼠心脏移植排斥反应[42]

纳米微粒的尺寸一般比生物体内的细胞小得多,可以利用纳米生物技术操纵生物大分子。目前已经有一些研究成功利用纳米粒子携带雷帕霉素、布地奈德等药物诱导了DCreg[43,44]。纳米粒子同时携带特定抗原与靶向分子的特性使其成为目前最有希望的诱导抗原特异性免疫耐受的手段,值得进行更加深入细致的研究和探讨。

不同于纳米材料的作用方式,近来一项研究发现石墨烯量子材料本身就具有一些生物学活性,能够减低DC激活Th1和Th17细胞的能力,诱导了CD4CD25highFoxp3Treg细胞生成,抑制了mTOR分子活性,使DC展示出了DCreg的特点[45]

DCreg因其具有诱导免疫耐受的作用,在器官移植排斥反应及自身免疫性疾病中具有潜在的治疗前景。如本文中所列的研究结果所示,经过众多研究者的共同努力目前已经发现了众多体外能够诱导DCreg生成的因素,通过多方位的对于诱导DCreg生成因素的研究扩展了体外获得DCreg的方式方法,特别是与新领域如干细胞与新兴材料技术的结合,为这方面的研究开拓了新的思路,并且向实现诱导抗原特异性免疫耐受的目标前进了一步,为将来DCreg的临床应用建立了深厚基础。

利益冲突
利益冲突

所有作者均声明不存在利益冲突

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