基础研究
ENGLISH ABSTRACT
启动子结合蛋白调节C3H10T1/2间充质干细胞的成骨机制
赵庆华
张昭亮
李吉鹏
张爱华
作者及单位信息
·
DOI: 10.3760/cma.j.issn.0376-2491.2014.03.020
DNA hypermethylation at C/EBPα gene promoter relieves a PPARγ-associated repression of HDAC1
Zhao Qinghua
Zhang Zhaoliang
Li Jipeng
Zhang Aihua
Authors Info & Affiliations
Zhao Qinghua
Department of Orthopedics, First Municipal People′s Hospital, Shanghai 200080, China
Zhang Zhaoliang
Li Jipeng
Zhang Aihua
·
DOI: 10.3760/cma.j.issn.0376-2491.2014.03.020
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摘要

目的探究启动子结合蛋白(C/EBPα)对于间充质干细胞(MSC)C3H10T1/2细胞成骨调节的分子机制。

方法体外构建成骨分化模型,应用反向聚合酶链反应(RT-PCR)和免疫印迹检测C3H10T1/2细胞成骨分化时过氧化物酶体增殖物激活受体γ(PPARγ)的mRNA和蛋白质的表达;通过构建干扰PPARγ siRNA的腺病毒载体及PPARγ拮抗剂G3335,观察PPARγ对于激活C/EBPα表达的作用。色质免疫沉淀分析(ChIP)检测PPARγ2位于C/EBPα启动子-1 286 bp/-1 065 bp区域内的结合位点并检测PPARγ与C/EBPα启动子-1 286 bp/-1 065 bp区段DNA甲基化和组蛋白高度去乙酰化的关系。

结果C3H10T1/2细胞在成骨分化时,PPARγ的mRNA和蛋白质的表达呈先升高后下降的双时相反应。siRNA和G3335引起的PPARγ活性的下调抑制了C/EBPα在C3H10T1/2细胞成骨分化时的上调(对照组6.1 mg/L,罗格列酮组13.0 mg/L,罗格列酮+G3335组11.0 mg/L, P<0.05)。DNA甲基化能减弱PPARγ2向-1 286 bp/-1 065 bp区段的结合能力。

结论C3H10T1/2细胞在成骨分化时,PPARγ通过结合至C/EBPα启动子-1 286 bp/-1 065 bp区段来促进该基因的表达,阻抑了PPARγ与之结合,与PPARγ相关的蛋白去乙酰化酶抑制得以解除,从而下调了-1 286 bp/-1 065 bp区段的组蛋白乙酰化,C/EBPα启动子促进C3H10T1/2细胞成骨过程。

骨生成;干细胞;过氧化物酶体类
ABSTRACT

ObjectiveTo explore the molecular mechanisms of C/EBPα for regulating the osteogenesis of C3H10T1/2 cells.

MethodsWe constructed an in vitro osteogenic differentiation model and investigated the mRNA and protein expression profile of PPARγ2 during C3H10T1/2 osteogenesis by reverse transcription-polymerase chain reaction(RT-PCR)and Western blot. Next we constructed an adenovirus vector loading siRNA against PPARγ2 and employed a specific antagonist of PPARγ, G3335, to examine the effect of PPARγ on activating the expression of C/EBPα. Then we performed ChIP to test PPARγ2 binding on -1 286 bp/-1 065 bp region of C/EBPα promoter and explore the role of PPARγ in the dependence of histone hypoacetylation on DNA methylation in -1 286 bp/-1 065 bp region of C/EBPα promoter.

ResultsDuring the osteogenic differentiation, PPARγ mRNA and protein expression initially increased and then decreased in double-phase reactions. siRNA and G3335 induced down-regulation of PPARγ activity inhibited C/EBPα in C3H10T1/2 cells up-regulation of osteogenic differentiation. ChIP results show that DNA methylation could weaken the binding section PPARγ2 to -1 286 bp/-1 065 bp capabilities.

ConclusionThis study provides a deeper insight into the molecular mechanisms underlying the osteogenesis of MSCs regulated by C/EBPα in synergy with PPARγ. PPARγcontributes to C/EBPαexpression through binding on -1 286 bp/-1 065 bp region of its promoter during the osteogenesis of C3H10T1/2 cells. And DNA hypermethylation in-1 286 bp/-1 065 bp region during the terminal stage of osteogenesis prevents PPARγ from binding on it so that PPARγ-associated repression of HDAC1 is relieved to down-regulate the acetylation status of -1 286 bp/-1 065 bp region. Meanwhile DNA methylation and histone acetylation are linked by PPARγ for regulating the differentiation of MSCs.

