科研课题专栏
流式细胞分选仪高效分选条件的探索
国际医药卫生导报, 2021,27(1) : 24-29. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1007-1245.2021.01.006
摘要
目的

针对如何提高流式分选试验分选得率和纯度的问题,建立高效的流式细胞分选条件,为流式分选技术应用提供参考依据。

方法

2019年10月至2020年6月设计以BD FACS Sorp Aria II为例,首先以微球样品作为研究对象,经检测不同分选速率、不同分选模式及不同喷嘴条件下的分选结果,分析其影响因素,并以优化的条件尝试高效分选naïve T细胞。

结果

70 μm喷嘴,purity模式下,flow rate 1.0、3.0、5.0、7.0 4种速率的分选纯度均达到98%以上,但flow rate值越高,分选得率越低。不同分选模式分选时,yield模式的分选效率和得率都是最高的,分别为(99.67±0.33)%、(79.78±7.14)%,但其纯度显著低于另2种模式(均P<0.05)。3种喷嘴条件下分选后的纯度均达到98%以上,且得率差异无统计学意义(P>0.05)。

结论

分选原代naïve T细胞,70 μm喷嘴,flow rate1.0,purity模式条件最合适。

引用本文: 黄莹莹, 徐琴, 姜宇. 流式细胞分选仪高效分选条件的探索 [J] . 国际医药卫生导报, 2021, 27(1) : 24-29. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1007-1245.2021.01.006.
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近年来,流式细胞术作为临床检验中无可替代的重要技术之一1,已普遍应用于免疫学、神经生物学、肿瘤学、血液学、造血干细胞移植等研究领域2, 3, 4, 5,甚至也是农业学科的有效检测方法6,使用广泛。流式细胞仪是应用流式细胞术的有效工具,分选型流式细胞仪一般还有筛分的作用,可以根据所检测颗粒的某种性质进行分选和回收,用于后续功能试验。并且,如果整个分选的过程是在无菌条件下进行的,分选下来的细胞还可以用来继续培养。但分选之前仪器的条件设置和调试都比较繁琐、费时7,在实际运行中受到多种因素的制约8。其中,分选的3大要素,分选纯度、速度、得率是呈三角制衡关系的9。高效地获得高得率、高纯度的靶生物颗粒,是完成一个完美分选及下游试验的需要。然而分选速率、分选模式及不同尺寸的喷嘴均是影响分选得率的较大因素。如何优化流式细胞分选仪的关键要素,探索高效的分选条件,提高分选得率和纯度的研究,国内外并不多见。

 
 
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