综述
鸟苷酸结合蛋白5在肿瘤中的研究进展
肿瘤研究与临床, 2023,35(9) : 709-712. DOI: 10.3760/cma.j.cn115355-20230214-00072
摘要

恶性肿瘤是人类死亡主要的原因之一。鸟苷酸结合蛋白5(GBP5)属于干扰素γ诱导的大型鸟苷三磷酸酶超家族,参与多种病理生理过程。越来越多的研究表明GBP5参与肿瘤的恶性进展。文章主要对GBP5的生物学特性及其在肿瘤中的表达、调控和功能进行综述,以期为肿瘤的诊疗提供理论依据。

引用本文: 马明真, 郑勇斌. 鸟苷酸结合蛋白5在肿瘤中的研究进展 [J] . 肿瘤研究与临床, 2023, 35(9) : 709-712. DOI: 10.3760/cma.j.cn115355-20230214-00072.
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癌症是一个持续存在的全球性健康问题,是导致人类死亡第2大原因[1]。恶性肿瘤因其症状的非特异性,在确诊时大部分已是进展期,然而靶向药物(如血管内皮生长因子受体和表皮生长因子受体的单抗等)的广泛应用已经革新了恶性肿瘤的治疗,探究参与肿瘤发生、发展的基因和信号通路将有助于确定新的治疗和预后的靶点[2,3]。鸟苷酸结合蛋白(GBP)由7个不同的成员(GBP1~7)组成,并广泛参与信号转导、翻译、囊泡运输、胞吐作用和程序性细胞死亡等生理过程[4,5,6]。其中,GBP5主要与炎症小体的装配、固有免疫、感染性疾病(病毒、细菌、原虫的感染)、自身免疫、组织器官损伤和骨质流失等疾病的发生、发展密切相关[7,8,9,10,11,12]。最近,GBP5在肿瘤中的作用也取得一些进展,但对其已知功能机制的探讨较少。因此,现重点阐述GBP5的生物学功能及其在肿瘤发生、发展中的研究进展,以期得到全方位的认识,加深对GBP5的理解。

1 GBP5概述

GBP属于干扰素γ(IFN-γ)诱导的大型鸟苷三磷酸(GTP)酶动力蛋白超家族成员,相对分子质量为65×103~73×103,有7个高度同源的成员(GBP1-7),位于1号染色体的单个簇内[4,5]。GBP广泛参与信号转导、翻译、囊泡运输、胞吐作用和程序性细胞死亡等生理过程[4,5,6]。最初,GBP是因为其结合鸟嘌呤核苷酸的能力而被鉴定[13]。GBP具有相似的保守结构,即N端球状GTP结合域和C端螺旋GTP酶效应域,具有一定水解GTP和鸟苷二磷酸(GDP)的能力。

GBP1、GBP2和GBP5具有异戊二烯化修饰的C端CaaX基序("C"表示半胱氨酸,"a"表示脂肪族氨基酸,"X"表示任何氨基酸),从而赋予其对某些病原体膜更高的靶向识别能力[8,14,15]。GBP3和GBP5是目前已知的具有剪接变体的GBPs[16,17]。其中,GBP5有3种RNA转录本,2种不同蛋白质的表达形式。正常细胞中表达全长蛋白(GBP5a/b),但黑色素瘤和淋巴瘤细胞株也表达C末端缺乏97个氨基酸的截断体(GBP5ta)。虽然这种肿瘤特异性变异体与野生型蛋白质具有相同的GTP结合区域,但由于前者缺乏CaaX位点导致其在核苷酸寡聚、结合和水解方面有微小差异[18]

2 GBP5在肿瘤中的作用
2.1 GBP5的表达情况和预后价值

GBP5在多种肿瘤中表达异常并具有重要的预后价值。Liu等[19]对来自不同病理分期的口腔鳞状细胞癌患者的肿瘤组织和癌旁正常组织测序后发现,与癌旁正常组织相比,GBP5在肿瘤组织中的表达更高,且在病理分期较晚的肿瘤组织中表达显著增加。同时,对来自37例和499例口腔鳞状细胞癌患者的配对组织样本分别进行反转录聚合酶链反应(RT-PCR)和免疫组织化学检查后得到了一致的结果。接下来,通过分析公共数据库,作者发现GBP5的表达与口腔鳞状细胞癌患者的总生存(OS)率以及无病生存(DFS)率呈负相关。Patil等[20]对包含86例胃腺癌患者的手术标本的组织微阵列分析发现GBP5在上皮和基质中的阳性率分别为53%和71%,提示其在胃癌恶性进展中发挥重要作用。Friedman等[21]发现与正常结肠黏膜组织相比,结肠髓样癌中包括GBP5在内的多种IFN-γ诱导的免疫调节基因显著上调。