Osteogenesis;Stem cells;Peroxisomes
Zhao Qinghua, Email: mocdef.3ab61oahzsenobwas

Zhao Qinghua and Zhang Zhaoliang are the first authors who contributed equally to the article

引用本文

赵庆华,张昭亮,李吉鹏,等. 启动子结合蛋白调节C3H10T1/2间充质干细胞的成骨机制[J]. 中华医学杂志,2014,94(3):227-231.

DOI:10.3760/cma.j.issn.0376-2491.2014.03.020

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在多种类型的人类疾病中,间充质干细胞(MSC)的成骨与成脂肪作用之间的平衡会受到破坏。因此,可以通过调节骨形成与脂肪形成的平衡来预防、治疗体内不正常的骨形成与过度的脂肪形成 [ 1 ]。基因启动子(CCAAT)结合蛋白(C/EBPα)作为一种脂肪形成的主要转录因子,具有调节C3H10T1/2型MSC成骨与成脂肪作用平衡的作用,通过表观遗传修饰(DNA甲基化与组蛋白乙酰化)来发挥重要作用 [ 2 ]。过氧化物酶体增殖物激活受体γ(PPARγ)可通过移除组蛋白脱乙酰基酶(HDAC1)来降解蛋白酶体,从而激活C/EBPα的表达 [ 3 ]。PPARγ的结合位点(-1 240 bp/-1 223 bp)应该位于C/EBPα作用的-1 286 bp/-1 065 bp区段中。所以假设在成骨作用终末期,C/EBPα作用区域DNA甲基化阻抑了PPARγ的结合,HDAC1积累于-1 286 bp/-1 065 bp区段中,引起这个区段的组蛋白去乙酰化。为了验证这一假设,本研究观察C3H10T1/2细胞成骨时,PPARγ是如何激活C/EBPα表达以及DNA甲基化与组蛋白乙酰化调节C3H10T1/2细胞成骨作用的分子机制。
材料与方法
1.细胞培养和成骨诱导分化:
C3H10T1/2细胞保存于添加了10%胎牛血清、50 U/ml青霉素、50 g/L链霉素的DMEM培养基中(Invitrogen, Carlsbad,CA,美国)。培养基放置在37 ℃、5%CO 2的人工环境下培养。C3H10T1/2细胞用终浓度为300 μg/L的rhBMP-2(R&D,Minneapolis,MN,美国)处理来进行成骨诱导分化。每3天更换1次培养基。
2.碱性磷酸酶(ALP)活性测定:
ALP的活性以p-硝基苯磷酸作为溶质,在405 nm波长下进行测定。将50 μl样品与50 μl p-硝基苯磷酸(1 g/L)在含有0.5 mmol/L MgCl 2(pH 9.8)的1 mol/L二乙醇胺缓冲液中混合,在37 ℃环境下,置于摇床上混匀15 min。然后以每100 μl反应液加入25 μl的3 mol/L NaOH溶液来终止反应。使用PIERCE蛋白检测试剂盒(Rockford,IL,美国),利用二奎磷酸法(BCA法)测定相同样本的总蛋白含量。在562 nm处读数并根据一系列的白蛋白(牛血清蛋白)标准进行计算。在实验中,ALP水平被标准化为总蛋白含量。每个实验在同一条件下均重复3次。
3.反转录聚合酶链式反应(RT-PCR)技术检测骨桥蛋白和骨钙蛋白mRNA表达水平:
细胞RNA总量可根据试剂说明采用TRIzol分离液分离。在RNA逆转录反应后,根据ABI7900HT系统,采用SYBR ®Premix Ex Taq™(Takara, Dalian,中国)进行RT-PCR的检测。RT-PCR按如下条件进行:94 ℃ 10 s,60 ℃ 30 s为1个循环,进行40个循环。β-肌动蛋白作为成骨标记基因的内部对照。
4.免疫印迹(Western blot)PPARγ蛋白质含量:
