实验研究
小鼠原位小肠移植模型的显微手术技巧及围手术期处理
中华实验外科杂志, 2016,33(6) : 1557-1560. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1001-9030.2016.06.037
摘要
目的

建立稳定的原位小肠移植小鼠模型。

方法

应用C57BL/6小鼠进行同基因系原位小肠移植。显微手术获取供体小鼠带血管蒂(包括门静脉、肠系膜上动脉以及动脉附着处腹主动脉瓣)的小肠作为移植肠;将移植肠的动静脉分别与受体小鼠的下腔静脉和腹主动脉作端侧吻合;切除受体小鼠的小肠,将残留肠管的远、近断端分别与移植肠两断端行端端吻合。优化显微手术技巧和围手术处理措施。

结果

进行小鼠原位小肠移植70次。初期移植成功率为38.1%,技术成熟后移植成功率为73.5%。技术成熟后供体手术时间为(46.3±3.8) min,移植肠冷缺血时间为(35.2±4.2) min,受体手术时间为(98.0±5.5) min,血管吻合时间为(30.6±3.2) min,肠管吻合时间为(28.6±2.8) min。

结论

通过优化手术技巧及围手术期处理可构建稳定的原位小肠移植小鼠模型,为小肠移植基础研究提供良好的实验平台。

引用本文: 孟柠, 潘志坚, 李杭, 等.  小鼠原位小肠移植模型的显微手术技巧及围手术期处理 [J] . 中华实验外科杂志, 2016, 33(6) : 1557-1560. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1001-9030.2016.06.037.
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小肠移植是治疗终末性肠功能衰竭的理想方法,但受到排异和感染等难题的困扰,小肠移植明显落后于其他器官移植技术。小肠移植后免疫排异的监控、预防和治疗、感染的防治以及移植肠功能保护等一系列问题有待进一步解决[1,2]。小鼠具有遗传背景稳定、品系丰富、品系间移植排斥反应明显、实验均一性和重复性好、相关分子生物学试剂品种齐全等诸多优点。建立小鼠模型可为小肠移植研究,特别是调控基因、功能蛋白等分子水平研究提供实验平台。由于存在显微血管吻合、显微肠管吻合、围手术期处理及术后恢复等技术难点,自1992年首次报道以来,国内外相关报道多为小鼠异位小肠移植模型[3,4,5,6]。我们通过优化手术技巧和围手术期处理方法,建立了稳定的原位小肠移植小鼠模型,现报道如下。

 
 
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