Yu等[22]通过蛋白免疫印迹分析包括7对Ⅱ级,7对Ⅲ级和3对Ⅳ级胶质母细胞瘤样品后发现,70%的样本中GBP5的表达显著增加并与肿瘤的分级相关。值得注意的是,在GBP5高表达的样本中,8例表达全长GBP5a/b,6例表达截短体GBP5ta,提示全长GBP5a/b可能在胶质母细胞瘤样品中发挥更重要的作用。Cheng等[23]研究发现,与正常乳腺上皮细胞相比,GBP5在三阴性乳腺癌(TNBC)细胞株中普遍高表达;在预后方面,GBP5上调预示TNBC患者有更高的无复发生存(RFS)率和无进展生存(PFS)率。

此外,Hunt等[24]根据雌激素受体(ER)和人表皮生长因子受体2(HER2)对乳腺癌队列分组后发现,在未分类的乳腺癌队列中GBP5与RFS和OS的改善相关;GBP5的表达在HER2阳性肿瘤中与RFS的改善相关;而GBP5与ER阳性乳腺癌的预后指标无显著的相关性。在皮肤黑色素瘤中观察到GBP5的表达增加提示更好的预后[25]。同样,在非小细胞肺癌中,GBP5在肿瘤组织中高表达,且GBP5高表达的患者具有更高的OS[26]。这提示GBP5在肿瘤组织中的表达具有较高组织特异性,GBP5可能会通过多种途径影响肿瘤患者的预后。

2.2 GBP5参与肿瘤恶性进展的机制

在口腔鳞状细胞癌细胞株中,沉默GBP5后G1期细胞的百分比增加、细胞周期蛋白依赖性激酶抑制剂(p21和p27)的基因表达水平显著增加,上皮-间充质转化(EMT)标志物,如Twist/N-钙黏蛋白和Snail表达降低[19]。因此,GBP5可能通过促进G1/S期转换和EMT促进肿瘤的增殖和侵袭转移。Yu等[22]发现抑制GBP5的表达抑制了胶质母细胞瘤细胞在体外和体内的增殖、迁移和侵袭,并通过非受体酪氨酸激酶(Src)/细胞外调节蛋白激酶1/2(Erk1/2)/血清基质金属蛋白酶3(MMP3)轴影响胶质母细胞瘤的恶性表型。在GBP5表达水平较高的TNBC中,下调GBP5可显著抑制细胞迁移、IFN-γ/信号转导、转录激活因子1(STAT1)和肿瘤坏死因子α(TNF-α)/核因子κB(NF-κB)信号轴活性以及程序性死亡受体配体1(PD-L1)的表达[27]

然而,在结直肠癌细胞株中,过表达GBP5可能通过诱导巨噬细胞分化抑制肠癌细胞的活力和增殖能力[28]。这部分说明GBP5可以通过不同的途径影响肿瘤的恶性进展。基于紫杉醇的术前(新辅助)或术后(辅助)化学疗法普遍用于TNBC的治疗。研究表明,GBP5可以通过激活蛋白激酶B(AKT)/哺乳动物雷帕霉素靶蛋白(mTOR)信号轴和抑制TNBC细胞自噬增强紫杉醇的细胞毒作用[23]。同时,在GBP5沉默细胞中,化学耐药和干性相关表面标志物的表达均降低,意味着GBP5表达可能直接或间接影响参与干细胞分化相关基因的表达水平从而影响化疗敏感性。这提示GBP5可能是化疗疗效的一个潜在预测因子。

2.3 GBP5与肿瘤免疫

肿瘤是由周围的血管、免疫细胞、成纤维细胞、骨髓源性炎性细胞、各种信号分子和细胞外基质组成的复杂生态系统,因此需要考虑GBP5在肿瘤免疫微环境中作用。

GBP5的表达与肿瘤免疫微环境中多种免疫细胞的浸润程度相关。M1巨噬细胞即经典活化的巨噬细胞,可以产生多种细胞因子和趋化因子杀伤肿瘤细胞,近年来的研究表明GBP表达水平与M1巨噬细胞在肿瘤组织中的含量相关[29]。Fujiwara等[30]通过诱导巨噬细胞的分化发现GBP5是M1巨噬细胞的标志物。同样地,GBP5也是肿瘤相关巨噬细胞向M1极化的标志物[31]。Li等[28]对肠癌样本的单细胞测序数据分析发现GBP5在巨噬细胞中高表达。在肿瘤组织中对M1巨噬细胞分化的诱导可能部分解释GBP5的抑癌作用。