配置加入蛋白裂解抑制剂(10 g/ml亮肽酶素,10 g/ml抑胃酶素A和10 g/ml抑肽酶)的RIPA缓冲液,将细胞与上述缓冲液于冰上裂解30 min。采用十二烷基酸钠-聚丙烯酰胺(SDS-PAGE)电泳分离技术将蛋白质分离并转移至硝化纤维薄膜上,并分别应用抗C/EBPα抗体(细胞信号转导技术)、抗PPARγ抗体(abcam)、抗肌动蛋白β抗体(Sigma)检测。使用增强化学发光系统(GE Healthcare Piscataway,NJ,美国)进行免疫染色。
5.扩增C/EBPα启动子区域:
5′端基因敲除突变体的构建用含有Xhol(5′)、Hind(3′)这两个酶切位点的pfu DNA聚合酶(Takara)从C3H10T1/2细胞DNA中,扩增C/EBPα基因5′调控区的1 426 bp片段(-1 381 bp/+45 bp)。该片段被转入pGL3-Basic质粒(Promega,CharbonniErs,法国)中被复制,命名为-1 381 bp/+45 bp片段。以-1 381 bp/+45 bp为模板,借助PCR技术构建了若干5′截断突变体:-1 009 bp/+45 bp,-420 bp/+45 bp, -55 bp/+45 bp。
6.体外甲基化检测:
包含CPG岛1的DNA片段均被限制性核酸内切酶切除,并经过凝胶电泳纯化后,使用CPG甲基化试剂盒(M.SssI每克DNA加入2 U,在37 ℃下孵育6 h)使得所有CPG岛位点甲基化。随后将M.SssI在65 ℃下保温15 min做失活处理。处理过的DNA片段与载体进行连接,之后用酚氯仿纯化并用乙醇沉淀。质粒的浓度通过 A260来检测。
7.真核生物功能质粒的构建:
pcDNA3.1(+)质粒中包含有特殊的Kpnl和Xbal位点,将编码鼠PPARγ2的序列插入其间。构建体的引物序列为:5′ATGGTACCATGGGTGAAACTCTGGGAGAT3′(+),5′CATTCTAGACTAATACAAGTCCTTGTAGAT3′(-)。显性负激活PPARγ2表达载体(PPARγ2-DN)是由pcDNA3.1(+)-PPARγ经历了体外PPARγ编码区L496A位点的突变后构建而成。所有的功能质粒都经过了测序,且其各种过度表达的蛋白质也通过即时转染入人293T细胞和随后的免疫印迹分析得以验证。
8.染色质免疫沉淀作用分析:
细胞在37 ℃下与1%甲醛溶液混合10 min。之后用冷磷酸盐缓冲液(PBS)冲洗,放置于SDS裂解缓冲液中,超声处理至DNA片段大小为300~400 bp。再加入抗乙酰组蛋白3,4抗体(Upstate, New York, NY,美国),抗HDAC1抗体和抗PPARγ抗体(abcam)。4 ℃过夜孵养后,用鱼精蛋白/DNA与50%琼脂糖混合浆(Santa Cruz, CA,美国)收集免疫复合物,约2 h,随后充分冲洗。得到的样品再用洗脱缓冲液(1%SDS,0.1 mol/L NaHCO 3)抽提,加热至65 ℃过夜解除交联。DNA纯化并采用PCR技术检测。用于染色质免疫沉淀的引物组为:引物组A 5′GAGACGTGGGTGCTCACC3′(+);5′TTCTTTCCCTA-CTGTCATTCA3′(-)引物组B5′GAGACGTGGGTG-CTCACC3′(+); 5′ATCGACTGTGCCGTAATCT3′(-)。
9.统计学分析:
应用SPSS 10.0进行所有数据的分析,数据用 M± s表示,用单因素方差分析( ANOVA)和 Student T检验分析组间数据的统计学关系, P<0.05为差异有统计学意义。
结果
1.C3H10T1/2细胞骨化过程中PPARγ2参与C/EBPα的表达活化:
将融合的C3H10T1/2细胞暴露于300 μg/L浓度的rhBMP2中建造体外成骨分化模型。BMP2治疗下,可观察到ALP活性显著升高。定量PCR的结果显示在BMP2处理后第14、21天,骨桥蛋白(OPN)和骨钙蛋白(OC)mRNA的表达水平以及成骨分化中期和末期的标记基因显著上调( 图1 )。PPARγ的mRNA含量水平呈双时相反应,即含量在第3~14天增加,在14 d达到最大水平,直到第21天才逐渐回落( 图1 )。
C3H10T1/2细胞成骨分化过程中,BMP2,G3335和Adv-si-PPARγ2影响下的C/EBPα启动子mRNA表达情况
免疫印迹的结果显示了PPARγ蛋白质含量与mRNA含量具有同样的变化模式。PCR结果显示,siRNA和G3335引起的PPARγ活性的下调抑制了C/EBPα在C3H10T1/2细胞成骨分化时的上调。在C3H10T1/2细胞成骨分化时,PPARγ对于激活C/EBPα的活性的作用相同。2 h C/EBPα mRNA含量:对照组5.2 mg/L,罗格列酮组11.8 mg/L,罗格列酮+G3335组10.1 mg/L;4 h C/EBPα mRNA含量:对照组6.1 mg/L,罗格列酮组12.4 mg/L,罗格列酮+G335组10.8 mg/L;8 h C/EBPα mRNA含量:对照组6.1 mg/L,罗格列酮组13.0 mg/L,罗格列酮+G3335组11.0 mg/L( 图2 )。
PPARγ2插入C/EBPα启动子-1 286/-1 065 bp区段并激活其表达情况
2.PPARγ2结合于-1 286/-1 065 bp启动子区域激活C/EBPα的表达:
得到3个基因敲除片段,-1 009 bp/+45 bp, -420 bp/+45 bp, -55 bp/+45 bp。不同的C/EBPα启动子片段分别被转入pGL3-Basic质粒( 图3 )。BMP2和罗格列酮处理后,-1 381 bp/+45 bp区段的启动子活性显著升高,但-1 009 bp/+45 bp区段的活性变化不明显。使C/EBPα启动子对BMP2和罗格列酮起效应的关键区域位于C/EBPα启动子的-1 381 bp/-1 009 bp区段内。
C/EBPα启动子-1286/-1065 bp区段超甲基化对与PPARγ相关的HDAC1阻滞作用的解除。A.体外甲基化处理和非甲基化处理的CpG岛1启动子荧光酶素载体图像。B.在罗格列酮和BMP2影响下,PPARγ2在C/EBPα启动子-1286/-1065 bp甲基化和非甲基化区段结合情况
构建的过度表达的野生型PPARγ2基因(PPARγ2-WT)和显性负激活PPARγ2基因(PPARγ2- DN)的质粒载体,与-1 381 bp/+45 bp,-1 009 bp/+45 bp,-420 bp/+45 bp, -55 bp/+45 bp片段共转染至C3H10T1/2细胞内显示,PPARγ2-WT能显著提升-1 381 bp/+45 bp片段启动子的活性,但对-1 009 bp/+45 bp片段的启动子活性影响不明显。相比,PPARγ2-DN减弱了-1 381 bp/+45 bp片段活性,而对-1 009 bp/+45 bp片段活性影响不明显,在C/EBPα启动子-1 381 bp/-1 009 bp区域内可能存在PPARγ2的结合位点。
3.C/EBPα启动子-1 286 bp/-1 065 bp区域的DNA甲基化解除与PPARγ激活相关HDAC1的抑制:
染色质免疫沉淀分析(ChIP)检测PPARγ2位于C/EBPα启动子-1 286 bp/-1 065 bp区域内的结合位点。在成骨分化终末期PPARγ2的结合力弱于分化早期。5′-aza可引起DNA去甲基化,从而恢复该区域PPARγ2的结合能力。在C3H10T1/2细胞成骨分化终末期,C/EBPα启动子-1 286 bp/-1 065 bp区域的DNA甲基化能阻断PPARγ2的结合。在体外将-1 286 bp/-1 065 bp区段甲基化,将载体转染至C3H10T1/2细胞内,并在经BMP2或罗格列酮处理后进行染色质免疫沉淀分析显示DNA甲基化能减弱PPARγ2向-1 286 bp/-1 065 bp区段的结合能力。
在C3H10T1/2细胞成骨分化的终末期(21 d)C/EBPα启动子-1 286 bp/-1 065 bp区段的组蛋白3、4发生去乙酰化。C/EBPα启动子区域的组蛋白3、4去乙酰化水平在一定程度上取决于DNA甲基化的水平。PPARγ可通过移除组蛋白脱乙酰基酶(HDAC1)来降解蛋白酶体,从而激活C/EBPα的表达。在C3H10T1/2细胞成骨分化早期(3 d)和终末期(21 d)时,同成骨分化早期相比,分化终末期的组蛋白3、4去乙酰化被阻抑,而HDAC1在C/EBPα启动子-1 286 bp/-1 065 bp区段的结合能力明显增强。5′-aza可将HDAC1从C/EBPα启动子-1 286 bp/-1 065 bp区段移除,引起此段组蛋白3、4高度去乙酰化。