前期的一些文献已将GBP5鉴定为免疫检查点的共表达基因[32,33]。在TNBC中,较高的GBP5和PD-L1表达与较短脑转移时间相关[27]。同样,在程序性死亡受体1(PD-1)和PD-L1高表达的基底样乳腺癌中,GBP5与良好预后和免疫细胞浸润相关[34]。此外,GBP5与多种免疫调节因子的表达显著相关,并可以作为潜在的标志物预测肿瘤免疫治疗的疗效[26,35]。然而,GBP5与免疫检查点的调控及其对免疫治疗的影响需要进一步探究。

在一些感染性疾病中,GBP5已被证实可以诱导巨噬细胞的焦亡[36]。最近研究发现,GBP5也是胃癌中的焦亡相关基因并可以预测胃癌患者的预后[37]。同时,炎症小体在调控焦亡中发挥重要作用[38]。炎症小体是胞质内的模式识别受体(PRR)参与组装的多蛋白复合体,包括寡聚化核苷酸结合结构域样受体(NLR)家族中的NLRP1、NLRP2、NLRP3、NLRC4,黑色素瘤缺乏因子2样受体(ALR)家族中的黑色素瘤缺乏因子2(AIM2)等经典和caspase-11非经典炎症小体[39]。炎症小体的激活可促进白细胞介素18(IL-18)、IL- 1β、IL-10等炎症因子的成熟和释放,可能发挥抗肿瘤免疫作用[40]。同时,这些因子也可能引起炎症级联反应,从而在特定情况下促进肿瘤的发展[41]。鉴于GBP5在炎症小体活化和焦亡中的作用[7,42,43],GBP5可能在肿瘤免疫中的发挥重要作用。

3 展望

随着研究的深入,GBP5在肿瘤发生、发展中的作用逐渐被阐明。目前GBP5在肿瘤中的研究主要集中在全长GBP5a/b,对于异戊二烯化位点的截短体GBP5ta缺乏深入的探究。虽然研究表明不同的肿瘤中GBP5a/b是主要的形式,但仍然能够在细胞株和组织标本中检测到GBP5ta,所以需要探究不同剪接变体在肿瘤发生、发展中的特定功能。其次,需要更多深入的研究以挖掘其在肿瘤发生、发展中的具体分子机制,有利于确定新的治疗和预后靶点。最后,需要在肿瘤微环境的背景下进行进一步实验,以确定GBP5和免疫相关分子在体内的相互作用,从而为宿主的抗肿瘤免疫反应奠定基础。