在BMP2诱导3 d后,C/EBPα启动子-1 286 bp/-1 065 bp区段内,PPARγ2-WT和PPARγ2-DN的过度表达情况显示,HDAC结合能力和组蛋白3、4去乙酰化水平。PPARγ2-DN对于HDAC1结合能力的增强及组蛋白3、4去乙酰化的阻滞作用明显强于PPARγ2-WT。在BMP2和5′-aza诱导21 d后,可见类似的结果。
讨论
对间充质干细胞成骨分化的探究可帮助阐明MSC成骨分化的机制,也对治疗一些以骨质缺失为特点的疾病有重要作用。小鼠爬坡试验促进成骨分化中,PPARγ2和C/EBPα mRNAs的表达含量显著高于对照组 [ 4 ]。C/EBPα能诱导C2C12成肌细胞分化成为成脂细胞和成骨细胞,并且成骨细胞的形成是在C/EBPα较低水平时而脂肪细胞特异性分化需要较高的C/EBPα表达 [ 5 ]。Fan等 [ 2 ]的研究进一步提供证据表明C/EBPα能够调节间充质干细胞成骨和成脂分化之间的平衡,其中涉及C/EBPα启动子-1 381 bp/-1 009 bp区域内显著的DNA甲基化和组蛋白3、4去乙酰化。本研究进一步验证了在C3H10T1/2细胞成骨分化时,PPARγ可通过结合C/EBPα启动子-1 286 bp/-1 065 bp区域来激活C/EBPα的表达,这意味着PPARγ可能成为另一个调节间充质干细胞成骨和成脂分化之间平衡的靶点。
本研究显示位于-1 286 bp/-1 065 bp的C/EBPα启动子区域内假定的PPARγ结合位点。因此推测在C3H10T1/2细胞成骨分化时,PPARγ对于C/EBPα具有激活作用。为了验证这一假设,我们首先构建了承载干扰PPARγ的siRNA的腺病毒载体并感染C3H10T1/2细胞,使得PPARγ表达下调。除此载体外,还使用了特异的PPARγ拮抗剂G3335来阻滞其活性,结果显示在C3H10T1/2细胞成骨分化时,PPARγ对于激活C/EBPα的活性至少起了一部分作用。本研究也观察到了PPARγ与结合于C/EBPα启动子-1 286 bp/-1 065 bp区段的HDAC1相拮抗,即PPARγ可将HDAC1从C/EBPα启动子-1 286 bp/-1 065 bp区段移除。
CpG区域甲基化、染色体结构和基因沉默是相互关联的。在体外,启动子序列的甲基化可抑制基因效应。CpG岛的甲基化能引起稳定的遗传转录沉默,其通过甲基-DNA特异蛋白结合于相应CpG岛来吸引组蛋白修饰酶,在局部形成一个染色质沉默状态。目前的研究结果表明,C/EBPα启动子-1 286 bp/-1 065 bp区域的DNA甲基化和组蛋白3、4的去乙酰化是由PPARγ相联系的,即-1 286 bp/-1 065 bp区域的DNA甲基化阻滞了PPARγ结合该区域,因此PPARγ相关的HDAC1抑制得到缓解,HDAC1可结合到-1 286 bp/-1 065 bp区域下调组蛋白的乙酰化水平。
如果运用原代间充质干细胞探寻MSCs在PPARγ、C/EBPα和表观遗传修饰等调节因素下的成骨分化的分子机制,取得的实验数据相对于细胞系来说无疑更接近体内的环境。但是有时候用原代细胞去研究表观遗传学会有相当的困难,因为原代细胞一旦脱离体内环境而在体外培养,遗传学状态往往会发生较大的变化。本实验构建的体外细胞模型为成骨分化模型,如构造更加系统的体外细胞模型,包括成骨、成脂肪共分化模型,可能获得关于动物表观遗传修饰的更多信息。
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百度学术
万方数据
备注信息
A
赵庆华,Email: mocdef.3ab61oahzsenobwas
B

赵庆华、张昭亮对本文有共同贡献,并列为第一作者

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