利益冲突

所有作者均声明不存在利益冲突

参考文献
[1
SiegelRL, MillerKD, WagleNSet al. Cancer statistics,2023[J]. CA Cancer J Clin202373(1):17-48. DOI:10.3322/caac.21763.
[2
RovielloG, D'AngeloA, PetrioliRet al. Encorafenib,binimetinib,and cetuximab in BRAF V600E-mutated colorectal cancer[J]. Transl Oncol202013(9):100795. DOI:10.1016/j.tranon.2020.100795.
[3
RosenLS, JacobsIA, BurkesRL. Bevacizumab in colorectal cancer:current role in treatment and the potential of biosimilars[J]. Target Oncol201712(5):599-610. DOI:10.1007/s11523-017-0518-1.
[4
KutschM, CoersJ. Human guanylate binding proteins:nanomachines orchestrating host defense[J]. FEBS J2021288(20):5826-5849. DOI:10.1111/febs.15662.
[5
HaqueM, SiegelRJ, FoxDAet al. Interferon-stimulated GTPases in autoimmune and inflammatory diseases:promising role for the guanylate-binding protein(GBP)family[J]. Rheumatology(Oxford)202160(2):494-506. DOI:10.1093/rheumatology/keaa609.
[6
DingK, LiX, RenXet al. GBP5 promotes liver injury and inflammation by inducing hepatocyte apoptosis[J]. FASEB J202236(1):e22119. DOI:10.1096/fj.202101448R.
[7
MeunierE, WalletP, DreierRFet al. Guanylate-binding proteins promote activation of the AIM2 inflammasome during infection with Francisella novicida[J]. Nat Immunol201516(5):476-484. DOI:10.1038/ni.3119.
[8
KrappC, HotterD, GawanbachtAet al. Guanylate binding protein(GBP)5 is an interferon-inducible inhibitor of HIV-1 infectivity[J]. Cell Host Microbe201619(4):504-514. DOI:10.1016/j.chom.2016.02.019.
[9
LiY, LinX, WangWet al. The proinflammatory role of guanylate-binding protein 5 in inflammatory bowel diseases[J]. Front Microbiol202213:926915. DOI:10.3389/fmicb.2022.926915.
[10]
HaqueM, SinghAK, OusephMMet al. Regulation of synovial iInflammation and tissue destruction by guanylate binding protein 5 in synovial fibroblasts from patients with rheumatoid arthritis and rats with adjuvant-induced arthritis[J]. Arthritis Rheumatol202173(6):943-954. DOI:10.1002/art.41611.
[11]
GuoH, NiM, XuJet al. Transcriptional enhancement of GBP-5 by BATF aggravates sepsis-associated liver injury via NLRP3 inflammasome activation[J]. FASEB J202135(6):e21672. DOI:10.1096/fj.202100234R.
[12]
PlaceDE, MalireddiR, KimJet al. Osteoclast fusion and bone loss are restricted by interferon inducible guanylate binding proteins[J]. Nat Commun202112(1):496. DOI:10.1038/s41467-020-20807-8.
[13]
PrakashB, PraefckeGJ, RenaultLet al. Structure of human guanylate-binding protein 1 representing a unique class of GTP-binding proteins[J]. Nature2000403(6769):567-571. DOI:10.1038/35000617.
[14]
KimBH, ShenoyAR, KumarPet al. IFN-inducible GTPases in host cell defense[J]. Cell Host Microbe201212(4):432-444. DOI:10.1016/j.chom.2012.09.007.
[15]
LiLF, YuJ, LiYet al. Guanylate-binding protein 1,an interferon-induced GTPase,exerts an antiviral activity against classical swine fever virus depending on Its GTPase activity[J]. J Virol201690(9):4412-4426. DOI:10.1128/JVI.02718-15.
[16]
NordmannA, WixlerL, BoergelingYet al. A new splice variant of the human guanylate-binding protein 3 mediates anti-influenza activity through inhibition of viral transcription and replication[J]. FASEB J201226(3):1290-1300. DOI:10.1096/fj.11-189886.
[17]
FellenbergF, HartmannTB, DummerRet al. GBP-5 splicing variants:new guanylate-binding proteins with tumor-associated expression and antigenicity[J]. J Invest Dermatol2004122(6):1510-1517. DOI:10.1111/j.0022-202X.2004.22613.x.
[18]
WehnerM, HerrmannC. Biochemical properties of the human guanylate binding protein 5 and a tumor-specific truncated splice variant[J]. FEBS J2010277(7):1597-1605. DOI:10.1111/j.1742-4658.2010.07586.x.
[19]
LiuPF, ShuCW, LeeCHet al. Clinical significance and the role of guanylate-binding protein 5 in oral squamous cell carcinoma[J]. Cancers(Basel)202113(16):4043. DOI:10.3390/cancers13164043.
[20]
PatilPA, BlakelyAM, LombardoKAet al. Expression of PD-L1,indoleamine 2,3-dioxygenase and the immune microenvironment in gastric adenocarcinoma[J]. Histopathology201873(1):124-136. DOI:10.1111/his.13504.
[21]
FriedmanK, BrodskyAS, LuSet al. Medullary carcinoma of the colon:a distinct morphology reveals a distinctive immunoregulatory microenvironment[J]. Mod Pathol201629(5):528-541. DOI:10.1038/modpathol.2016.54.
[22]
YuX, JinJ, ZhengYet al. GBP5 drives malignancy of glioblastoma via the Src/ERK1/2/MMP3 pathway[J]. Cell Death Dis202112(2):203. DOI:10.1038/s41419-021-03492-3.
[23]
ChengSW, ChenPC, GerTRet al. GBP5 serves as a potential marker to predict a favorable response in triple-negative breast cancer patients receiving a taxane-based chemotherapy[J]. J Pers Med202111(3):197.DOI:10.3390/jpm11030197.
[24]
HuntEN, KopaczJP, VestalDJ. Unraveling the role of guanylate-binding proteins(GBPs)in breast cancer:a comprehensive literature review and new data on pognosis in breast cancer subtypes[J]. Cancers (Basel)202214(11):2794.DOI:10.3390/cancers14112794.
[25]
WangQ, WangX, LiangQet al. Distinct prognostic value of mRNA expression of guanylate-binding protein genes in skin cutaneous melanoma[J]. Oncol Lett201815(5):7914-7922. DOI:10.3892/ol.2018.8306.
[26]
FanH, ShiY, WangHet al. GBP5 identifies immuno-hot tumors and predicts the therapeutic response to immunotherapy in NSCLC[J]. Int J Gen Med202316:1757-1769. DOI:10.2147/IJGM.S408900.
[27]
ChengSW, ChenPC, LinMHet al. GBP5 repression suppresses the metastatic potential and PD-L1 expression in triple-negative breast cancer[J]. Biomedicines20219(4):371. DOI:10.3390/biomedicines9040371.
[28]
LiX, SongD, SuSet al. Critical role of guanylate binding protein 5 in tumor immune microenvironment and predictive value of immunotherapy response[J]. Front Genet202213:984615. DOI:10.3389/fgene.2022.984615.
[29]
HachimMY, HachimIY, TalaatIMet al. M1 polarization markers are upregulated in basal-like breast cancer molecular subtype and associated with favorable patient outcome[J]. Front Immunol202011:560074. DOI:10.3389/fimmu.2020.560074.
[30]
FujiwaraY, HizukuriY, YamashiroKet al. Guanylate-binding protein 5 is a marker of interferon-γ-induced classically activated macrophages[J]. Clin Transl Immunology20165(11):e111. DOI:10.1038/cti.2016.59.
[31]
YuTT, SangXY, HanNet al. Macrophages mediated delivery of chlorin e6 and treatment of lung cancer by photodynamic reprogramming[J]. Int Immunopharmacol2021100:108164. DOI:10.1016/j.intimp.2021.108164.
[32]
XuL, PelosofL, WangRet al. NGS evaluation of colorectal cancer reveals interferon gamma dependent expression of immune checkpoint genes and identification of novel IFNγ induced genes[J]. Front Immunol202011:224. DOI:10.3389/fimmu.2020.00224.
[33]
杨利洒石从郁梁宇豪. 头颈部鳞癌程序性死亡配体1的共表达基因及调控网络的生物信息学分析[J].华西口腔医学杂志201937(5):516-520. DOI:10.7518/hxkq.2019.05.012.
[34]
CimasFJ, ManzanoA, Baliu-PiquéMet al. Genomic mapping identifies mutations in RYR2 and AHNAK as associated with favorable outcome in basal-like breast tumors expressing PD1/PD-L1[J]. Cancers(Basel)202012(8):2243. DOI:10.3390/cancers12082243.
[35]
WangJ, ZhouY, YangYet al. The expression panel of CXCL9,GBP5,and IFNG is a potential pan-cancer biomarker to predict immunotherapy response[J]. Am J Transl Res202315(6):3960-3975.
[36]
FinethyR, LuomaS, Orench-RiveraNet al. Inflammasome activation by bacterial outer membrane vesicles requires guanylate binding proteins[J]. mBio20178(5):e01188-17. DOI:10.1128/mBio.01188-17.
[37]
LiangC, FanJ, LiangCet al. Identification and validation of a pyroptosis-related prognostic model for gastric cancer[J]. Front Genet202112:699503. DOI:10.3389/fgene.2021.699503.
[38]
NyströmS, AntoineDJ, LundbäckPet al. TLR activation regulates damage-associated molecular pattern isoforms released during pyroptosis[J]. EMBO J201332(1):86-99. DOI:10.1038/emboj.2012.328.
[39]
BrozP, DixitVM. Inflammasomes:mechanism of assembly,regulation and signalling[J]. Nat Rev Immunol201616(7):407-420. DOI:10.1038/nri.2016.58.
[40]
Dupaul-ChicoineJ, ArabzadehA, DagenaisMet al. The Nlrp3 inflammasome suppresses colorectal cancer metastatic growth in the liver by promoting natural killer cell tumoricidal activity[J]. Immunity201543(4):751-763. DOI:10.1016/j.immuni.2015.08.013.
[41]
ZhaoX, ZhangC, HuaMet al. NLRP3 inflammasome activation plays a carcinogenic role through effector cytokine IL-18 in lymphoma[J]. Oncotarget20178(65):108571-108583. DOI:10.18632/oncotarget.21010.
[42]
ShenoyAR, WellingtonDA, KumarPet al. GBP5 promotes NLRP3 inflammasome assembly and immunity in mammals[J]. Science2012336(6080):481-485. DOI:10.1126/science.1217141.
[43]
SantosJC, BoucherD, SchneiderLKet al. Human GBP1 binds LPS to initiate assembly of a caspase-4 activating platform on cytosolic bacteria[J]. Nat Commun202011(1):3276. DOI:10.1038/s41467-020-16889-z.
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